Влияние криоконсервированного лейкоконцентрата кордовой крови человека на выраженность эндогенной интоксикации при остром гнойном перитоните
Показано, что при экспериментальном остром гнойном перитоните у животных релапаротомия, сочетанное введение ампициллина и криоконсервированного лейкоконцентрата кордовой крови обеспечивают эрадикацию крови от микроорганизмов, выраженное снижение колонизации тонкого кишечника и инфицированности брю...
Збережено в:
| Дата: | 2011 |
|---|---|
| Автори: | , , , , |
| Формат: | Стаття |
| Мова: | Russian |
| Опубліковано: |
Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України
2011
|
| Теми: | |
| Онлайн доступ: | http://dspace.nbuv.gov.ua/handle/123456789/44890 |
| Теги: |
Додати тег
Немає тегів, Будьте першим, хто поставить тег для цього запису!
|
| Назва журналу: | Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine |
| Цитувати: | Влияние криоконсервированного лейкоконцентрата кордовой крови человека на выраженность эндогенной интоксикации при остром гнойном перитоните / К.А. Гольцев, О.М. Бабинец, О.Ю. Кожина, Л.В. Останкова, А.Н. Гольцев // Пробл. криобиологии. — 2011. — Т. 21, № 2. — С. 179-190. — Бібліогр.: 25 назв. — рос., англ. |
Репозитарії
Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine| id |
irk-123456789-44890 |
|---|---|
| record_format |
dspace |
| spelling |
irk-123456789-448902013-06-07T03:07:03Z Влияние криоконсервированного лейкоконцентрата кордовой крови человека на выраженность эндогенной интоксикации при остром гнойном перитоните Гольцев, К.А. Бабинец, О.М. Кожина, О.Ю. Останкова, Л.В. Гольцев, А.Н. Криомедицина, клиническая и экспериментальная трансплантология Показано, что при экспериментальном остром гнойном перитоните у животных релапаротомия, сочетанное введение ампициллина и криоконсервированного лейкоконцентрата кордовой крови обеспечивают эрадикацию крови от микроорганизмов, выраженное снижение колонизации тонкого кишечника и инфицированности брюшной полости патогенными и условно- патогенными бактериями, уменьшение дистрофических и некротических процессов в брюшной полости. Доведено, що при експериментальному гострому гнійному перитоніті у тварин релапаротомія, комбіноване введення ампіциліну та кріоконсервованого лейкоконцентрату кордової крові забезпечують ерадикацію крові від мікроорганізмів, значне зниження колонізації тонкого кишечника та інфікованості черевної порожнини патогенними та умовно-патогенними бактеріями, зменшення дистрофічних і некротичних процесів у черевній порожнині. At experimental acute purulent peritonitis in animals the relaparotomy, combined injection of ampicillin and cryopreserved cord blood leucoconcentrate has been shown to provide eradication of blood from microorganisms, manifested reduction of colonization of small intes-tine and infection of abdominal cavity with pathogenic and opportunistic bacteria, decrease in dystrophic and necrotic processes in abdominal cavity. 2011 Article Влияние криоконсервированного лейкоконцентрата кордовой крови человека на выраженность эндогенной интоксикации при остром гнойном перитоните / К.А. Гольцев, О.М. Бабинец, О.Ю. Кожина, Л.В. Останкова, А.Н. Гольцев // Пробл. криобиологии. — 2011. — Т. 21, № 2. — С. 179-190. — Бібліогр.: 25 назв. — рос., англ. http://dspace.nbuv.gov.ua/handle/123456789/44890 615.361.013.68.014.41:612.017.1:616.381-002 ru Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України |
| institution |
Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine |
| collection |
DSpace DC |
| language |
Russian |
| topic |
Криомедицина, клиническая и экспериментальная трансплантология Криомедицина, клиническая и экспериментальная трансплантология |
| spellingShingle |
Криомедицина, клиническая и экспериментальная трансплантология Криомедицина, клиническая и экспериментальная трансплантология Гольцев, К.А. Бабинец, О.М. Кожина, О.Ю. Останкова, Л.В. Гольцев, А.Н. Влияние криоконсервированного лейкоконцентрата кордовой крови человека на выраженность эндогенной интоксикации при остром гнойном перитоните |
| description |
Показано, что при экспериментальном остром гнойном перитоните у животных релапаротомия, сочетанное введение
ампициллина и криоконсервированного лейкоконцентрата кордовой крови обеспечивают эрадикацию крови от микроорганизмов,
выраженное снижение колонизации тонкого кишечника и инфицированности брюшной полости патогенными и условно-
патогенными бактериями, уменьшение дистрофических и некротических процессов в брюшной полости. |
| format |
Article |
| author |
Гольцев, К.А. Бабинец, О.М. Кожина, О.Ю. Останкова, Л.В. Гольцев, А.Н. |
| author_facet |
Гольцев, К.А. Бабинец, О.М. Кожина, О.Ю. Останкова, Л.В. Гольцев, А.Н. |
| author_sort |
Гольцев, К.А. |
| title |
Влияние криоконсервированного лейкоконцентрата кордовой крови человека на выраженность эндогенной интоксикации при остром гнойном перитоните |
| title_short |
Влияние криоконсервированного лейкоконцентрата кордовой крови человека на выраженность эндогенной интоксикации при остром гнойном перитоните |
| title_full |
Влияние криоконсервированного лейкоконцентрата кордовой крови человека на выраженность эндогенной интоксикации при остром гнойном перитоните |
| title_fullStr |
Влияние криоконсервированного лейкоконцентрата кордовой крови человека на выраженность эндогенной интоксикации при остром гнойном перитоните |
| title_full_unstemmed |
Влияние криоконсервированного лейкоконцентрата кордовой крови человека на выраженность эндогенной интоксикации при остром гнойном перитоните |
| title_sort |
влияние криоконсервированного лейкоконцентрата кордовой крови человека на выраженность эндогенной интоксикации при остром гнойном перитоните |
| publisher |
Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України |
| publishDate |
2011 |
| topic_facet |
Криомедицина, клиническая и экспериментальная трансплантология |
| url |
http://dspace.nbuv.gov.ua/handle/123456789/44890 |
| citation_txt |
Влияние криоконсервированного лейкоконцентрата кордовой крови
человека на выраженность эндогенной интоксикации
при остром гнойном перитоните / К.А. Гольцев, О.М. Бабинец, О.Ю. Кожина, Л.В. Останкова, А.Н. Гольцев // Пробл. криобиологии. — 2011. — Т. 21, № 2. — С. 179-190. — Бібліогр.: 25 назв. — рос., англ. |
| work_keys_str_mv |
AT golʹcevka vliâniekriokonservirovannogolejkokoncentratakordovojkrovičelovekanavyražennostʹéndogennojintoksikaciipriostromgnojnomperitonite AT babinecom vliâniekriokonservirovannogolejkokoncentratakordovojkrovičelovekanavyražennostʹéndogennojintoksikaciipriostromgnojnomperitonite AT kožinaoû vliâniekriokonservirovannogolejkokoncentratakordovojkrovičelovekanavyražennostʹéndogennojintoksikaciipriostromgnojnomperitonite AT ostankovalv vliâniekriokonservirovannogolejkokoncentratakordovojkrovičelovekanavyražennostʹéndogennojintoksikaciipriostromgnojnomperitonite AT golʹcevan vliâniekriokonservirovannogolejkokoncentratakordovojkrovičelovekanavyražennostʹéndogennojintoksikaciipriostromgnojnomperitonite |
| first_indexed |
2025-07-04T03:27:47Z |
| last_indexed |
2025-07-04T03:27:47Z |
| _version_ |
1836685373138272256 |
| fulltext |
179
* Автор, которому необходимо направлять корреспонденцию:
ул. Переяславская, 23, г. Харьков, Украина 61015; тел.: (+38
057) 373-57-89, факс: (+38 057) 373-30-84, электронная почта:
cryopato@rambler.ru
* To whom correspondence should be addressed: 23,
Pereyaslavskaya str., Kharkov, Ukraine 61015; tel.: +380 57 373
5789, fax: +380 57 373 3084, e-mail: cryopato@rambler.ru
Institute for Problems of Cryobiology and Cryomedicine of the Na-
tional Academy of Sciences of Ukraine, Kharkov, Ukraine
Институт проблем криобиологии и криомедицины
НАН Украины, г. Харьков
В последнее время эндогенную интоксикацию
считают одной из основных причин развития
многих патологических процессов, различных
инфекционных заболеваний, в частности перито-
нита [4, 7, 10, 13, 19].
В патогенезе перитонита большую роль играет
нарушение барьерной функции стенки тонкой
кишки. Доказано, что микроорганизмы кишечника
через мезентериальные лимфатические узлы и
воротную вену попадают в общий кровоток, вызы-
вая развитие инфекции, сепсиса и эндогенной
интоксикации [25, 26]. При попадании микроорга-
низмов в брюшину или при ее травматическом
повреждении развивается как местное воспаление,
так и комплексная реакция всего организма, сопро-
вождающаяся нарушением всех его функций по
типу “порочного круга”. Вследствие этого происхо-
дят нарушение целостности органов брюшной
Recently endogenous intoxication has been con-
sidered as one of the main causes of development
of many pathological processes, different infection
diseases, in particular, peritonitis [4, 7, 10, 13, 19].
