Влияние эквилибрации в среде замораживания на осмотическую устойчивость и жизнеспособность 8-клеточных эмбрионов мыши
Исследовали влияние различных этапов быстрого замораживания в глицерин-сахарозной среде на уровень жизнеспособности и осмотическую устойчивость 8-клеточных эмбрионов мыши. Показано, что длительность предварительной эквилибрации эмбрионов в среде замораживания является ключевым этапом, влияющим на ко...
Gespeichert in:
Datum: | 2004 |
---|---|
Hauptverfasser: | , , , |
Format: | Artikel |
Sprache: | Russian |
Veröffentlicht: |
Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України
2004
|
Schriftenreihe: | Проблемы криобиологии и криомедицины |
Schlagworte: | |
Online Zugang: | http://dspace.nbuv.gov.ua/handle/123456789/138465 |
Tags: |
Tag hinzufügen
Keine Tags, Fügen Sie den ersten Tag hinzu!
|
Назва журналу: | Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine |
Zitieren: | Влияние эквилибрации в среде замораживания на осмотическую устойчивость и жизнеспособность 8-клеточных эмбрионов мыши / Е.И. Смольянинова, О.Б. Хроменкова, Г.В. Жерноклев, О.В. Пишко // Проблемы криобиологии. — 2004. — № 1. — С. 3–11. — Бібліогр.: 13 назв. — рос. |
Institution
Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraineid |
irk-123456789-138465 |
---|---|
record_format |
dspace |
spelling |
irk-123456789-1384652018-06-20T03:08:50Z Влияние эквилибрации в среде замораживания на осмотическую устойчивость и жизнеспособность 8-клеточных эмбрионов мыши Смольянинова, Е.И. Хроменкова, О.Б. Жерноклев, Г.В. Пишко, О.В. Теоретическая и экспериментальная криобиология Исследовали влияние различных этапов быстрого замораживания в глицерин-сахарозной среде на уровень жизнеспособности и осмотическую устойчивость 8-клеточных эмбрионов мыши. Показано, что длительность предварительной эквилибрации эмбрионов в среде замораживания является ключевым этапом, влияющим на конечную сохранность эмбрионов. Выявлено, что одно- и двухэтапное добавление растворов глицерина к эмбрионам оказывает различное влияние на количественные значения транспортных характеристик плазматических мембран ранних зародышей. Обсуждаются возможные механизмы повреждающего действия растворов глицерина высоких концентраций на мембранные структуры эмбрионов мыши. Вивчали вплив різних етапів швидкого заморожування в гліцерин-сахарозному середовищі на життєздатність та осмотичну стійкість 8-клітинних ембріонів миші. Показано, що тривалість попередньої еквілібрації ембріонів у середовищі заморожування є ключовим етапом, що впливає на кінцеву збереженість ембріонів. Виявлено, що одно- та двухетапне додавання розчинів гліцерину має різний вплив на кількісні значення транспортних характеристик плазматичних мембран ранніх зародків. Обговорюються можливі механізми пошкоджуючої дії розчинів гліцерину великих концентрацій на мембранні структури ембріонів миші. Effect of several steps of ultra-rapid freezing in glycerol-sucrose medium on 8-cell mice embryo osmotic resistance and viability has been studied. It has been shown that the procedure of embryos treatment before freezing makes a determinant influence on final embryo survival. The different influence of one-step and two-step addition of the glycerol solutions to embryos on the transport parameters of their plasma membranes has been revealed. The possible mechanisms of detrimental effect of glycerol solutions of high concentrations on membrane structures of mouse embryos are discussed. 2004 Article Влияние эквилибрации в среде замораживания на осмотическую устойчивость и жизнеспособность 8-клеточных эмбрионов мыши / Е.И. Смольянинова, О.Б. Хроменкова, Г.В. Жерноклев, О.В. Пишко // Проблемы криобиологии. — 2004. — № 1. — С. 3–11. — Бібліогр.: 13 назв. — рос. 0233-7673 http://dspace.nbuv.gov.ua/handle/123456789/138465 57.043: 577.352.462/464 ru Проблемы криобиологии и криомедицины Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України |
institution |
Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine |
collection |
DSpace DC |
language |
Russian |
topic |
Теоретическая и экспериментальная криобиология Теоретическая и экспериментальная криобиология |
spellingShingle |
Теоретическая и экспериментальная криобиология Теоретическая и экспериментальная криобиология Смольянинова, Е.И. Хроменкова, О.Б. Жерноклев, Г.В. Пишко, О.В. Влияние эквилибрации в среде замораживания на осмотическую устойчивость и жизнеспособность 8-клеточных эмбрионов мыши Проблемы криобиологии и криомедицины |
description |
Исследовали влияние различных этапов быстрого замораживания в глицерин-сахарозной среде на уровень жизнеспособности и осмотическую устойчивость 8-клеточных эмбрионов мыши. Показано, что длительность предварительной эквилибрации эмбрионов в среде замораживания является ключевым этапом, влияющим на конечную сохранность эмбрионов. Выявлено, что одно- и двухэтапное добавление растворов глицерина к эмбрионам оказывает различное влияние на количественные значения транспортных характеристик плазматических мембран ранних зародышей. Обсуждаются возможные механизмы повреждающего действия растворов глицерина высоких концентраций на мембранные структуры эмбрионов мыши. |
format |
Article |
author |
Смольянинова, Е.И. Хроменкова, О.Б. Жерноклев, Г.В. Пишко, О.В. |
author_facet |
Смольянинова, Е.И. Хроменкова, О.Б. Жерноклев, Г.В. Пишко, О.В. |
author_sort |
Смольянинова, Е.И. |
title |
Влияние эквилибрации в среде замораживания на осмотическую устойчивость и жизнеспособность 8-клеточных эмбрионов мыши |
title_short |
Влияние эквилибрации в среде замораживания на осмотическую устойчивость и жизнеспособность 8-клеточных эмбрионов мыши |
title_full |
Влияние эквилибрации в среде замораживания на осмотическую устойчивость и жизнеспособность 8-клеточных эмбрионов мыши |
title_fullStr |
Влияние эквилибрации в среде замораживания на осмотическую устойчивость и жизнеспособность 8-клеточных эмбрионов мыши |
