Факторы роста BDNF и TGF1β в ткани криоконсервированной амниотической оболочки плаценты человека после антиглаукоматозной операции

Исследовали влияние криоконсервированной амниотической оболочки плаценты человека (АОПЧ) на процесс высвобождения клеточных факторов роста BDNF и TGF1β во внешнюю среду и орган зрения в срок наблюдения до 21-х суток. Методом иммуноферментного анализа определяли содержание факторов роста клеток в т...

Ausführliche Beschreibung

Gespeichert in:
Bibliographische Detailangaben
Veröffentlicht in:Проблемы криобиологии и криомедицины
Datum:2016
Hauptverfasser: Казмирук, И.Л., Демин, Ю.А., Рязанцев, В.В.
Format: Artikel
Sprache:Russian
Veröffentlicht: Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України 2016
Schlagworte:
Online Zugang:https://nasplib.isofts.kiev.ua/handle/123456789/137404
Tags: Tag hinzufügen
Keine Tags, Fügen Sie den ersten Tag hinzu!
Назва журналу:Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine
Zitieren:Факторы роста BDNF и TGF1β в ткани криоконсервированной амниотической оболочки плаценты человека после антиглаукоматозной операции / И.Л. Казмирук, Ю.А. Демин, В.В. Рязанцев // Проблемы криобиологии и криомедицины. — 2016. — Т. 26, № 2. — С. 145–154. — Бібліогр.: 12 назв. — рос.