In peritonitis pathogenesis the disordered barrier
function of small intestine wall plays a major role. It
has been proved that microorganisms in a bowel
through mesenteric lymph nodes and portal vein en-
ter into general blood flow, causing an infection, sepsis
and endogenous intoxication [25, 26]. In case of mic-
robial contamination of the peritoneum, or its trauma,
both local inflammation and a complex response of
the whole organism are developed and accompanied
by the impairments of its all functions according to
the "vicious circle" type. As a result, there are the
disorders in integrity of peritoneal cavity organs; en-
teroparesis; intoxication, changed indices of aqueous-
electrolyte exchange and redox state; immune de-
problems
of cryobiology
Vol. 21, 2011, №2
проблемы
криобиологии
Т. 21, 2011, №2
УДК 615.361.013.68.014.41:612.017.1:616.381-002
К.А. ГОЛЬЦЕВ*, О.М. БАБИНЕЦ, О.Ю. КОЖИНА, Л.В. ОСТАНКОВА, А.Н. ГОЛЬЦЕВ
Влияние криоконсервированного лейкоконцентрата кордовой крови
человека на выраженность эндогенной интоксикации
при остром гнойном перитоните
UDC 615.361.013.68.014.41:612.017.1:616.381-002
K.A. GOLTSEV*, O.M. BABINETS, O.YU. KOZHINA, L.V. OSTANKOVA, A.N. GOLTSEV
Effect of Cryopreserved Human Cord Blood Leucoconcentrate
on Manifestation of Endogenous Intoxication
at Acute Purulent Peritonitis
Показано, что при экспериментальном остром гнойном перитоните у животных релапаротомия, сочетанное введение
ампициллина и криоконсервированного лейкоконцентрата кордовой крови обеспечивают эрадикацию крови от микроорганизмов,
выраженное снижение колонизации тонкого кишечника и инфицированности брюшной полости патогенными и условно-
патогенными бактериями, уменьшение дистрофических и некротических процессов в брюшной полости.
Ключевые слова: криоконсервированный лейкоконцентрат кордовой крови, гнойный перитонит, релапаротомия, воспаление
брюшины, патогенные и условно-патогенные бактерии.
Доведено, що при експериментальному гострому гнійному перитоніті у тварин релапаротомія, комбіноване введення
ампіциліну та кріоконсервованого лейкоконцентрату кордової крові забезпечують ерадикацію крові від мікроорганізмів,
значне зниження колонізації тонкого кишечника та інфікованості черевної порожнини патогенними та умовно-патогенними
бактеріями, зменшення дистрофічних і некротичних процесів у черевній порожнині.
Ключові слова: кріоконсервований лейкоконцентрат кордової крові, гнійний перитоніт, релапаротомія, запалення черевини,
патогенні та умовно-патогенні бактерії.
At experimental acute purulent peritonitis in animals the relaparotomy, combined injection of ampicillin and cryopreserved cord
blood leucoconcentrate has been shown to provide eradication of blood from microorganisms, manifested reduction of colonization of
small intes-tine and infection of abdominal cavity with pathogenic and opportunistic bacteria, decrease in dystrophic and necrotic
processes in abdominal cavity.
Key words: cryopreserved cord blood leucoconcentrate, purulent peritonitis, relaparotomy, peritoneal inflammation, pathogenic
and opportunistic bacteria.
180 problems
of cryobiology
Vol. 21, 2011, №2
проблемы
криобиологии
Т. 21, 2011, №2
полости; парез кишечника; интоксикация; измене-
ние показателей водно-электролитного обмена и
кислотно-основного состояния; иммунодепрессия;
расстройство гемодинамики, микроциркуляции и
тканевого дыхания с возникновением гипоксии;
нарушение всех видов обмена с последующим
развитием синдрома полиорганной недостаточ-
ности [2, 3, 10, 13]. При классификации перитонита
учитывают этиологический фактор, способ проник-
новения инфекции в брюшную полость, характер
экссудата, распространенность, стадию и клиничес-
кое течение заболевания [17]. В начальной (реак-
тивной) стадии перитонита интоксикация организма
обусловлена продуктами деградации белка, кле-
точных структур очага воспаления, медиаторами
воспаления, микроорганизмами, а также продук-
тами их жизнедеятельности и распада. Поступление
микроорганизмов в кровь приводит к напряжению
защитно-компенсаторных механизмов организма.
При этом изменяется двигательная функция ки-
шечника. В связи с нарушением барьерной функции
кишечной стенки, угнетением секреторного имму-
нитета в кишечнике, развивающимся дисбактерио-
зом, возникновением симбионтного пищеварения
сам кишечник и становится источником интокси-
кации и токсемии [2, 11, 12]. Чрезмерная колониза-
ция бактериями тонкой кишки – один из основных
механизмов развития синдрома эндогенной инто-
ксикации [16, 19]. При перитоните видовой состав
и количественное содержание колонизированных
бактерий тонкой кишки приближаются к показате-
лям микробной флоры толстой кишки [15].
Лечение эндогенной интоксикации при перито-
ните, осложняющей его течение, – одна из наиболее
сложных и актуальных проблем современной ме-
дицины [20, 24]. Устранение причины перитонита и
борьба с интоксикацией являются решающим мо-
ментом в лечении этого заболевания [2–4, 13]. В
комплексной терапии перитонитов одними из глав-
ных мер являются применение антибиотиков и
проведение мероприятий по дезинтоксикации [2, 4,
15, 20]. Вопрос об эффективности иммуномодули-
рующей терапии остается открытым [3, 5]. Ранее
был показан терапевтический эффект от введения
клеток кордовой крови [1, 22, 23] при септических и
воспалительных заболеваниях, однако возмож-
ность применения криоконсервированной кордовой
крови при перитонитах не изучалась.
Цель работы – сравнительная оценка клиничес-
кого течения микробного обсеменения, патоморфо-
логических изменений ткани брюшной полости при
экспериментальном остром гнойном перитоните у
крыс после лечения антибиотиком либо в сочетании
с криоконсервированным лейкоконцентратом
кордовой крови человека (ЛКК).
pression, disorder of microcirculation, hemodynamics
and tissue respiration with hypoxia appearance; dis-
orders of all types of metabolism with following de-
velopment of the syndrome of polyorgan insufficiency
[2, 3, 10, 13]. When classifying peritonitis there are
taken into account the etiological factor, way of in-
fection penetration into a peritoneal cavity, charac-
ter of exudates, prevalence, stage and clinical course
of the disease [17]. At an initial (reactive) stage of
peritonitis an organism intoxication is stipulated with
the products of protein degradation, cell structures of
inflammation focus, inflammation mediators, micro-
organisms, as well as by the products of their vital
activity and decay. Penetration of microorganisms
into blood results in the straining of protective and
compensatory mechanisms of an organism. Herewith
there is a disorder in bowel motor function. Due to
the impairment of intestinal barrier function, suppres-
sion of secretory immunity in a bowel, developing
dysbacteriosis, appearance of symbiotic digestion the
bowel itself becomes the source of intoxication and
toxemia [2, 11, 12]. Excessive colonization of small
intestine with bacteria is one of basic mechanisms
of endogenous intoxication syndrome development
[16, 19]. At peritonitis the composition of species and
quantitative content of colonized bacteria of small
intestine approach to those of large bowel microbial
flora [15].
Treatment of endogenous intoxication aggravating
the course of peritonitis is one of the most compli-
cated and actual tasks of current medicine [20, 24].
The elimination of the peritonitis cause and control-
ling the intoxication are the decisive moments in treat-
ing this disease [2–4, 13]. In a combined therapy of
peritonites one of the main links is the application of
antibiotics and detoxication measures [2, 4, 15, 20].
The question about the efficiency of immune modu-
lating therapy has remained open [3, 5]. Recently re-
ports there was shown the therapeutic effect of the
introduction of cord blood cells [1, 22, 23] at septic
and inflammatory diseases, however, the possibility
of application of cryopreserved cord blood at perito-
nitis has not been studied.
The research aim is to comparatively assess the
clinical course of microbial contamination, pathomor-
phological changes of abdominal cavity at experimen-
tal acute purulent peritonitis in rats after antibiotic
treatment or in combination with cryopreserved hu-
man cord blood leuconcentrate (CBL).
Materials and methods
The investigations were performed in 6-month-old
Wistar rats of 160–180 g weight in accordance with
General Ethical Principles of Experiments in Animals,
approved by National Congress on Bioethics (Kiev,
181 problems
of cryobiology
Vol. 21, 2011, №2
проблемы
криобиологии
Т. 21, 2011, №2
Материалы и методы
Работа выполнена на 6-месячных крысах линии
Вистар массой 160–180 г в соответствии с “Обще-
этическими принципами экспериментов на живот-
ных”, одобренными Национальным конгрессом по
биоэтике (Киев, 2003 г.) [8] и согласованными с
положениями “Европейской Конвенции о защите
позвоночных животных, используемых для экспе-
риментальных и других научных целей” (Страсбург,
1985 г.). Лабораторные животные содержались в
условиях вивария ИПКиК НАН Украины и были
использованы в экспериментальной работе согласно
рекомендациям [9].