title_full_unstemmed |
Влияние эквилибрации в среде замораживания на осмотическую устойчивость и жизнеспособность 8-клеточных эмбрионов мыши |
title_sort |
влияние эквилибрации в среде замораживания на осмотическую устойчивость и жизнеспособность 8-клеточных эмбрионов мыши |
publisher |
Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України |
publishDate |
2004 |
topic_facet |
Теоретическая и экспериментальная криобиология |
url |
http://dspace.nbuv.gov.ua/handle/123456789/138465 |
citation_txt |
Влияние эквилибрации в среде замораживания на осмотическую устойчивость и жизнеспособность 8-клеточных эмбрионов мыши / Е.И. Смольянинова, О.Б. Хроменкова, Г.В. Жерноклев, О.В. Пишко // Проблемы криобиологии. — 2004. — № 1. — С. 3–11. — Бібліогр.: 13 назв. — рос. |
series |
Проблемы криобиологии и криомедицины |
work_keys_str_mv |
AT smolʹâninovaei vliânieékvilibraciivsredezamoraživaniânaosmotičeskuûustojčivostʹižiznesposobnostʹ8kletočnyhémbrionovmyši AT hromenkovaob vliânieékvilibraciivsredezamoraživaniânaosmotičeskuûustojčivostʹižiznesposobnostʹ8kletočnyhémbrionovmyši AT žernoklevgv vliânieékvilibraciivsredezamoraživaniânaosmotičeskuûustojčivostʹižiznesposobnostʹ8kletočnyhémbrionovmyši AT piškoov vliânieékvilibraciivsredezamoraživaniânaosmotičeskuûustojčivostʹižiznesposobnostʹ8kletočnyhémbrionovmyši |
first_indexed |
2025-07-10T05:48:59Z |
last_indexed |
2025-07-10T05:48:59Z |
_version_ |
1837237848183406592 |
fulltext |
3ПРОБЛЕМЫ
КРИОБИОЛОГИИ
2004, №1
PROBLEMS
OF CRYOBIOLOGY
2004, №1
УДК 57.043: 577.352.462/464 UDC 57.043: 577.352.462/464
Влияние эквилибрации в среде замораживания на осмотическую
устойчивость и жизнеспособность 8-клеточных эмбрионов мыши
Е.И. СМОЛЬЯНИНОВА1, О.Б. ХРОМЕНКОВА2, Г.В. ЖЕРНОКЛЕВ3, О.В. ПИШКО1
1Институт проблем криобиологии и криомедицины НАН Украины, г. Харьков
2Харьковский государственный медицинский университет
3Харьковский биотехнологический центр
Equilibration Effect in Freezing Medium on Osmotic Resistance
and Viability of 8-Cell Mice Embryos
SMOLYANINOVA E.I.1, KHROMENKOVA O.B.2, ZHERNOKLEV G.V.3, PISHKO O.V.1
1Institute for Problems of Cryobiology and Cryomedicine of the National Academy
of Sciences of the Ukraine, Kharkov
2Kharkov State Medical University
3Kharkov Biotechnology Centre
Исследовали влияние различных этапов быстрого замораживания в глицерин-сахарозной среде на уровень жизнеспособности
и осмотическую устойчивость 8-клеточных эмбрионов мыши. Показано, что длительность предварительной эквилибрации
эмбрионов в среде замораживания является ключевым этапом, влияющим на конечную сохранность эмбрионов. Выявлено,
что одно- и двухэтапное добавление растворов глицерина к эмбрионам оказывает различное влияние на количественные
значения транспортных характеристик плазматических мембран ранних зародышей. Обсуждаются возможные механизмы
повреждающего действия растворов глицерина высоких концентраций на мембранные структуры эмбрионов мыши.
Ключевые слова: быстрое замораживание, эмбрионы, проницаемость, глицерин, жизнеспособность.
Вивчали вплив різних етапів швидкого заморожування в гліцерин-сахарозному середовищі на життєздатність та осмотичну
стійкість 8-клітинних ембріонів миші. Показано, що тривалість попередньої еквілібрації ембріонів у середовищі заморожування
є ключовим етапом, що впливає на кінцеву збереженість ембріонів. Виявлено, що одно- та двухетапне додавання розчинів
гліцерину має різний вплив на кількісні значення транспортних характеристик плазматичних мембран ранніх зародків.
Обговорюються можливі механізми пошкоджуючої дії розчинів гліцерину великих концентрацій на мембранні структури
ембріонів миші.
Ключові слова: швидке заморожування, ембріони, проникність, гліцерин, життєздатність.
Effect of several steps of ultra-rapid freezing in glycerol-sucrose medium on 8-cell mice embryo osmotic resistance and viability
has been studied. It has been shown that the procedure of embryos treatment before freezing makes a determinant influence on final
embryo survival. The different influence of one-step and two-step addition of the glycerol solutions to embryos on the transport
parameters of their plasma membranes has been revealed. The possible mechanisms of detrimental effect of glycerol solutions of high
concentrations on membrane structures of mouse embryos are discussed.
Key words: rapid freezing, embryos, permeability, glycerol, survival.
Адрес для корреспонденции: Смольянинова Е.И., Институт
проблем криобиологии и криомедицины НАН Украины,
ул. Переяславская, 23, Харьков, Украина 61015; тел.: +38 (057)
772-88-71, факс: +38 (057) 772-00-84, e-mail: cryo@online.kharkov.ua
Аddress for correspondence: Smolyaninova E.I., Institute for Problems of
Cryobiology and Cryomedicine of the Natl. Acad. Sci. of Ukraine,
23, Pereyaslavskaya str., Kharkov, Ukraine 61015; tel.: +38 (057) 7721119,
fax: +38 (057) 7720084, e-mail: cryo@online.kharkov.ua.
Витрификация внутриклеточной среды является
необходимым условием обеспечения сохранности
клеток как при медленном, так и быстром
замораживании. При медленном замораживании
она обеспечивается дегидратацией клеток в
процессе внеклеточного кристаллообразования.
Исключить внутриклеточное кристаллообра-
зование при быстром замораживании можно
дегидратацией клеток на этапе эквилибрации в
высококонцентрированных смесях непроникающих
и проникающих криопротекторов в сочетании с
высокими скоростями охлаждения.
Intracellular medium vitrification is known to be the
essential condition to provide the cell integrity at both
slow and rapid cooling. At a slow one it is provided by
cell dehydration during the process of extracellular
crystal formation. It is possible to avoid intracellular
crystal formation at a rapid freezing by cell dehydration
at the stage of equilibration in highly concentrated
mixtures of penetrating and non-penetrating cryo-
protectants combined with high cooling rates.
To cryopreserve the mammalian early embryos
there have been used strongly penetrating cryo-
protectants such as glycerol, 1, 2-propanediol, ethylene
ТЕОРЕТИЧЕСКАЯ
И ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ
КРИОБИОЛОГИЯ
THEORETICAL
AND EXPERIMENTAL
CRYOBIOLOGY
4ПРОБЛЕМЫ
КРИОБИОЛОГИИ
2004, №1
PROBLEMS
OF CRYOBIOLOGY
2004, №1
Для криоконсервирования ранних эмбрионов
млекопитающих применяются такие хорошо
проникающие криопротекторы, как глицерин, 1,2-
пропандиол, этиленгликоль, диметилсульфоксид в
относительно высоких концентрациях [4, 5, 9, 11,
13]. Однако при использовании высоких концентра-
ций криопротекторов предъявляются особые
требования к процедурам их добавления и
удаления. Скорости насыщения клеток криопро-
тектором и его выхода на этапе отмывания от
криозащитной среды зависят от коэффициентов
проницаемости плазматических мембран для
молекул воды и криозащитных веществ. Опреде-
ление этих клеточных характеристик в экспери-
ментах, моделирующих различные условия
криоконсервирования, является теоретической
основой для оптимизации его основных этапов.
В связи с вышеизложенным очевидна актуаль-
ность исследований осмотического поведения
ооцитов и ранних эмбрионов млекопитающих в
криозащитных средах и определения транспортных
характеристик их плазматических мембран в
условиях, моделирующих реальные криобио-
логические ситуации.
Особое значение в таких исследованиях имеет
выяснение зависимости транспортных характе-
ристик и плазматических мембран ранних
эмбрионов млекопитающих как от вида и стадии
развития эмбрионов [10], так и физико-химических
свойств и концентрации криопротектора [3].
Зависимость коэффициентов проницаемости
плазматических мембран клеток для молекул
криопротекторов и воды от концентрации криоза-
щитных веществ может привести к некорректной
экстраполяции результатов, полученных для
относительно малых концентраций (1,5 М) крио-
протекторов, на различные криобиологические
ситуации с использованием высоких концентраций
(3-6 М) криозащитных веществ [8].
Сопоставление данных осмотической устойчи-
вости ранних эмбрионов млекопитающих в
криозащитных средах различного состава с
данными их сохранности после криоконсер-
вирования представляет интерес как для выясне-
ния механизмов устойчивости и чувствительности
эмбрионов к факторам криоповреждения, так и
поиска путей оптимизации отдельных этапов цикла
криоконсервирования.
Цель работы – изучение влияния различных
этапов криоконсервирования с использованием
быстрого замораживания в глицерин-сахарозной
среде на осмотическую устойчивость и жизне-
способность 8-клеточных эмбрионов мыши, а
также исследование изменения транспортных
параметров плазматических мембран эмбрионов
glycol, dimethyl sulfoxide at relatively high concentra-
tions [4,5,9,11,13]. However when using high
cryoprotectant concentrations there are the special
requirements for their adding procedures and removal.
Cell saturation rates with cryoprotectant and its release
during washing-out of cryoprotective medium depend
on the permeability coefficient of plasmatic membranes
for aqueous molecules and cryoprotective substances.
Determination of these cell characteristics in the
experiments, modelling various cryopreservation
conditions is the theoretical background for optimisation
of its main steps.
According to the data mentioned above we consider
to be obvious the actuality of studying the oocyte
osmotic behaviour and early mammalian embryos in
cryoprotective media, as well as the transport
characteristics determination under the conditions of
modelling the actual cryobiological events.
Revealing a dependence of the transport characte-
ristics and plasmatic membranes in early mammal
embryos is of a special value in these investigations
[10], as well as physical and chemical properties and
cryoprotectant concentration [3]. The coefficient
dependence of plasmatic membrane cell permeability
for aqueous molecules and the ones of cryoprotectants
may lead to an incorrect extrapolation of the results
obtained for the relatively low concentrations (1.5 M)
of cryoprotectants, on various cryobiological events
using high concentrations of cryoprotective substances
(3-6 M) [8].
Comparison of the data of osmotic stability of early
mammalian embryos in cryoprotective media of
different composition with the data on their integrity
following cryopreservation is of great interest both for
revealing the mechanisms of the embryo stability and
susceptibility to cryo-preservation factors, and
searching the optimisation ways for certain stages of
cryopreservation cycle.
The aim of the work was studying the effect of
various cryopreservation stages using a rapid freezing
under glycerol-sucrose medium on osmotic stability and
8-cell mice embryos’ viability, as well as studying the
change of transport parameters in embryos plasmatic
membranes during the process of cell saturation with
glycerol at its one- and two-step addition.
Materials and methods
The objects of the study were 8-cell embryos
derived from mice females F1 (CBA×C57B1) of 6-8
gestation weeks which were subjected to the ovulation
hormonal stimulation. Embryos were obtained by
washing-out of the dissected oviducts and uterus horns
with a warm physiological Dulbecco medium according
to the standard method [1]. The cells were divided
into 3 experimental groups and the control one.
5ПРОБЛЕМЫ
КРИОБИОЛОГИИ
2004, №1
PROBLEMS
OF CRYOBIOLOGY
2004, №1
в процессе насыщения клеток глицерином при его
одно- и двухэтапном добавлении.
Материалы и методы
Объектом исследования служили 8-клеточные
эмбрионы самок мышей F1(CBA×C57Bl) 6-8 недель,
подвергнутых гормональной стимуляции овуляции.
Эмбрионы получали промыванием отпрепари-
рованных яйцеводов и рогов матки теплой
физиологической средой Дюльбекко по стандарт-
ной методике [1]. Клетки были разделены на 3
экспериментальные группы и 1 контрольную.