Моделировали острый гнойный перитонит
(ОГП) путем перевязки и отсечения червеобразно-
го отростка, который оставляли в брюшной полости
[18]. Крыс оперировали под общим тиопенталовым
наркозом. Лейкоконцентрат кордовой крови чело-
века получали путём пассивной седиментации эрит-
роцитов в градиенте плотности с добавлением
полиглюкина [21] и криоконсервировали на про-
граммном замораживателе УОП-6 (СКТБ с ОП
ИПКиК НАН Украины) по двухэтапной программе,
разработанной и запатентованной в ИПКиК НАН
Украины [21]. Суспензию размораживали на водя-
ной бане при температуре 40–41°С [6].
Все крысы были разделены на 5 групп: 1 – ин-
тактный контроль; 2 – животные с ОГП, которым че-
рез 24 ч после операции проводили релапаротомию
и санацию брюшной полости 0,02%-м водным
раствором фурацилина; 3 – крысы с ОГП, которым
после релапаротомии внутримышечо вводили ам-
пициллин (“Дарница”, Украина) в дозе 40 мг/кг мас-
сы тела; 4 – животные с ОГП, которым после
релапаротомии одновременно с инъекцией ампи-
циллина внутривенно вводили ЛКК в объеме 0,3 мл
(5–6×106 клеток); 5 – крысы с ОГП, которым про-
водили релапаротомию и внутривенно вводили ЛКК
в объеме 0,3 мл без антибиотика.
Проводили комплексное бактериологическое
исследование содержимого тонкой кишки, венозной
крови, перитонеального экссудата. Венозную кровь
у крыс получали из хвостовой вены. Выделение,
идентификацию и количественное определение
содержания микробов в 1 мл экссудата осущест-
вляли по классическим методикам, утвержденным
МЗ Украины [4, 7, 11, 12]. Чувствительность выде-
ленных изолятов к антибиотику определяли диско-
диффузионным методом Кирби-Бауэра [15].
Морфологическое исследование париетальной
брюшины проводили с использованием гистоло-
гических и морфометрических методов [14]. Ткань
фиксировали в 10%-м нейтральном формалине.
Серийные срезы толщиной 7–9 мкм окрашивали
гематоксилином и эозином, азур-II эозином по Рома-
новскому [14]. Анализировали гистологические
препараты в световом микроскопе “Primo Star”
2003) and coordinated with the statements of Euro-
pean Convention on the Protection of Vertebrate
Animals Used for Experimental and Other Purposes
(Strasbourg, 1985). Laboratory animals were kept un-
der vivarium conditions of the IPC&C of the National
Academy of Sciences of Ukraine and used in the re-
search according to the recommendations [9].
Acute purulent peritonitis (APP) was simulated by
means of ligation and excision of cecal appendage,
which was left in abdominal cavity [18]. The surgery
in rats was performed with general thiopental nar-
cosis. Human cord blood leucoconcentrate (CBL)
was obtained by passive sedimentation of erythro-
cytes in polyglucinum density gradient [21] and was
cryopreserved by means of programmable freezer
UOP-6 (produced by Special Design and Construc-
tion Bureau with Experimental Unit of the IPC&C)
according to two-step program designed and patented
at IPC&C the National Academy of Sciences of
Ukraine [21]. The suspension was thawed on water
bath at 40–41°C [6].
All rats were divided into 5 groups: 1 – intact
control; 2 – animals with APP, which 24 hrs later
the surgery were treated with laparotomy and sana-
tion of abdominal cavity with 0.02% Furacinum
aqueous solution; 3 – animals with APP, which af-
ter relaparotomy were intramuscularly introduced
with Ampicillin in a dose of 40 mg/kg of body mass;
4 – animals with APP, which after relaparotomy si-
multaneously with Ampicillin injection intravenously
were introduced with CBL in a volume of 0.3 ml (5–
6×106 cells); 5 – the rats with APP, to those rela-
parotomy was performed and intravenously injected
with CBL in a volume of 0.3 ml (5–6×106 cells) with
no antibiotic.
There was performed a complex bacteriological
study of the contents of small intestine, venous blood,
peritoneal exudates. Venous blood in rats was taken
from a caudal vein. Isolation, identification and quan-
titative examination of the content of microbes in 1 ml
of exudates was accomplished according to classic
methods, approved by the Ministry of Health Care
of Ukraine [4, 7, 11, 12]. Sensitivity of isolates to an-
tibiotic was found by Kirby-Bauer disk diffusion sus-
ceptibility test [15].
Perietal peritoneum was morphologically studied
using histological and morphometric methods [14].
The tissue was fixed in 10% neutral formalin. Mul-
tiple sections of 7–9 mm width were stained with
hematoxylin and eosin, azur-II eosin according to
Romanowsky [14]. Histological analysis of sections
was performed using light microscopes Primo Star
(Carl Zeiss) and LOMO-2. Morphometry of necro-
sis foci areas and quantitation of relative amount (in
shares) of neutrophil polymorphonuclear leukocytes
(NPNL) in infiltrates was done using ocular microm-
eter.
182 problems
of cryobiology
Vol. 21, 2011, №2
проблемы
криобиологии
Т. 21, 2011, №2
(“Carl Zeiss”, Германия) и ЛОМО-2. Морфометри-
ческую оценку площади очагов некроза и подсчет
относительного количества (указано в долях) ней-
трофильных полиморфоядерных лейкоцитов
(НПЯЛ) осуществляли с использованием окуляр-
микрометра по трем полям зрения.
Статистическую обработку эксперименталь-
ных данных проводили по методу Стьюдента-
Фишера с помощью программы Statistica 7.0, (“Stat
Soft Inc.”), адаптированной к поставленным зада-
чам и специфике данных.
Результаты и обсуждение
При бактериологическом исследовании при-
стеночной миклофлоры тонкого кишечника после
операции было установлено выраженное измене-
ние микробного пейзажа по сравнению с контро-
лем. Так, в норме в тонком кишечнике у крыс были
обнаружены преимущественно бифидобактерии,
лактобактерии в концентрации 105–108 КОЕ/мл и
эубактерии, энтерококки, порфиромонады, анаэроб-
ные кокки в концентрации 103–105 КОЕ/мл, что
соответствует данным литературы [9, 12].
Через сутки после операции (группа 2) в муцине
тонкого кишечника были выявлены бактерии:
Escherichia coli, рода Enterococcus, Staphylococ-
cus, Proteus, Klebsiella, Bacteroides и Fusobacte-
rium (табл. 1).
На 3-и сутки после операции содержание ука-
занных бактерий в муцине тонкого кишечника
повышалось в 10–100 раз и сохранялось в этой
концентрации у выживших животных в течение
всего срока наблюдения.
У выживших животных, которым проводили
релапаротомию и санацию брюшной полости
раствором фурацилина (группа 2), лишь на 5-е
сутки после проведения манипуляций концентрация
E. coli и Enterococcus снизилась в 100 раз.
У выживших животных, которым проводили
релапаротомию и внутримышечное введение
ампициллина (группа 3), на 5-е сутки концентрация
бактерий, за исключением родов Klebsiella и
Fusobacterium, снижалась в 10–100 раз.
В группе животных, которым проводили релапа-
ротомию и вводили ампициллин вместе с ЛКК
(группа 4), на 5-е сутки после релапаротомии кон-
центрация всех видов бактерий в тонком кишечнике
снижалась в 10–100 раз. При этом достоверное
уменьшение числа микробных клеток наблюдали
на 1–3-и сутки.
У животных группы 5, которым проводили
релапаротомию и вводили ЛКК, на 5-е сутки после
релапаротомии в 10–100 раз снизилась концент-
рация E. coli и бактерий родов Enterococcus и
Bacteroides.
При бактериологическом исследовании пери-
тонеального экссудата у крыс с ОГП были вы-
Experimental data were statistically processed
according to Student-Fisher method by means of
Statistica 7.0 software (Stat Soft Inc.), adapted for
the tasks set and the data specificity.
Results and discussion
Bacteriological study of parietal microflora of
small intestine after surgery revealed a manifested
change of microbic picture if compared with the
control. So in the norm in small intestine of rats there
were revealed mostly bifidobacteria, lactobacteria in
concentration of 105–108 CFU/ml and eubacteria,
enterococci, porfiromonadaceae, anaerobic cocci in
concentration of 103–105 CFU/ml, that is in the ac-
cordance with the published data [9, 12] .
In 24 hrs after surgery (group 2) in mucin of small
intestine the following bacteria were found: Escheri-
chia coli; Enterococcus; Staphylococcus; Proteus;
Klebsiella; Bacteriodes and Fusobacterium (Ta-
ble 1).
To the 3rd day after surgery the content of the
mentioned bacteria in small intestine mucin increased
in 10–100 times and kept in this concentration in the
survived animals for the whole observation term.
In the survived animals in which a relaparotomy
and sanation of abdominal cavity with Furacinum so-
lution (group 2) were performed, just to the 5th day
after manipulations the concentration of E.coli and
Enterococcus reduced in 100 times.
In the survived animals to which the relaparotomy
and intramuscular injection of Ampicillin were done
(group 3) to the 5th day the concentration of bacte-
ria excluding Klebsiella and Fusobacterium, reduced
in 10–100 times.