Был исследован метод быстрого замора-
живания [4, 5]. Эмбрионы 1-й (n=37) и 2-й (n=42)
экспериментальных групп после предварительной
эквилибрации в течение 10 мин в 10%-м растворе
глицерина переносили в среду замораживания,
состоящую из 30% глицерина и 70% 1 М раствора
сахарозы. Эмбрионы выдерживали в этой среде
1,5 или 3 мин, после чего переносили в 0,5 М
раствор сахарозы на 10 мин для удаления
криопротектора. Эмбрионы 3-й группы (n=79)
после 10-минутной эквилибрации в 10%-м растворе
глицерина помещали в пластиковые соломинки,
предварительно заполненные криозащитной
средой, выдерживали при комнатной температуре
1,5 мин, затем погружали в жидкий азот. Длитель-
ность хранения соломинок в жидком азоте
составляла 3-7 сут. Оттаивание выполняли в
водяной бане (38°С). Для удаления криопротектора
также использовали 10-минутную эквилибрацию в
0,5 М растворе сахарозы. После описанных
процедур эмбрионы всех 3 экспериментальных
групп трижды отмывали физиологической средой
и переносили в СО2-инкубатор для культи-
вирования. Эмбрионы контрольной группы (n=44)
помещали в CO2-инкубатор непосредственно после
их получения.
Уровень жизнеспособности эмбрионов оцени-
вали по их развитию в условиях in vitro до стадии
расширенной бластоцисты.
Методом световой микроскопии изучали
осмотическое поведение 8-клеточных эмбрионов
мыши в процессе их эквилибрации в 10%- и 30%-м
растворах глицерина при одно- и двухэтапном
добавлении. В результате были получены экспери-
ментальные зависимости относительного объема
отдельных клеток от времени эквилибрации в
растворах глицерина. Коэффициенты проницае-
мости плазматических мембран эмбрионов для
молекул воды (Lp) и криопротектора (Кp) опреде-
ляли следующим образом. Экспериментальные
значения относительных объемов клеток аппро-
ксимировали численным решением уравнений
неравновесной термодинамики [2] путем соответ-
ствующего подбора феноменологических коэффи-
циентов, добиваясь наилучшего согласования
There has been studied a rapid freezing method
[4,5]. The embryos of the 1st (n=37) and the 2nd (n=42)
experimental groups after a 10 min preliminary
equilibration in 10% glycerol solution were transferred
into a freezing medium comprised 30% glycerol and
70% 1M sucrose solution. Embryos were kept at the
medium for 1.5 or 3 min, then transferred into 0.5 M
sucrose solution for 10 min in order to remove the
cryoprotectant. The 3rd group embryos (n=79) after a
10 min equilibration at 10% glycerol solution were
placed into plastic straws filled up preliminarily with a
cryoprotective medium, maintained at room tempe-
rature within 1.5 min, then immersed into liquid
nitrogen. Storage term of straws in liquid nitrogen
made 3-7 days. Thawing was performed in water bath
(38°C). To remove the cryoprotectant there was also
used a 10-min equilibration in 0.5M sucrose solution.
Following the procedures described the embryos of all
three experimental groups were thrice washed-out with
physiological medium, transferred into CO2-incubator
for culturing. Control group embryos (n=44) were
placed into CO2-incubator immediately after their
procurement.
Rate of embryo viability was estimated by their
development under in vitro conditions up to the stage
of extended blastocyst.
By the method of light microscopy there was studied
an osmotic behaviour of 8-cell mice embryos during
their equilibration in 10%- and 30% glycerol solutions
at one- and two-stage addition. As a result there have
been obtained the experimental dependencies of a
relative volume of some cells upon the time of their
equilibration in glycerol solutions. Permeability
coefficients of embryo plasmatic membranes for
aqueous molecules (Lp) and cryoprotectant (Kp) there
were evaluated as follows. Experimental values of
relative cell volumes were approximated by numeric
solving of the equations of non-equilibrium thermo-
dynamics [2] by selecting the phenomenological
coefficients, reaching the proper sequence of
experimental dependence and theoretical curve.
The data statistical processing (on Student’s criteria)
was accomplished by final quantitative values of
biophysical parameters obtained for some cells.
By the method of light microscopy there was
investigated the embryo osmotic behaviour at the stages
of glycerol adding, cell equilibration in a freezing
medium and cryoprotectant removal.
Results and discussion
According to the data obtained (Fig.1), equilibration
of 8-cell mice embryos in glycerol-sucrose medium
(freezing medium) within 1.5 min does not affect
significantly the embryo capability of developing in
culture to the stage of extended blastocyst if compared
with the control group (84.9 and 90.2%, correspon-
dingly). The following freezing process also does not
6ПРОБЛЕМЫ
КРИОБИОЛОГИИ
2004, №1
PROBLEMS
OF CRYOBIOLOGY
2004, №1
экспериментальной зависимости и теоретической
кривой.
Статистическую обработку данных (по крите-
риям Стьюдента) осуществляли по конечным
количественным значениям биофизических пара-
метров, полученных для отдельных клеток.
Методом световой микроскопии исследовали
осмотическое поведение эмбрионов на этапах до-
бавления глицерина, эквилибрации клеток в среде
замораживания и удаления криопротектора.
Результаты и обсуждение
Как следует из полученных данных (рис. 1),
эквилибрация 8-клеточных эмбрионов мыши в
глицерин-сахарозной среде (среда замораживания)
в течение 1,5 мин не оказывает существенного
влияния на способность эмбрионов развиваться в
культуре до стадии расширенной бластоцисты по
сравнению с контрольной группой (84,9 и 90,2%
соответственно). Последующий процесс замора-
живания также не приводит к дальнейшему
снижению уровня жизнеспособности (80,2%).
Увеличение времени эквилибрации клеток в среде
замораживания до 3 мин достоверно снижает
уровень жизнеспособности эмбрионов (56,8%).
Следует отметить, что в процессе микроско-
пического наблюдения осмотического поведения
8-клеточных эмбрионов, подвергавшихся эквилиб-
рации в растворе глицерина и криозащитной среде
(в течение как 1,5, так и 3 мин) с последующим
отмыванием в 0,5 М растворе сахарозы и физио-
логической среде, никаких морфологических нару-
шений клеток не наблюдалось (рис. 2).
90,2
84,9
80,2
56,8
0
20
40
60
80
100
Контроль КП 1,5 мин КП 3 мин Крио 1,5
cause the further reduction of the viability rate
(80.2%). The equilibration time rise of the cells in a
freezing medium up to 3 min considerably decreases
the level of embryo viability (56.8%).
It should be noted that during microscopic obser-
vation of 8-cell embryo osmotic behaviour, which were
subjected to equilibration in glycerol solution and
cryoprotective medium no morphological cell damages
were noticed (Fig. 2).
Having supposed the embryonic plasmatic
membrane to be the major target for the damaging
factor effect, we studied the influence of the initial
glycerol concentration and the method of its adding to
cells on transport characteristics of plasmatic
membranes of 8-cell mice embryos. There was studied
the osmotic behaviour of mice embryos during their
equilibration in 10% and 30% glycerol solutions at one-
and two-step adding of the solutions mentioned (with
10-min interval).
Рис. 1. Уровень жизнеспособности 8-клеточных эмбрио-
нов мыши после инкубации в среде замораживания (КП)
и полного цикла криоконсервирования (Крио).
Fig.1. Viability level of 8-cell mice embryos after the incuba-
tion in freezing medium (CP) and complete cryopreservation
cycle (Cryo).
Э
м
бр
ио
ны
,
до
ст
иг
ш
ие
с
та
ди
и
бл
ас
то
ци
ст
ы
,
%
Em
br
yo
s,
r
ea
ch
ed
t
he
b
la
st
oc
ys
t
st
ag
e,
%
-
Control CP 1,5 min CP 3 min Cryo 1,5
Рис. 2. Кинетика осмотического поведения 8-клеточного
эмбриона мыши в процессе добавления и удаления
криозащитной среды: 1 – натив; 2 – 2 мин экспозиции в
10%-м растворе глицерина; 3 – 9 мин экспозиции в 10%-м
растворе глицерина; 4 – 1 мин в среде замораживания
(30% глицерина и 70% 1 М раствора сахарозы); 5 – 9 мин
50 с экспозиции в отмывочной среде (0,5 М раствор
сахарозы); 6 – 10 мин экспозиции в физиологической
среде Дюльбекко.
Fig. 2. Kinetics of osmotic behaviour of 8-cell mice embryo
when adding and removing the cryoprotective medium: 1 –
native; 2 – 2 min exposure in 10% glycerol solution; 3 –
9 min exposure in 10% glycerol solution; 4 – 1 min under
freezing medium (30% glycerol and 70% 1M sucrose solu-
tion); 5 – 9min 50 s of exposure under washing-out medium
(0.5 M sucrose solution); 6 – 10 min exposure under physio-
logical Dulbecco’s medium.
б ba a
7ПРОБЛЕМЫ
КРИОБИОЛОГИИ
2004, №1
PROBLEMS
OF CRYOBIOLOGY
2004, №1
Рис. 3. Теоретические ( ) и экспериментальные ( и ) зависимости относительного объема 8-клеточного эмбриона
мыши от времени эквилибрации при одноэтапном (а) и двухэтапном (б) добавлении растворов глицерина с
концентрацией: 1 – 10%; 2 – 30%.
Fig. 3. Theoretical ( ) and experimental ( and ) relative volume dependences for 8-cell mice embryo upon equilibra-
tion time at one-step (a) and 2-step (b) addition of glycerol solutions with the following concentrations: 1 – 10%; 2 – 30%.
Предполагая, что плазматическая мембрана
эмбрионов является основной мишенью для
действия повреждающих факторов, мы иссле-
довали влияние начальной концентрации глицерина
и метода его добавления к клеткам на транспорт-
ные характеристики плазматических мембран
8-клеточных эмбрионов мыши. Было изучено
осмотическое поведение эмбрионов мыши в
процессе их эквилибрации в 10%- и 30%-х
растворах глицерина при одно- и двухэтапном (с
10-минутным интервалом) добавлении указанных
растворов.
На рис. 3 представлены экспериментальные и
теоретические зависимости относительного
объема 8-клеточного эмбриона мыши от времени
эквилибрации в исследуемых растворах глицерина
при одноэтапном (рис. 3, а) и двухэтапном (рис. 3, б)
их добавлении. При одноэтапном добавлении
увеличение исходной концентрации глицерина
приводит к усилению степени сжатия клетки на
этапе обезвоживания и к более длительному
восстановлению исходного значения клеточного
объема. При двухэтапном добавлении растворов
глицерина указанных концентраций минимальные
значения клеточного объема, фиксируемые на
этапе обезвоживания, в обоих растворах практи-
чески одинаковы. Близки также и значения времени
восстановления исходных значений клеточного
объема.
В таблице приведены количественные значения
коэффициентов проницаемости плазматических
мембран 8-клеточных эмбрионов мыши для
молекул воды и глицерина, определенные в ука-
занных условиях. Как видно, значения транс-
Fig. 3 presents the experimental and theoretical
dependencies of a relative volume of 8-cell mouse
embryo upon the equilibration time in studied glycerol
solutions under their one- (Fig. 3a) and two-step
(Fig. 3b) adding. Under a one-step adding the rise of
the glycerol initial concentration causes an increase of
the level of cell shrinkage at the dehydration stage and
longer recovery of the value of initial cell volume At
two-step adding of glycerol solutions of the mentioned
concentrations the minimum values of cell volume being
noted at the dehydration stage were nearly the same
in both solutions. There were also similar the time
parameters of the recovery of cell volume initial values.
The table presents the quantitative values for
permeability coefficients of plasmatic membranes of
8-cell mice embryos for water and glycerol molecules,
determined under the conditions mentioned. The values
of the embryonic membrane transport parameters are
noticed to be dependent upon the initial concentration
of the cryoprotectant and the method of its adding to cells.
While a 1-step adding the values of permeability
coefficients of embryo plasmatic membranes for
glycerol molecules are significantly decreasing with
the initial cryoprotectant concentration (P<0.05). At
two-stage adding of 10 and 30% solutions the values
of this parameter determined in both solutions were
practically the same. It should be noted that the method
of glycerol addition did not significantly affect the
coefficient values of embryonic membrane permeability
for water molecules.
Analysis of the change dynamics of intracellular
glycerol concentrations has demonstrated that cell
saturation by cryoprotectant in 90-95% occurs during
1-2 min of embryo equilibration in the solutions studied.
0,0
0,2
0,4
0,6
0,8
1,0
1,2
0 500 1000 1500
Время, с Time, s
О
тн
ос
ит
ел
ьн
ы
й
об
ъе
м
R
el
at
iv
e
v
ol
um
e
0,4
0,5
0,6
0,7
0,8
0,9
1,0
1,1
0 500 1000 1500 2000
Время, с Time, s
О
тн
ос
ит
ел
ьн
ы
й
об
ъе
м
R
el
at
iv
e
vo
lu
m
e
1
2
1
2
0
2
4
6
8
10
12
14
16
0 500 1000 1500 2000 2500
б ba a
8ПРОБЛЕМЫ
КРИОБИОЛОГИИ
2004, №1
PROBLEMS
OF CRYOBIOLOGY
2004, №1
портных параметров мембран
эмбрионов зависят от начальной
концентрации данного криопро-
тектора и метода его добав-
ления к клеткам.