In the group of animals with relaparotomy and
Ampicillin and CBL injection (group 4) to the 5th day
after relaparotomy the concentration of all the types
of bacteria in small intestine decreased in 10–100 ti-
mes. Herewith the statistically significant number of
microbic cells was observed to the 1st–3rd days.
In the animals of the group 5 with relaparotomy
and CBL injection to the 5th day after relaparotomy
the concentration of E.coli and bacteria of Entero-
coccus and Bacteriodes reduced in 10–100 times.
During bacteriological study of peritoneal exudate
in the rats with APP the same types of bacteria as
those from small intestine were isolated. Highest con-
centrations were found for following bacteria: E.coli,
Enterococcus and Staphylococcus (Table 2). In the
animals of the groups 2 and 3 the species composi-
tion of microflora of peritoneal exudates during 5 days
after relaparotomy was not changed, but the concen-
tration of bacteria decreased statistically and signifi-
cantly. In group 4 the concentration of bacteria even
in 24 hrs after relaparotomy statistically and signifi-
cantly reduced. To the 3rd day Klebsiella bacteria
were absent and to the 5th day Bacteriodes ones.
хынтовижаппурГ
slaminafopuorG
ымзинагрооркиМ
Mi smsinagroorc
лм/ЕОK,йиреткабовтсечилоK
lm/UFC,airetcabforebmuN
елсопиктус1
иицарепо
yregrusretfayad1
елсопиктус1
иимоторапалер
retfayad1
ymotorapaler
елсопкотус3
иимоторапалер
retfasyad3
ymotorapaler
елсопкотус5
иимоторапалер
retfasyad5
ymotorapaler
)ьлортнок(яанткатнИ
lortnoctcatnI
rehcsE i ilocaihc )2,0±6,1( × 01 8 )3,0±0,3( × 01 9 )2,0±1,5( × 01 01 )2,0±0,4( × 01 01
ppssuccocoretnE )3,0±1,4( × 01 7 )2,0±0,2( × 01 8 )3,0±1,4( × 01 9 )2,0±3,1( × 01 9
ppssuccocolyhpatS )2,0±0,3( × 01 4 )2,0±7,3( × 01 6 )3,0±9,2( × 01 7 )3,0±1,5( × 01 7
ppssuetorP )2,0±5,2( × 01 3 )3,0±1,4( × 01 5 )2,0±5,5( × 01 6 )2,0±0,2( × 01 6
ppsalleisbelK )2,0±8,1( × 01 3 )2,0±4,4( × 01 5 )3,0±8,2( × 01 6 )3,0±2,7( × 01 6
ppssedioretcaB )2,0±4,2( × 01 01 )2,0±0,3( × 01 11 )3,0±2,7( × 01 11 )3,0±8,3( × 01 11
ppsmuiretcabosuF )2,0±2,3( × 01 8 )2,0±6,3( × 01 01 )2,0±2,4( × 01 11 )3,0±0,6( × 01 01
ПГО
PPA
rehcsE i ilocaihc - )3,0±8,1( × 01 9 )3,0±2,3( × 01 9 )3,0±6,1( × 01 7
ppssuccocoretnE - )3,0±2,6( × 01 8 )3,0±6,4( × 01 8 )2,0±1,5( × 01 6
ppssuccocolyhpatS - )2,0±2,4( × 01 4 )3,0±8,4( × 01 11 )3,0±7,3( × 01 4
ppssuetorP - )3,0±2,5( × 01 5 )3,0±5,2( × 01 5 )3,0±4,2( × 01 5
ppsalleisbelK - )3,0±8,4( × 01 5 )4,0±9,3( × 01 5 )2,0±0,4( × 01 5
ppssedioretcaB - )3,0±9,2( × 01 11 )2,0±4,3( × 01 11 )3,0±2,1( × 01 11
ppsmuiretcabosuF - )3,0±0,4( × 01 01 )3,0±6,3( × 01 01 )2,0±5,1( × 01 01
ниллиципмА+ПГО
pmA+PPA ci nilli
rehcsE i ilocaihc - )3,0±5,2( × 01 9 )3,0±1,4( × 01 8 )3,0±8,2( × 01 7
ppssuccocoretnE - )2,0±0,5( × 01 7 )3,0±9,3( × 01 6 )3,0±1,1( × 01 6
ppssuccocolyhpatS - )2,0±2,1( × 01 7 )3,0±5,4( × 01 3 )2,0±4,1( × 01 3
ppssuetorP - )3,0±2,3( × 01 5 )3,0±8,3( × 01 5 )3,0±2,6( × 01 4
ppsalleisbelK - )3,0±2,7( × 01 4 )2,0±1,1( × 01 4 )3,0±4,3( × 01 4
ppssedioretcaB - )3,0±2,5( × 01 01 )3,0±1,3( × 01 9 )3,0±5,8( × 01 8
ppsmuiretcabosuF - )3,0±9,2( × 01 01 )3,0±8,1( × 01 01 )20,0±5,0( × 01 01
+ниллиципмА+ПГО
KKЛ
pmA+PPA ci +nilli
LBC
rehcsE i ilocaihc - )3,0±2,4( × 01 7 )3,0±1,3( × 01 6 )3,0±8,2( × 01 6
ppssuccocoretnE - )2,0±9,4( × 01 4 )3,0±2,3( × 01 4 )3,0±0,3( × 01 4
ppssuccocolyhpatS - )3,0±4,6( × 01 6 )2,0±8,3( × 01 5 )3,0±4,4( × 01 5
ppssuetorP - )3,0±8,5( × 01 4 )3,0±4,4( × 01 4 )3,0±0,4( × 01 3
ppsalleisbelK - )3,0±2,1( × 01 5 )3,0±4,3( × 01 4 )2,0±0,1( × 01 4
ppssedioretcaB - )3,0±2,4( × 01 01 )3,0±8,3( × 01 9 )3,0±3,5( × 01 8
ppsmuiretcabosuF - )3,0±3,4( × 01 01 )2,0±5,1( × 01 01 )3,0±9,4( × 01 8
183 problems
of cryobiology
Vol. 21, 2011, №2
проблемы
криобиологии
Т. 21, 2011, №2
Таблица 1. Показатели пристеночной микрофлоры тонкого кишечника крыс с ОГП при различных методах терапии
Table 1. Indices of parietal microflora of small intestine of rats with APP under different treatment methods
хынтовижаппурГ
slaminafopuorG
ымзинагрооркиМ
Mi smsinagroorc
лм/ЕОK,йиреткабовтсечилоK
lm/UFC,airetcabforebmuN
елсопиктус1
иицарепо
yregrusretfayad1
елсопиктус1
иимоторапалер
retfayad1
ymotorapaler
елсопкотус3
иимоторапалер
retfasyad3
ymotorapaler
елсопкотус5
иимоторапалер
retfasyad5
ymotorapaler
KKЛ+ПГО
LBC+PPA
rehcsE i ilocaihc - )3,0±2,4( × 01 7 )3,0±1,3( × 01 6 )3,0±8,2( × 01 6
ppssuccocoretnE - )3,0±6,3( × 01 9 )3,0±1,4( × 01 8 )3,0±7,3( × 01 7
ppssuccocolyhpatS - )2,0±2,5( × 01 8 )3,0±4,3( × 01 7 )2,0±9,2( × 01 7
ppssuetorP - )3,0±0,6( × 01 4 )3,0±1,4( × 01 4 )3,0±3,1( × 01 4
ppsalleisbelK - )3,0±8,3( × 01 5 )3,0±9,2( × 01 5 )3,0±8,2( × 01 5
ppssedioretcaB - )3,0±9,3( × 01 5 )3,0±2,4( × 01 5 )3,0±0,2( × 01 5
ppsmuiretcabosuF - )3,0±2,3( × 01 11 )3,0±1,4( × 01 01 )3,0±6,3( × 01 9
184 problems
of cryobiology
Vol. 21, 2011, №2
проблемы
криобиологии
Т. 21, 2011, №2
делены такие же виды бактерий, как и из тонкого
кишечника. В наиболее высоких концентрациях
были выделены E. coli, бактерии родов Enterococ-
cus и Staphylococcus (табл. 2). У животных групп
2 и 3 видовой состав микрофлоры перитонеального
экссудата в течение 5-и суток после релапаротомии
не изменялся, однако концентрация бактерий
достоверно снизилась. В группе 4 концентрация
бактерий уже через сутки после релапаротомии
достоверно снижалась. На 3-и сутки отсутствовали
бактерии рода Klebsiella, а на 5-е – Bacteroides.
В группе 5 на 5-е сутки после релапаротомии
видовой состав микрофлоры перитонеального
экссудата не изменился, а концентрация бактерий
достоверно снизилась.
Из венозной крови у крыс с ОГП были выде-
лены микроорганизмы трех видов: E. coli, S. aureus
и рода Bacteroides. У животных группы 2 концент-
рация бактерий в крови на 1-е сутки после операции
составила 104–107 КОЕ/мл , на 3-е сутки повыси-
лась до 105–109 КОЕ/мл, на 5-е сутки снизилась
до 102–104 КОЕ/мл (табл. 3). В группе 3 через
сутки после релапаротомии она составляла 104–
108 КОЕ/мл, снижаясь на 3-и сутки до 102–107, а
на 5-е – до 102–103 КОЕ/мл.