При одноэтапном добавлении
значения коэффициентов прони-
цаемости плазматических мем-
бран эмбрионов для молекул
глицерина достоверно уменьша-
ются с увеличением начальной
концентрации криопротектора
(Р<0,05). При двухэтапном добав-
лении 10%- и 30%-х растворов
глицерина значения этого пара-
метра, определенные в обоих
растворах, практически одина-
At a two-stage adding the process of cell saturation
by glycerol in 30% solution is accelerated comparing
to the one-stage adding (Fig. 4 a, b). Therefore a 1.5-min
equilibration is thought to be quite sufficient for cell
preparing to a rapid freezing.
Thus our investigations showed that the viability of
8-cell mice embryos, cryopreserved at glycerol-sucrose
medium using a rapid freezing was mainly determined
by the term of cell equilibration in cryopreservation
medium and the condition of the cryoprotectant addition.
The presence of high concentration of non-
penetrating substance (sucrose) in a freezing medium
does not allow to determine experimentally the trans-
port characteristics of plasmatic membrane embryos
and, correspondingly, dynamics of cell saturation with
яаньлачаН
яицартнецнок
%,анирецилг
laitinI
fonoitartnecnoc
%,lorecylg
еинелвабодеонпатэондO
gniddapets-enO
еинелвабодеонпатэхувД
gniddapets-owT
L
p
× 01 41 м, 3 Н/ ×с
L
p
× 01 41 m, 3 N/ ×s
К
p
× 01 8 с/м,
К
p
× 01 8 s/m,
L
p
× 01 41 м, 3 Н/ ×с
L
p
× 01 41 m, 3 N/ ×s
К
p
× 01 8 с/м,
К
p
× 01 8 s/m,
01 48,0±95,5 17,0±16,8 a 65,0±24,6 27,0±79,8 a
03 72,0±72,4 4,0±84,3 b 19,0±68,4 75,0±90,8 b
Примечание: a:b – p<0,05
Note: a:b – p<0.05
Коэффициенты проницаемости плазматических мембран 8-клеточных
эмбрионов мыши для молекул воды (Lp) и глицерина (Kp) в зависимости от
начальной концентрации криопротектора (Т=20°С)
Permeability coefficients for plasmatic membranes of 8-cell mice embryos for
water molecules (Lp) and glycerol (Kp) depending upon initial
concentration of cryoprotectant (T=20°C)
ковы. Следует отметить, что метод добавления
глицерина не оказывал существенного влияния на
значения коэффициентов проницаемости мембран
эмбрионов для молекул воды.
Анализ динамики изменения внутриклеточных
концентраций глицерина показал, что насыщение
клеток криопротектором на 90-95% происходит
практически в течение 1-2 мин эквилибрации
эмбрионов в исследуемых растворах. При двух-
этапном добавлении процесс насыщения клеток
глицерином в 30%-м растворе ускоряется по срав-
нению с одноэтапным (рис. 4, а, б). Поэтому 1,5-
минутная эквилибрация вполне достаточна для
подготовки клеток к замораживанию быстрым
методом.
0
2
4
6
8
10
12
14
16
0 500 1000 1500
Рис. 4. Теоретические зависимости внутриклеточного осмотического давления криопротектора от времени
эквилибрации 8-клеточного эмбриона мыши при одноэтапном (а) и двухэтапном (б) добавлении растворов глицерина
с концентрациями: 1 –10%; 2 – 30%.
Fig. 4. Theoretical dependences of intracellular cryoprotectant osmotic pressure on equilibration time of 8-cell mice
embryo at one-step (1) and two-step (b) addition of glycerol solutions with the following concentrations: 1 – 10%, 2 – 30%.
Время, с Time, s
П
ри
ве
де
нн
ое
в
ну
тр
ик
л.
о
см
.
да
вл
ен
ие
N
or
m
al
is
ed
in
tra
ce
llu
la
r
os
m
ot
ic
p
re
ss
ur
e
Время, с Time, s
П
ри
ве
де
нн
ое
в
ну
тр
ик
л.
о
см
.
да
вл
ен
ие
N
or
m
al
is
ed
in
tra
ce
llu
la
r
os
m
ot
ic
p
re
ss
ur
e
1
2
1
2
9ПРОБЛЕМЫ
КРИОБИОЛОГИИ
2004, №1
PROBLEMS
OF CRYOBIOLOGY
2004, №1
cryoprotectant. The dynamics can be evaluated by
experimental modelling of mice embryo osmotic beha-
viour under glycerol hypertonic solutions at the con-
centrations used for this cryopreservation method.
The dependence of transport characteristics of mice
embryos plasmatic membranes studied by us upon the
initial glycerol concentration and method of its adding
testifies the benefits of two-step cell saturation with
increasing concentrations of glycerol. Decrease in the
permeability of mice embryo plasmatic membranes for
glycerol molecules with increasing the initial cryo-
protectant concentration at one-step addition to cells
is probably connected to the rise of dehydration level,
that results in the fall of effective membrane surface
square due to the formation of additional microfolds.
Such a dependence of transport characteristics of
embryo plasmatic membranes upon the concentration
of cryoprotective substances is not specific one and
observed for other cell types [6]. An increase of dehyd-
ration degree and time of cell maintenance at highly
dehydrated state increases the risk of their damage as
a result of osmotic shock. Now is getting clear the
necessity of 10-min equilibration of mice embryos in
10% glycerol solution prior to the transfer into freezing
medium [4].
One of the advantages of step-wise addition of cryo-
protective solution to cells is known to be the reduction
of concentration gradients, which appear in plasmatic
membrane. Levelling the quantitative values for
permeability coefficients of 8-cell mice embryo
plasmatic membranes for glycerol molecules found in
10% and 30% solutions of this cryoprotectant at two-
stage adding, testifies to keeping the semi-permeable
properties of embryo plasmatic membranes and
absence in membrane of osmotic stress-induced struc-
tural defects. No considerable effect of glycerol adding
to embryos on the coefficient value of plasmatic
membranes filtration of 8-cell mice embryos was found
during the work, though when increasing the initial
glycerol concentration there was observed the ten-
dency to reducing the quantitative value of this para-
meter. This tendency remained both for one-stage and
two-stage methods of adding the glycerol solutions.