В группе 4 через сутки после релапаротомии
концентрация бактерий снизилась до 103 КОЕ/мл,
на 3-и сутки концентрация E. coli и S. aureus – до
102 КОЕ/мл, а бактерии рода Bacteroides не
выделялись. На 5-е сутки у крыс этой группы была
установлена эрадикация венозной крови от всех
бактерий.
В группе 5 концентрация бактерий на 3-е сутки
после релапаротомии снижалась до 102–106 КОЕ/мл,
а на 5-е сутки – до 102–103 КОЕ/мл.
Продолжение таблицы 1
Table 1. (Continued from previous page)
In group 5 to the 5th day after relaparotomy the
species composition of microflora of peritoneal exu-
date was not altered and concentration of bacteria
statistically and significantly reduced.
In venous blood of rats with APP the microor-
ganisms of three types were found: E.coli, S. aureus
and Bacteriodes. In the animals of group 2 the con-
centration of bacteria in blood to the 1st day after sur-
gery made 104–107 CFU/ml, to the 3rd day it in-
creased up to 105–109 CFU/ml, to the 5th day it re-
duced down to 102–104 CFU/ml (Table 3). In group
3 in 24 hrs after relaparotomy it made 104–
108 CFU/ml reducing to the 3rd day down to 102–107
and to 102–103 CFU/ml to the 5th day.
In group 4 in 24 hrs after relaparotomy the con-
centration of bacteria reduced down to 103 CFU/ml,
to the 3rd day the concentration of E.coli and
S. aureus decreased down to 102 CFU/ml and bac-
teria of Bacteriodes species were not isolated. To
the 5th day in the rats of this group there was found
an eradication of venous blood from all the bacteria.
In the group 5 the concentration of bacteria to the
3rd day after relaparotomy reduced down to 102–106
CFU/ml and to the 5th day – down to 102–103 CFU/ml.
The presented data about parietal microflora of
small intestine, peritoneal exudate and venous blood
of experimental animals testify to the fact that the
used by us model of acute peritonitis allowed to re-
produce a classic from the point of view of current
concepts pyoseptic mixed infection. As the result of
the surgery a small intestine microflora changed quali-
tatively and quantitatively. Its colonization in high ti-
tres with pathogenic and opportunistic bacteria of
Enterobacteriaceae family, asporogenic anaerobic
bacteria, gram-positive bacteria of Staphylococcus
хынтовижаппурГ
slaminafopuorG
ымзинагрооркиМ
Mi smsinagroorc
лм/ЕОK,йиреткабовтсечилоK
lm/UFC,airetcabforebmuN
елсопиктус1
иицарепо
yregrusretfayad1
елсопиктус1
иимоторапалер
retfayad1
ymotorapaler
елсопкотус3
иимоторапалер
retfasyad3
ymotorapaler
елсопкотус5
иимоторапалер
retfasyad5
ymotorapaler
)ьлортнок(яанткатнИ
lortnoctcatnI
rehcsE i ilocaihc )3,0±5,2( × 01 9 )3,0±7,4( × 01 9 )3,0±4,3( × 01 9 )2,0±8,2( × 01 7
ppssuccocoretnE )2,0±9,3( × 01 6 )3,0±1,5( × 01 6 )3,0±9,4( × 01 6 )3,0±2,5( × 01 6
ppssuccocolyhpatS )3,0±1,4( × 01 6 )3,0±3,3( × 01 8 )3,0±2,4( × 01 8 )3,0±6,5( × 01 6
ppssuetorP )3,0±2,7( × 01 2 )2,0±7,4( × 01 4 )3,0±9,3( × 01 4 )3,0±1,5( × 01 4
ppsalleisbelK )3,0±4,4( × 01 2 )3,0±8,5( × 01 2 )3,0±9,4( × 01 2 )3,0±5,3( × 01 2
ppssedioretcaB )2,0±1,3( × 01 5 )3,0±2,4( × 01 4 )2,0±9,3( × 01 4 )3,0±3,6( × 01 4
ppsmuiretcabosuF )3,0±2,7( × 01 6 )3,0±3,5( × 01 6 )3,0±3,4( × 01 5 )3,0±9,2( × 01 5
ПГО
PPA
rehcsE i ilocaihc - )3,0±8,2( × 01 6 )3,0±1,7( × 01 5 )3,0±3,3( × 01 5
ppssuccocoretnE - )3,0±2,4( × 01 4 )3,0±4,5( × 01 4 )3,0±9,3( × 01 3
ppssuccocolyhpatS - )3,0±6,5( × 01 7 )3,0±7,4( × 01 7 )2,0±9,1( × 01 6
ppssuetorP - )3,0±5,5( × 01 3 )3,0±8,4( × 01 3 )3,0±1,4( × 01 3
ppsalleisbelK - )3,0±2,3( × 01 2 )3,0±2,1( × 01 2 )3,0±4,1( × 01 2
ppssedioretcaB - )3,0±2,4( × 01 3 )3,0±1,5( × 01 3 )3,0±0,4( × 01 3
ppsmuiretcabosuF - )3,0±2,7( × 01 4 )3,0±0,6( × 01 4 )3,0±4,1( × 01 4
ниллиципмА+ПГО
pmA+PPA ci nilli
rehcsE i ilocaihc - )3,0±2,5( × 01 6 )3,0±8,3( × 01 5 )3,0±4,4( × 01 5
ppssuccocoretnE - )3,0±3,3( × 01 5 )3,0±2,4( × 01 4 )3,0±4,1( × 01 4
ppssuccocolyhpatS - )3,0±5,4( × 01 6 )3,0±1,3( × 01 5 )3,0±1,4( × 01 5
ppssuetorP - )3,0±3,3( × 01 3 )3,0±5,2( × 01 3 )3,0±4,1( × 01 3
ppsalleisbelK - )3,0±0,3( × 01 2 )3,0±4,2( × 01 2 )3,0±0,1( × 01 2
ppssedioretcaB - )3,0±9,3( × 01 3 )3,0±1,3( × 01 2 )3,0±9,1( × 01 2
ppsmuiretcabosuF - )3,0±6,2( × 01 4 )3,0±8,2( × 01 4 )3,0±2,2( × 01 4
+ниллиципмА+ПГО
KKЛ
pmA+PPA ci +nilli
LBC
rehcsE i ilocaihc - )3,0±1,3( × 01 4 )3,0±7,2( × 01 3 )3,0±9,4( × 01 2
ppssuccocoretnE - )3,0±6,1( × 01 3 )3,0±1,2( × 01 3 )3,0±2,5( × 01 2
ppssuccocolyhpatS - )3,0±4,5( × 01 4 )3,0±3,1( × 01 4 )3,0±0,5( × 01 3
ppssuetorP - )3,0±1,7( × 01 2 )3,0±4,5( × 01 2 )2,0±2,2( × 01 2
ppsalleisbelK - )3,0±1,3( × 01 2 0 0
ppssedioretcaB - )3,0±5,2( × 01 3 )3,0±1,4( × 01 2 0
ppsmuiretcabosuF - )3,0±8,3( × 01 2 )3,0±4,3( × 01 2 )3,0±0,1( × 01 2
185 problems
of cryobiology
Vol. 21, 2011, №2
проблемы
криобиологии
Т. 21, 2011, №2
Таблица 2. Микрофлора перитонеального экссудата крыс при различных методах терапии
Table 2. Microflora of peritoneal exudate of rats under different therapy methods
хынтовижаппурГ
slaminafopuorG
ымзинагрооркиМ
smsinagroorciM
лм/ЕОK,йиреткабовтсечилоK
lm/UFC,airetcabforebmuN
елсопиктус1
иицарепо
yregrusretfayad1
елсопиктус1
иимоторапалер
retfayad1
ymotorapaler
елсопкотус3
иимоторапалер
retfasyad3
ymotorapaler
елсопкотус5
иимоторапалер
retfasyad5
ymotorapaler
)ьлортнок(яанткатнИ
lortnoctcatnI
rehcsE i ilocaihc )2,0±1,2( × 01 4 )2,0±5,3( × 01 5 )2,0±7,2( × 01 4 )2,0±9,3( × 01 2
ppssuccocolyhpatS )2,0±0,4( × 01 5 )3,0±1,6( × 01 6 )2,0±5,8( × 01 7 )2,0±1,3( × 01 4
ppssedioretcaB )2,0±8,1( × 01 7 )2,0±1,1( × 01 9 )2,0±5,1( × 01 9 )2,0±0,2( × 01 4
ПГО
PPA
rehcsE i ilocaihc - )3,0±0,3( × 01 5 )3,0±0,3( × 01 4 )3,0±6,1( × 01 2
ppssuccocolyhpatS - 2,4( )3,0± × 01 5 )3,0±9,1( × 01 4 )2,0±8,4( × 01 3
ppssedioretcaB - )3,0±2,5( × 01 8 )3,0±5,3( × 01 7 )3,0±2,1( × 01 4
ниллиципмА+ПГО
pmA+PPA ci nilli
rehcsE i ilocaihc - )3,0±2,5( × 01 4 )3,0±4,6( × 01 2 )3,0±1,1( × 01 2
ppssuccocolyhpatS - )3,0±3,2( × 01 4 )3,0±7,3( × 01 2 )3,0±9,1( × 01 2
ppssedioretcaB - )3,0±5,2( × 01 8 )3,0±9,2( × 01 7 )3,0±5,4( × 01 3
+ниллиципмА+ПГО
KKЛ
pmA+PPA ci +nilli
LBC
rehcsE i ilocaihc - )3,0±4,6( × 01 3 )2,0±80,1( × 01 2 0
ppssuccocolyhpatS - )3,0±5,2( × 01 3 )3,0±7,1( × 01 2 0
ppssedioretcaB - )3,0±1,3( × 01 3 0 0
KKЛ+ПГО
LBC+PPA
rehcsE i ilocaihc - )3,0±3,6( × 01 4 )3,0±1,3( × 01 2 )3,0±3,1( × 01 2
ppssuccocolyhpatS - )3,0±0,3( × 01 4 )3,0±3,2( × 01 2 )3,0±2,1( × 01 2
ppssedioretcaB - )3,0±5,3( × 01 7 )3,0±9,5( × 01 6 )3,0±8,1( × 01 3
хынтовижаппурГ
slaminafopuorG
ымзинагрооркиМ
Mi smsinagroorc
лм/ЕОK,йиреткабовтсечилоK
lm/UFC,airetcabforebmuN
елсопиктус1
иицарепо
yregrusretfayad1
елсопиктус1
иимоторапалер
retfayad1
ymotorapaler
елсопкотус3
иимоторапалер
retfasyad3
ymotorapaler
елсопкотус5
иимоторапалер
retfasyad5
ymotorapaler
KKЛ+ПГО
LBC+PPA
rehcsE i ilocaihc - )3,0±5,4( × 01 5 )3,0±1,4( × 01 4 )3,0±2,1( × 01 4
ppssuccocoretnE - )3,0±2,3( × 01 4 )3,0±5,2( × 01 4 )3,0±1,6( × 01 3
ppssuccocolyhpatS - )3,0±7,4( × 01 7 )3,0±3,8( × 01 6 )3,0±1,4( × 01 6
ppssuetorP - )3,0±0,6( × 01 3 )3,0±8,2( × 01 5 )3,0±5,1( × 01 3
ppsalleisbelK - )3,0±9,2( × 01 2 )3,0±5,2( × 01 2 )3,0±8,1( × 01 2
ppssedioretcaB - )3,0±0,4( × 01 3 )3,0±1,2( × 01 3 )3,0±5,1( × 01 3
ppsmuiretcabosuF - )3,0±0,5( × 01 4 )3,0±8,2( × 01 4 )30,0±8,0( × 01 4
186 problems
of cryobiology
Vol. 21, 2011, №2
проблемы
криобиологии
Т. 21, 2011, №2
Продолжение таблицы 2
Table 2. (Continued from previous page)
Таблица 3. Микробная обсемененность венозной крови крыс с ОПП при различных методах терапии
Table 3. Microbial contamination of venous blood of rats with APP under different therapy methods
187 problems
of cryobiology
Vol. 21, 2011, №2
проблемы
криобиологии
Т. 21, 2011, №2
Представленные данные о пристеночной мик-
рофлоре тонкого кишечника, перитонеального
экссудата и венозной крови экспериментальных
животных свидетельствуют о том, что использо-
ванная нами модель острого перитонита позволи-
ла воспроизвести классическую, с точки зрения со-
временных концепций, гнойно-септическую микст-
инфекцию. В результате проведенной операции
произошло качественное и количественное измене-
ние микрофлоры тонкого кишечника. Развилась его
колонизация в высоких титрах патогенными и ус-
ловно-патогенными бактериями семейства Entero-
bacteriaceae, аспорогенными анаэробными бакте-
риями, грамположительными бактериями родов
Staphylococсus и Enterococcus. Под действием
совокупности факторов вирулентности (адгезинов,
инвазинов, агрессинов, имидинов, модулинов и др.)
были нарушены защитные барьеры с последующим
инфицированием брюшной полости и крови [2]. Об
этом свидетельствует качественный состав микро-
флоры перитонеального экссудата и венозной крови.
При использованных методах терапии выраженный
антимикробный эффект наблюдали при релапаро-
томии с введением ампициллина в сочетании с ЛКК.
Данная терапия обеспечивала наиболее выражен-
ное снижение колонизации тонкого кишечника и
инфицирования брюшной полости патогенными и
условно-патогенными бактериями, а также эради-
кацию венозной крови от микроорганизмов. Тера-
певтический эффект релапаротомии с санацией
брюшной полости одним из препаратов (раствор
фурацилина, ампициллин или ЛКК) был менее
выражен и одинаков во всех 3-х группах. Учитывая,
что ЛКК не обладает прямым бактерицидным или
бактериостатическим действием, можно сделать
вывод о его иммуномодулирующем эффекте.
Известно, что при сепсисе формируется иммуно-
логический дистресс [1, 3], для коррекции которого
необходимо нейтрализовать возбудителя и его
токсины, изменить активность макрофагов, грану-
лоцитов, лимфоцитов, тромбоцитов [6, 11], восстано-
вить баланс синтеза и экскреции про- и противос-
палительных цитокинов [3], предупредить развитие
полиорганной недостаточности [2, 4]. Наиболее
вероятно, что препарат криоконсервированного
ЛКК участвует в коррекции иммунологического
дистресса [1, 6], что в комбинации с противомик-
робным действием ампициллина дает выраженный
терапевтический эффект.
При макроскопическом исследовании парие-
тальной брюшины у всех животных с ОГП на 1-е
сутки после релапаротомии морфологическая
картина отражала реакцию организма на началь-
ном этапе развития воспалительного процесса.
Париетальная брюшина была тусклая, набухшая,
полнокровная с обилием инъецированных, четко
контурируемых кровеносных сосудов, умеренным
and Euterococcus developed. The combination of
virulence factors (adhesins, invasins, agressins,
imidins, modulins etc.) disordered the protective bar-
riers, and resulted in following infection of abdomi-
nal cavity and blood [2]. This is confirmed with quali-
tative composition of microflora of peritoneal exu-
dates and venous blood. When using these therapeutic
methods the manifested antimicrobic effect was ob-
served during relaparotomy and with the injection of
ampicillin in a combination with CBL. This therapy
provided the most manifested reduction of small in-
testine colonization and infection of abdominal cav-
ity with pathogenic and opportunistic bacteria, as well
as eradication of venous blood from microorganisms.
Therapeutic effect from relaparotomy when sanating
an abdominal cavity with one of the preparation
(Furacinum, Ampicillin or CBL) was less manifested
and similar in all three groups. Taking into accound
that CBL does not possess a direct bactericide and
bacteriostatic effect, its immune modulating influence
may be supposed. Its is known that during sepsis an
immunologic distress is formed [1, 3], for the correc-
tion of which it is necessary to neutralize the causa-
tive agent and its toxins, to correct the activity of
macrophages, granulocytes, lymphocytes, platelets [6,
11], to recover the balance of synthesis and excre-
tion of pro- and anti-inflammatory cytokines [3], to
prevent the development of polyorgan insufficiency
[2, 4]. It is more likely that preparation of cryopre-
served CBL participates in the correction of immu-
nological distress [1, 6], that in the combination with
antimicrobic effect of Ampicillin provides a mani-
fested therapeutic effect.
Macroscopic study of parietal of peritoneum in all
the animals with APP revealed to the first day after
relaparotomy the morphological picture of an organ-
ism response at an initial stage of development of
inflammatory process. Parietal peritoneum was dim,
swollen, plethorical with an abundance of injected, dis-
tinctly circumscribed blood vessels, moderate number
of fibrinous depositions on its surface. Intestinal loops
are moderately infiltrated, covered with fibrin touch,
liquid is found in the lumen.
There was microscopically observed the perito-
neum oedema with loosening and separation of elas-
tic and collagen fibers. There was sharply expressed
the vessel lumen ectasia of microhemocirculatory
channel (MHCC). In peritoneum there was revealed
a small number of neutrophil polymorphonuclear
leukocytes (NPNL) (0.2200 ± 0.0240), single macro-
phages and lymphocytes. To the 3rd day the morpho-
logical picture of parietal peritoneum was character-
ized with leukocyte-macrophage reaction, progress-
ing of discirculatory disorders in MHCC, stipulated
by focus disorganization of collagen fibers of capil-
laries and venulas basal membranes, contributing to
the strengthening of permeability of MHCC vessels
188 problems
of cryobiology
Vol. 21, 2011, №2
проблемы
криобиологии
Т. 21, 2011, №2
количеством фибринозных наложений на ее поверх-
ности. Петли кишок умеренно инфильтрированы,
покрыты налетом фибрина, в просвете обнаружи-
валась жидкость.