The cause of the viability level reduction for 8-cell
mice embryos when increasing equilibration time up
to 3 min in freezing medium has remained to be unclear.
The values of equilibration time studied in the work,
were shown to be insufficient to manifest the glycerol
toxic effect on cell structures. Cell damage in this case
may be supposed to be stipulated by the increase of
embryo maintenance at dehydrated state under the
effect of high concentrations of the medium freezing
components, that results in the impairments in the whole
integrity and interactions of intracellular structures.
Таким образом, проведенные исследования
показали, что жизнеспособность 8-клеточных эмб-
рионов мыши, криоконсервированных в глицерин-
сахарозной среде с использованием быстрого
замораживания, определяется, главным образом,
длительностью эквилибрации клеток в среде
криоконсервирования и условием добавления
криопротектора.
Присутствие в среде замораживания высокой
концентрации непроникающего вещества (саха-
розы) не позволяет в эксперименте определить
транспортные характеристики плазматических
мембран эмбрионов и соответственно динамику
насыщения клеток криопротектором. Судить об
этой динамике можно по экспериментальному
моделированию осмотического поведения эмбрио-
нов мыши в гипертонических растворах глицерина
в концентрациях, которые используются в данном
методе криоконсервирования.
Исследованная нами зависимость транспорт-
ных характеристик плазматических мембран
эмбрионов мыши от исходной концентрации
глицерина и метода его добавления свидетельст-
вует о пользе двухэтапного насыщения клеток
нарастающими концентрациями глицерина. Умень-
шение проницаемости плазматических мембран
эмбрионов мыши для молекул глицерина с уве-
личением исходной концентрации криопротектора
при одноэтапном добавлении к клеткам, по-види-
мому, связано с повышением уровня дегидратации,
приводящему к уменьшению эффективной площади
поверхности мембраны за счет образования допол-
нительных микроскладок. Подобная зависимость
транспортных характеристик плазматических
мембран эмбрионов от концентрации криозащит-
ных веществ не является специфичной и наблю-
дается для других типов клеток [6]. Увеличение
степени дегидратации и времени нахождения
клеток в сильно обезвоженном состоянии повы-
шает риск их повреждения в результате осмоти-
ческого шока. Становится понятной необходимость
10-минутной эквилибрации эмбрионов мыши в
10%-м растворе глицерина перед переносом в
среду замораживания [4].
Одним из преимуществ ступенчатого добавле-
ния криозащитного раствора к клеткам является
снижение концентрационных градиентов, возни-
кающих на плазматической мембране. Вырав-
нивание количественных значений коэффициентов
проницаемости плазматических мембран 8-клеточ-
ных эмбрионов мыши для молекул глицерина,
определенных в 10%- и 30%-х растворах этого
криопротектора при двухэтапном добавлении, сви-
детельствует о сохранении полупроницаемых
10ПРОБЛЕМЫ
КРИОБИОЛОГИИ
2004, №1
PROBLEMS
OF CRYOBIOLOGY
2004, №1
References
Biology of mammals development. Methods: Translated from
English / Edited by M. Monk.– Moscow: Mir, 1990.– 406p.
Gordienko E.A., Pushkar N.S. Physical grounds for cell
suspension low temperature preservation.– Kiev: Nauk.
dumka, 1994.– 160p.
Gordienko E.A., Smolyaninova E.I., Kovalenko I.F. Deter-
mination and comparative studying of biophysical parameters
for mice oocytes and embryos in aqueous solutions of
penetrating cryoprotectants // Problems of Cryobiology.–
1998.– N2.– P.27-32.
Isachenko V.V., Grischenko V.I., Ostashko F.I. et al. Ultra-
rapid freezing of rat and cow embryos with no “classical”
equilibration // Problems of Cryobiology.– 1994.– N3.– P. 3-7.
Krivokharchenko A.S., Vilyanovich L.I., Serobyan G.A. et al.
Mice embryos viability after ultra-rapid freezing by different
ways using various cryoprotectants // Problemy repro-
duktsiyi.– 1995.– N4.– P. 13-17.
Kuleshova L.G., Gordienko E.A., Kovalenko I.F. Permeability
of rat hepatocytes’ plasmatic membranes for water molecules
in non-isotonic medium of electrolytes // Biophysical Bulletin.-
2002.– N2(11).– P. 39-42.
Smolyaninova E.I., Khromenkova O.B., Zhernoklev G.V.
Influence of different cryopreservation steps by the method
of ultrarapid freezing on the osmotic stability and morphological
integrity of mice embryos // Problems of Cryobiology.– 2001.–
N2.– P.49-55.
Agca Y., Lin J. et al. Membrane permeability characteristics
of metaphase II mouse oocytes at various temperatures in
the presence of Me2SO // Cryobiology.– 1998.– Vol.36.–
P. 287-300.
Leibo S.P., Oda K. High survival of mouse zygotes and
embryos cooled rapidly or slowly in ethylene glycol plus
polyvinilpyrrolidone // Cryo-Letters.– 1993.– Vol.14.–
P. 133-144.
Jascowsky C.S., Leibo S.P., Mazur P. Glycerol permeability
of fertilized and unfertilized mouse ova // J.Exp.Zool.– 1980.–
Vol.212.– P. 329-341.
Show J.W., Trounson A.O. Effect of dimethyl sulfoxide and
protein concentration on the viability of two-cell mouse
свойств плазматических мембран эмбрионов и
отсутствии в мембране структурных дефектов,
индуцированных осмотическим стрессом. В рабо-
те не было обнаружено достоверного влияния ме-
тода добавления глицерина к эмбрионам на значе-
ние коэффициента фильтрации плазматических
мембран 8-клеточных эмбрионов мыши, хотя при
увеличении начальной концентрации глицерина
наблюдалась тенденция к снижению количест-
венного значения этого параметра. Эта тенденция
сохранялась как для одноэтапного, так и для двух-
этапного методов добавления растворов глице-
рина.
Причина снижения уровня жизнеспособности
8-клеточных эмбрионов мыши при увеличении
времени эквилибрации в среде замораживания до
3 мин остается не совсем понятной. Значения
времени эквилибрации, изученные в нашей работе
недостаточны для проявления токсичного влияния
глицерина указанных концентраций за счет прямого
химического воздействия на клеточные структуры.