Микроскопически наблюдали отек брюшины с
разрыхлением и разволокнением эластических и
коллагеновых волокон. Резко выражена эктазия про-
света сосудов микрогемоциркуляторного русла
(МГЦР). В брюшине выявляли небольшое коли-
чество нейтрофильных полиморфноядерных лейко-
цитов (НПЯЛ) (0,2200 ± 0,0240), единичные макро-
фаги и лимфоциты. На 3-и сутки морфологическая
картина париетальной брюшины характеризова-
лась лейкоцитарно-макрофагальной реакцией, про-
грессированием дисциркуляторных расстройств в
МГЦР, обусловленных очаговой дезорганизацией
коллагеновых волокон базальных мембран капилля-
ров и венул, что способствовало усилению прони-
цаемости сосудов МГЦР и лейкодиапедезу. На 5-е
сутки у животных наблюдали гнойно-фибринозное
воспаление париетальной брюшины с выраженным
некротическим компонентом, резкое угнетение
барьерной функции тонкой кишки. Микроскопичес-
ки брюшина практически лишена мезотелиальной
выстилки. Во всех ее слоях выявляли инфильтраты
НПЯЛ (0,3803 ± 0,0 320), очаги некроза (0,0172 ±
0,004 мм2). В большинстве сосудов отмечали де-
структивные изменения всей толщины стенки в
виде альтеративного тромбофлебита и тромбоарте-
риолита.
У крыс группы 3 релапаротомия с введением
ампициллина незначительно снижала воспаление (с
1-х по 3-и сутки). Однако у них отмечали поврежде-
ние барьерной функции тонкой кишки и транслока-
цию симбионтной микрофлоры из просвета кишеч-
ника в полость брюшины.
Микроскопически в брюшине были выявлены
инфильтраты, состоящие из НПЯЛ (0,3230 ± 0,0334),
лаброцитов, лимфоцитов и единичных макрофагов,
очаги некроза (0,0160 ± 0,0038 мм2). На 5-е сутки у
животных этой группы отмечали нарастание ди-
строфических и некротических процессов в пари-
етальной брюшине с инфильтратами, состоящими
из НПЯЛ (0,3780 ± 0,0330), макрофагов. Лимфоциты
обнаружены не были.
Совместное введение с антибиотиком препара-
та ЛКК обеспечивало уменьшение воспалительно-
го процесса в брюшине и колонизации тонкого
кишечника. Уже на 3-и сутки у крыс этой группы
дистрофические и некротические процессы в брю-
шине были менее выражены. Микроскопически
точечные инфильтраты состояли из единичных
НПЯЛ и макрофагов. Очаги некроза обнаружива-
лись не у всех животных, площадь очагов уменьша-
лась и составляла в среднем 0,0023 ± 0,0002 мм2.
На 5-е сутки у всех крыс группы 4 наблюдали
and leukodiapedesis. To the 5th day in the animals
there were observed pyo-fibrinous inflammation of
parietal peritoneum with manifested necrotic compo-
nent, sharp suppression of barrier function of small
intestine. Microscopically the peritoneum was nearly
deprived of mesothelial embedding. In all its layers
there were found NPNL infiltrates (0.3803 ±
0.00320), necrosis foci (0.0172 ± 0.004 mm2). In the
majority of vessels there were noted destructive
changes of the whole width of the wall of an alter-
native thrombophlebitis or thromboarterioritis types.
In the rats of group 3 the relaparotomy with Am-
picillin injection slightly decreased an inflammation
(from the first to the third days). However, there
were noticed the impairment of barrier function of
small intestine and translocation of symbiotic micro-
flora from bowel lumen into peritoneum cavity.
Microscopically in peritoneum there were revealed
infiltrates, consisting of NPNL (0.3230 ± 0.0334),
labrocytes, lymphocytes and single macrophages,
necrosis foci (0.0160 ± 0.038 mm2). To the 5th day
in the animals of this group there was found an en-
hancement of dystrophic and necrotic processes in
parietal peritoneum with infiltrates, consisting of
NPNL (0.3780 ± 0.0330), macrophages. No lympho-
cytes were found.
A combined injection of CBL with antibiotic pro-
vided the lessening of inflammatory process in peri-
toneum and colonization of small intestine. Even to
the 3rd day in rats of this group dystrophic and necrotic
processes in peritoneum were less profound. Micro-
scopically the point infiltrates consisted of single
NPNL and macrophages. Necrosis foci were found
not in all animals, the area of foci decreased and made
in average 0.0023 ± 0.0002 mm2. To the 5th day in
all the rats of group 4 there was observed the re-
duction of oedema of parietal peritoneum with no
fibrinous depositions on its surface with a distinct
contour of blood vessels. Intestinal loops were not
infiltrated.
Therapeutic effect of the application of cryopre-
served CBL preparation was less manifested in the
rats of group 5. Reduced inflammatory process in
peritoneum and colonization of small intestine were
noted to the 5th day. Microscopic study has shown
that to the 3rd day in the rats of this group dystrophic
and necrotic processes in peritoneum were less mani-
fested if compared with the group 3, but were more
profound comparing to group 4. Infiltrates, revealed
in parietal peritoneum of animals to the 3rd day con-
sisted of NPNL (0.1560 ± 0.230), lymphocytes and
single macrophages, and necrosis foci were found
(0.0326 ± 0.0032 mm2). To the 5th day in animals of
this group a reduced inflammation of peritoneum was
observed, although infiltrates and necrosis foci were
found both in peritoneum and intestinal loops.
189 problems
of cryobiology
Vol. 21, 2011, №2
проблемы
криобиологии
Т. 21, 2011, №2
уменьшение отечности париетальной брюшины без
фибринозных наложений на ее поверхности с чет-
ким контуром кровеносных сосудов. Петли кишок
не были инфильтрированы.
Терапевтический эффект от применения только
препарата криоконсервированного ЛКК был менее
выраженным (группа 5). Уменьшение воспали-
тельного процесса в брюшине и колонизации тонкого
кишечника отмечали на 5-е сутки. Микроскопи-
ческое исследование показало, что на 3-и сутки у
крыс этой группы дистрофические и некротические
процессы в брюшине были менее выраженными по
сравнению с группой 3, но более выраженными, чем
у крыс группы 4. Инфильтраты, выявленные в
париетальной брюшине животных на 3-и сутки,
состояли из НПЯЛ (0,1560 ± 0,0230), лимфоцитов и
единичных макрофагов, наблюдались очаги некро-
за (0,0326 ± 0,0032 мм2). На 5-е сутки у животных
этой группы наблюдали уменьшение воспаления
брюшины, хотя инфильтраты и очаги некроза обна-
руживались как в брюшине, так и в петлях кишок.
Выводы
Использованная экспериментальная модель
острого разлитого перитонита воспроизводит гной-
но-септическую микст-инфекцию с качественным
и количественным изменением микрофлоры тонко-
го кишечника, инфицированием этой микрофлорой
брюшной полости и крови. Релапаротомия с введе-
нием ампициллина и препарата криоконсервиро-
ванного лейкоконцентрата кордовой крови обеспе-
чивает эрадикацию микроорганизмов из крови и
наиболее выраженное снижение колонизации
тонкого кишечника и инфицированности брюшной
полости патогенными и условно-патогенными бак-
териями, уменьшение дистрофических и некроти-
ческих процессов в брюшной полости по сравнению
с монотерапией раствором фурацилина, ампицил-
лином или препаратом ЛКК.
Литература
Бойко В.В., Грищенко В.И., Цуцаева А.А., Криворучко И.А.
Применение кордовой крови у больных с желудочными
кровотечениями язвенного генеза // Вісник проблем
біології і медицини.– 1999.– Вип. 3.– С. 14–18.
Бондарев В.И., Бондарев Р.В. К вопросу о видеолапарос-
копической санации брюшной полости у больных с
острым разлитым перитонитом // Укр. мед. альманах.–
2003.– №6.– С. 20–22.
Бунатян А.А., Ивняева Е.В., Нигода В.В., Винницкий Л.И.
Иммунокорректоры в комплексном лечении послеопе-
рационных гнойно-воспалительных осложнений у хирур-
гических больных и мониторинг иммунологических пока-
зателей // Анестезиология и реаниматология.– 2004.–
№5.– С. 79–83.
Гельдфанд Б.Р., Руднев В.А., Проценко Д.Н. и др. Сепсис:
диагностическая концепция, патогенез и интенсивная
терапия // Сепсис в начале ХХI века: классификация,
Conclusions
Used experimental model of acute generalized
peritonitis reproduces pyo-septic mixed infection with
qualitative and quantitative change of small intestine
microflora, infection with this microflora of perito-
neum and blood. Relaparotomy with injection of ampi-
cillin and preparation of cryopreserved cord blood
leucoconcentrate provides eradication of microorgan-
isms from blood and the most manifested decrease
of small intestine colonization and infection of peri-
toneal cavity with pathogenic and opportunistic bac-
teria, reduced dystrophic and necrotic processes in
peritoneal cavity if compared with monotherapy by
Furacinum solution, Ampicillin or CBL preparation.
References
Boyko V.V., Grishenko V.I., Tsutsaeva A.A., Krivoruchko I.A.
Application of cord blood in patients with gastric bleedings of
ulcer genesis// Visnyk Problem Biologii i Meditsyny.– 1999.–
Issue 3.– P. 14–18.
Bondarev V.I., Bondarev R.V. To the question of videolaparos-
copic sanation of abdominal cavity of patients with acute
generalized peritonitis// Ukr. Med. Almanakh.– 2003.– N6.–
P. 20–22.
Butanyan A.A., Ivnyaeva E.V., Nigoda V.V., Vinnitsky L.I.
Immune correctors in complex treatment of post-surgery pyo-
inflammatory complications in surgical patients and monitoring
of immunological indices// Anesteziologiya i Reanimatologiya.–
2004.– N5.– P. 79–83.