Можно предположить, что в этом случае повреж-
дение клеток обусловлено увеличением длитель-
ности пребывания эмбрионов в дегидратированном
состоянии под действием высоких концентраций
компонентов среды замораживания, что приводит
к нарушениям общей интегральной целостности и
взаимодействий внутриклеточных структур.
Выводы
Таким образом, эффективность эксперимен-
тально-теоретического подхода к изучению
конкретных условий криоконсервирования позво-
ляет получить полезную информацию о факторах,
действующих на клетки.
Продолжительность эквилибрации 8-клеточных
эмбрионов мыши в среде замораживания, пред-
шествующей прямому погружению клеток в
жидкий азот, определяет конечную сохранность
клеток. Кратковременное пребывание 8-клеточных
эмбрионов мыши в высококонцентрированном
растворе криоконсервирования сводит к минимуму
токсичное влияние глицерина за счет химического
воздействия на клеточные структуры. Ступен-
чатое добавление возрастающих концентраций
криопротектора к клеткам позволяет сохранить
избирательные свойства плазматических мем-
бран. Снижение уровня жизнеспособности эмбрио-
нов при увеличении длительности их эквилибрации
в консервирующем растворе дают основание
предположить, что основные повреждения клеток
происходят на этапе дегидратации. В свою очередь
это свидетельствует о преобладающем вкладе
осмотического фактора в повреждение клеток при
быстром замораживании.
Conclusions
Thus the efficacy of experimental theoretical
approach to studying the certain cryopreservation
conditions allows getting the important data about the
cell-affecting factors.
The equilibration term for 8-cell mice embryos in a
freezing medium, preceding the direct cell immersion
into liquid nitrogen determines the final cell integrity.
Short-term equilibration of 8-cell mice embryos in
highly concentrated cryopreservation solution allows
us to minimise the glycerol toxic effect due to a
chemical effect on cell structures. Gradual addition of
the increasing cryoprotectant concentrations to cells
gives the possibility to keep selective plasmatic
membrane properties. Viability level reduction in
embryos when increasing the term of their equilibration
at the preservation solution allows to suppose the major
cell damages to occur at the stage of rehydration. It
testifies in its turn to a predominating osmotic factor
contribution into cell damage during a rapid freezing.
1.
2.
3.
4.
5.
6.
7.
8.
9.
10.
11.
11ПРОБЛЕМЫ
КРИОБИОЛОГИИ
2004, №1
PROBLEMS
OF CRYOBIOLOGY
2004, №1
Литература
Биология развития млекопитающих. Методы: Пер. с
англ. / Под ред. М. Манк.– М.: Мир, 1990.– 406 с.
Гордиенко Е.А., Пушкарь Н.С. Физические основы
низкотемпературного консервирования клеточных
суспензий.– Киев: Наук. думка, 1994.– 160 с.
Гордиенко Е.А., Смольянинова Е.И., Коваленко И.Ф.
Определение и сравнительное изучение биофизических
параметров ооцитов и эмбрионов мыши в водных
растворах проникающих криопротекторов // Пробл.
криобиологии.– 1998.– №2.– С.27-32.
Исаченко В.В., Грищенко В.И., Осташко Ф.И. и др.
Сверхбыстрое замораживание эмбрионов крыс и коров
без “классической” эквилибрации // Пробл. криобиологии.–
1994.– №3.– С. 3-7.
Кривохарченко А.С., Вильянович Л.И., Серобян Г.А. и др.
Выживаемость эмбрионов мыши после сверхбыстрого
замораживания разными способами с использованием
различных криопротекторов // Пробл. репродукции.–
1995.– №4.– С. 13-17.
Кулешова Л.Г., Гордиенко Е.А., Коваленко И.Ф. Проница-
емость плазматических мембран гепатоцитов крысы
для молекул воды в неизотонической среде электро-
литов // Біофізичний вісник.– 2002.– №2(11).– С.39-42.
Смольянинова Е.И., Хроменкова О.Б., Жерноклев Г.В.
Влияние различных этапов криоконсервирования
методом сверхбыстрого замораживания на осмоти-
ческую устойчивость и морфофункциональную сохран-
ность эмбрионов мыши // Пробл. криобиологии.– 2001.–
№2.– С. 49-55.
Agca Y., Lin J. et al. Membrane permeability characteristics
of metaphase II mouse oocytes at various temperatures in
the presence of Me2SO // Cryobiology.– 1998.– Vol.36.–
P. 287-300.
Leibo S.P., Oda K. High survival of mouse zygotes and
embryos cooled rapidly or slowly in ethylene glycol plus
polyvinilpyrrolidone // Cryo-Letters.– 1993.– Vol.14.–
P. 133-144.
Jascowsky C.S., Leibo S.P., Mazur P. Glycerol permeability
of fertilized and unfertilized mouse ova // J.Exp.Zool.– 1980.–
Vol.212.– P. 329-341.
Show J.W., Trounson A.O. Effect of dimethyl sulfoxide and
protein concentration on the viability of two-cell mouse
embryos frozen with a rapid freezing technique //
Cryobiology.–1989.-– Vol.26.– P. 413-421.
Toupin C.J., Le Maguer M., McGann L. E. Permeability of
human granulocytes to dimethyl sulfoxide // Cryobiology.–
1989.– Vol.26.– P. 422-430.
Trounson A.O., Peure A., Kirby C. Ultrarapid freezing: a new
low cost and effective method of embryo cryopreservation //
Fertil. Steril.– 1987.– Vol.48.– P. 1121-1128.
Поступила 25.11.2003
embryos frozen with a rapid freezing technique //
Cryobiology.–1989.-– Vol.26.– P. 413-421.
Toupin C.J., Le Maguer M., McGann L. E. Permeability of
human granulocytes to dimethyl sulfoxide // Cryobiology.–
1989.– Vol.26.– P. 422-430.
Trounson A.O., Peure A., Kirby C. Ultrarapid freezing: a new
low cost and effective method of embryo cryopreservation //
Fertil. Steril.– 1987.– Vol.48.– P. 1121-1128.
Accepted in 25.11.2003
1.
2.
3.
4.
5.
6.
7.
8.
9.
10.
11.
12.
13.
12.
13.
|