Geldfand B.R., Rudnev V.A., Protsenko D.N. et al. Sepsis:
diagnostic conception, pathogenesis and intensive therapy//
Sepsis in the beginning of 21st century: classification, clinical-
diagnostical conception and treatment.– Moscow-Saint-
Petersburg, 2004.– P. 3–35.
Purulent peritonitis. Pathophysiology and treatment/ Ed. by
A.Ya. Tsyganenko.– Kharkov: Kontrast, 2002.– 280 p.
Goltsev A.N., Kalinichenko T.A. Human umbilical cord blood
as the source of hemopoietic cells for clinical application.
Characteristics of hemopoietic potential// Problems of
Cryobiology.– 1998.– N1.– P. 3–24.
Dachenko V.F., Biryukova S.V., Starobinets Z.T. et al.
Laboratory diagnostics of pyo-inflammatory diseases,
stipulated by asporogenic anaerobic microorganisms:
Methodical recommendations.– Kharkiv, 2000.– 35 p.
General ethical principles of experiments in animals //
Endokrinologiya.– 2003.– Vol. 8, N1.– P. 142–145.
Zapadnyuk I.P., Zapadnyuk V.I., Zakhariya E.A., Zapad-
nyuk B.V. Laboratory animals. Breeding, keeping, use in
experiment. Kyiv: Vysscha Shkola, 1983.– 383p.
Malyy V.P. Sepsis in clinician's practice.– Kharkov: Prapor,
2008.– 584 p.
Medical microbiology. Part one / Ed. By A.M. Korolyuk,
V.B. Sboychakov.– St.-Petersburg: Meditsyna, 2002.– 267 p.
Medical microbiology, virusology and immunology: Manual /
Ed. by A.A. Vorobyev.– Moscow: Meditsinskoe informatsion-
noe agentstvo, 2004.– 691 p.
Melnik V.M., Pojda O.I. Substantiation and results of
pathogenetic treatment of experimental purulent generalized
peritonitis // Ukr. Zhurnal Ekstremalnoi Medytsyny. im.
G.O. Mozhayeva.– 2005.– Vol. 6, N4.– P. 56–60.
Merkulov G.A. Course of pathological technique.– Moscow:
Meditsina, 1969.– 423p.
Order of the Ministry of Health Care of Ukraine N167 dated
of 05.04.2007 "About approval of methodical recommen-
1.
2.
3.
4.
1.
2.
3.
4.
5.
6.
7.
8.
9.
10.
11.
12.
13.
14.
15.
190 problems
of cryobiology
Vol. 21, 2011, №2
проблемы
криобиологии
Т. 21, 2011, №2
клинико-диагностическая концепция и лечение.– М.-СПб,
2004.– С. 3–35.
Гнойный перитонит. Патофизиология и лечение /Под
ред. А.Я. Цыганенко.– Харьков: Контраст, 2002.– 280 с.
Гольцев А.Н., Калиниченко Т.А. Пуповинная кордовая
кровь человека как источник гемопоэтических клеток
для клинического применения. Характеристики гемопоэ-
тического потенциала // Проблемы криобиологии.– 1998.–
№1.– С. 3–24.
Даченко В.Ф., Бірюкова С.В., Старобінець З.Т. та ін.
Лабораторна діагностика гнійно-запальних захворювань,
обумовлених аспорогенними анаеробними мікроорга-
нізмами: Метод. рекомендації.– Харків, 2000.– 35 с.
Загальноетичні принципи експериментів на тваринах //
Ендокринологія.– 2003.– Т. 8, №1.– С. 142–145.
Западнюк И.П., Западнюк В.И., Захария Е.А., Запад-
нюк Б.В. Лабораторные животные. Разведение, содержа-
ние, использование в эксперименте.– Київ: Вища школа,
1983.– 383 с.
Малый В.П. Сепсис в практике клинициста.– Харьков:
Прапор, 2008.– 584 с.
Медицинская микробиология. Часть первая / Под ред. А.М.
Королюка, В.Б. Сбойчакова.– СПб: Медицина, 2002.– 267 с.
Медицинская микробиология, вирусология и иммуноло-
гия: Учебник / Под ред. А.А. Воробьева.– М.: Медицинское
информационное агентство, 2004.– 691 с.
Мельник В.М., Пойда О.І. Обґрунтування і результати
патогенетичного лікування експериментального гострого
гнійного поширеного перитоніту // Укр. журнал екстре-
мальної медицини ім. Г.О. Можаєва.– 2005.– Т. 6, №4.–
С. 56–60.
Меркулов Г.А. Курс патологической техники.– М.: Меди-
цина, 1969.– 423 с.
Наказ МОЗ України №167 від 05.04.2007 р. "Про
затвердження методичних вказівок "Визначення чутли-
вості мікроорганізмів до антибактеріальних препаратів".
Приказ МЗ СССР №535 от 22.04.85 г. "Об унификации
микробиологических (бактериологических) методов
исследования, применяемых в клинико-диагностических
лабораториях лечебно-профилактических учреждений".
Симонян К.С. Перитонит.– М.: Медицина, 1971.– 296 с.
Усиков Ф.Ф., Пастернак Е.В., Романова Л.Д. и др.
Хирургическая модель острого гнойного перитонита //
Хирургия.– 1984.– №8.– С. 27–29.
Чернов В.Н., Белик Б.М. Классификация и принципы
лечения острого гнойного перитонита // Хирургия.– 2000.–
№4.– С. 52–56.
Ярешко Н.А. Антибиотикотерапия разлитого гнойного
перитонита: методологические аспекты преподавания
на кафедре общей хирургии // З'їзд хірургів України. Тези
доп.– Тернопіль, 2002.– С. 337–339.
Пат. № 31847А Україна, МПК А01№1/02. Спосіб кріо-
консервування кровотворних клітин кордової крові /
А.О. Цуцаєва, В.І. Грищенко, О.С. Прокопюк та ін.; Зая-
влено 05.11.98; Опубл. 15.12.2000.– Бюл. №7.– С. 1.10.
Burger S.R. Umbical cord blood stem cells // Handbook of
transfusion medicine.– London: Academic Press, 2001.–
P. 171–178.
Kurtzberg J. Progress with unrelated cord blood transplants
in adults // Blood.– 2003.– Vol. 101.– P. 4648–4659.
Zapata-Sirvent R.L., Hansbrough J.F. Bacterial translocation.
A role in an etiology of a sepsis and multiorgane insufficiency //
GEN.– 1992.– Vol. 46, N2.– P. 137–151.
Rennekampff O.H., Tenenhaus M., Hansbrough J. et al.
Effects of recombinant bactericidal, permeability-increasing
protein on bacterial translocation and pulmonary neutrophil
sequestration in burned mice // J. Burn Care Rehabil.– 1997.–
Vol. 18, N1 (Pt. 1).– P. 17–21.
Поступила 01.03.2011
dations "Examination of sensitivity of microorganisms to anti-
bacterial preparations"".
Order of the Ministry of Health Care of USSR N535 dated of
22.04.1985 "About unification of microbiological research
methods, applied in clinical and diagnostic laboratories of
therapeutic and prophylactic institutions".
Simonyan K.S. Peritonitis. - Moscow: Meditsina, 1971. - 296p.
Usikov F.F., Pasternak E.B., Romanova L.D. et al. Surgical
model of acute purulent peritonitis// Khirurgiya.– 1984.– N8.–
P. 27–29.
Chernov V.N., Belik B.M. Classification and principles of
treatment of acute purulent peritonitis // Khirurgiya.– 2000.–
N4.– P. 52–56.
Yareshko N.A. Antibiotic therapy of generalized purulent
peritonitis: methodological aspects of teaching at the chair of
general surgery// Congress of Surgeons of Ukraine.
Proceedings Reports.– Ternopil, 2002.– P. 337–339.
Patent N31847A Ukraine IPC A01N1/02. Method of
cryopreservation of cord blood hemopoietic cells / A.O. Tsu-
tsayeva, V.I. Grischenko, O.S. Prokopyuk et al.; Applied
05.11.98; Publ. 15.12.200.– Bul. N7.– P. 1.10.
Burger S.R. Umbical cord blood stem cells // Handbook of
transfusion medicine.– London: Academic Press, 2001.–
P. 171–178.
Kurtzberg J. Progress with unrelated cord blood transplants
in adults // Blood.– 2003.– Vol. 101.– P. 4648–4659.
Zapata-Sirvent R.L., Hansbrough J.F. Bacterial translocation.
A role in an etiology of a sepsis and multiorgane insufficiency //
GEN.– 1992.– Vol. 46, N2.– P. 137–151.
Rennekampff O.H., Tenenhaus M., Hansbrough J. et al.
Effects of recombinant bactericidal, permeability-increasing
protein on bacterial translocation and pulmonary neutrophil
sequestration in burned mice // J. Burn Care Rehabil.– 1997.–
Vol. 18, N1 (Pt. 1).– P. 17–21.
Accepted 01.03.2011
5.
6.
7.
8.
9.
10.
11.
12.
13.
14.
15.
16.
17.
18.
19.
20.
21.
22.
23.
24.
25.
16.
17.
18.
19.
20.
21.
22.
23.
24.
25.
|