Institution

Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine
id nasplib_isofts_kiev_ua-123456789-137404
record_format dspace
spelling Казмирук, И.Л.
Демин, Ю.А.
Рязанцев, В.В.
2018-06-17T10:57:59Z
2018-06-17T10:57:59Z
2016
Факторы роста BDNF и TGF1β в ткани криоконсервированной амниотической оболочки плаценты человека после антиглаукоматозной операции / И.Л. Казмирук, Ю.А. Демин, В.В. Рязанцев // Проблемы криобиологии и криомедицины. — 2016. — Т. 26, № 2. — С. 145–154. — Бібліогр.: 12 назв. — рос.
0233-7673
https://nasplib.isofts.kiev.ua/handle/123456789/137404
616.12-089.844:615.477.2
Исследовали влияние криоконсервированной амниотической оболочки плаценты человека (АОПЧ) на процесс высвобождения клеточных факторов роста BDNF и TGF1β во внешнюю среду и орган зрения в срок наблюдения до 21-х суток. Методом иммуноферментного анализа определяли содержание факторов роста клеток в тканях органа зрения после использования в качестве покрытия замороженной по 2-этапному режиму АОПЧ при антиглуакоматозной операции. Показана эффективность применения размороженной АОПЧ в отношении процесса высвобождения клеточных факторов роста после ее аппликации в зоне послеоперационного дефекта. Установлена зависимость накопления факторов роста BDNF и TGF1β от времени аппликации криоконсервированной АОПЧ, вида ткани глаза и тропности факторов роста.
Досліджували вплив кріоконсервованої амніотичної оболонки плаценти людини (АОПЛ) на процес вивільнення клітинних факторів росту BDNF і TGF1β у зовнішнє середовище та орган зору в термін спостереження до 21-х діб. Методом імуноферментного аналізу визначали вміст факторів росту клітин у тканинах органа зору після використання в якості покриття замороженої за 2-етапним режимом АОПЛ при антиглуакоматозній операції. Показана ефективність застосування розмороженої АОПЛ щодо процесу вивільнення клітинних факторів росту після її аплікації у зоні післяопераційного дефекту. Встановлено залежність накопичення факторів росту BDNF і TGF1β від часу аплікації кріоконсервованої АОПЛ, виду тканини ока та тропності факторів росту.
The effect of cryopreserved human placental amniotic membrane (HPAM) on the release of cell growth factors BDNF and TGF1β into both an environment and eye within the observation period of up to 21 days has been studied. By enzyme immunoassay there was investigated the content of cell growth factors in ocular tissues after use as a coating of the frozen according two-step regimen HPAM in antiglaucomatous surgery. The efficiency of using the frozen-thawed HPAM in respect of releasing the cell growth factors after its application into the post-surgery defect zone has been demonstrated. There was found the dependence of accumulation of growth factors TGF1β and BDNF on time of cryopreserved HPAM application, eye tissue type and tropism of growth factors.
ru
Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України
Проблемы криобиологии и криомедицины
Криомедицина, клиническая и экспериментальная трансплантология
Факторы роста BDNF и TGF1β в ткани криоконсервированной амниотической оболочки плаценты человека после антиглаукоматозной операции
Growth factors BDNF and TGF1β in tissue of cryopreserved human placental amniotic membrane after antiglaucomatous surgery
Article
published earlier
institution Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine
collection DSpace DC
title Факторы роста BDNF и TGF1β в ткани криоконсервированной амниотической оболочки плаценты человека после антиглаукоматозной операции
spellingShingle Факторы роста BDNF и TGF1β в ткани криоконсервированной амниотической оболочки плаценты человека после антиглаукоматозной операции
Казмирук, И.Л.
Демин, Ю.А.
Рязанцев, В.В.
Криомедицина, клиническая и экспериментальная трансплантология
title_short Факторы роста BDNF и TGF1β в ткани криоконсервированной амниотической оболочки плаценты человека после антиглаукоматозной операции
title_full Факторы роста BDNF и TGF1β в ткани криоконсервированной амниотической оболочки плаценты человека после антиглаукоматозной операции
title_fullStr Факторы роста BDNF и TGF1β в ткани криоконсервированной амниотической оболочки плаценты человека после антиглаукоматозной операции
title_full_unstemmed Факторы роста BDNF и TGF1β в ткани криоконсервированной амниотической оболочки плаценты человека после антиглаукоматозной операции
title_sort факторы роста bdnf и tgf1β в ткани криоконсервированной амниотической оболочки плаценты человека после антиглаукоматозной операции
author Казмирук, И.Л.
Демин, Ю.А.
Рязанцев, В.В.
author_facet Казмирук, И.Л.
Демин, Ю.А.
Рязанцев, В.В.
topic Криомедицина, клиническая и экспериментальная трансплантология
topic_facet Криомедицина, клиническая и экспериментальная трансплантология
publishDate 2016
language Russian
container_title Проблемы криобиологии и криомедицины
publisher Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України
format Article
title_alt Growth factors BDNF and TGF1β in tissue of cryopreserved human placental amniotic membrane after antiglaucomatous surgery
description Исследовали влияние криоконсервированной амниотической оболочки плаценты человека (АОПЧ) на процесс высвобождения клеточных факторов роста BDNF и TGF1β во внешнюю среду и орган зрения в срок наблюдения до 21-х суток. Методом иммуноферментного анализа определяли содержание факторов роста клеток в тканях органа зрения после использования в качестве покрытия замороженной по 2-этапному режиму АОПЧ при антиглуакоматозной операции. Показана эффективность применения размороженной АОПЧ в отношении процесса высвобождения клеточных факторов роста после ее аппликации в зоне послеоперационного дефекта. Установлена зависимость накопления факторов роста BDNF и TGF1β от времени аппликации криоконсервированной АОПЧ, вида ткани глаза и тропности факторов роста. Досліджували вплив кріоконсервованої амніотичної оболонки плаценти людини (АОПЛ) на процес вивільнення клітинних факторів росту BDNF і TGF1β у зовнішнє середовище та орган зору в термін спостереження до 21-х діб. Методом імуноферментного аналізу визначали вміст факторів росту клітин у тканинах органа зору після використання в якості покриття замороженої за 2-етапним режимом АОПЛ при антиглуакоматозній операції. Показана ефективність застосування розмороженої АОПЛ щодо процесу вивільнення клітинних факторів росту після її аплікації у зоні післяопераційного дефекту. Встановлено залежність накопичення факторів росту BDNF і TGF1β від часу аплікації кріоконсервованої АОПЛ, виду тканини ока та тропності факторів росту. The effect of cryopreserved human placental amniotic membrane (HPAM) on the release of cell growth factors BDNF and TGF1β into both an environment and eye within the observation period of up to 21 days has been studied. By enzyme immunoassay there was investigated the content of cell growth factors in ocular tissues after use as a coating of the frozen according two-step regimen HPAM in antiglaucomatous surgery. The efficiency of using the frozen-thawed HPAM in respect of releasing the cell growth factors after its application into the post-surgery defect zone has been demonstrated. There was found the dependence of accumulation of growth factors TGF1β and BDNF on time of cryopreserved HPAM application, eye tissue type and tropism of growth factors.
issn 0233-7673
url https://nasplib.isofts.kiev.ua/handle/123456789/137404
citation_txt Факторы роста BDNF и TGF1β в ткани криоконсервированной амниотической оболочки плаценты человека после антиглаукоматозной операции / И.Л. Казмирук, Ю.А. Демин, В.В. Рязанцев // Проблемы криобиологии и криомедицины. — 2016. — Т. 26, № 2. — С. 145–154. — Бібліогр.: 12 назв. — рос.
work_keys_str_mv AT kazmirukil faktoryrostabdnfitgf1βvtkanikriokonservirovannoiamniotičeskoioboločkiplacentyčelovekaposleantiglaukomatoznoioperacii
AT deminûa faktoryrostabdnfitgf1βvtkanikriokonservirovannoiamniotičeskoioboločkiplacentyčelovekaposleantiglaukomatoznoioperacii
AT râzancevvv faktoryrostabdnfitgf1βvtkanikriokonservirovannoiamniotičeskoioboločkiplacentyčelovekaposleantiglaukomatoznoioperacii
AT kazmirukil growthfactorsbdnfandtgf1βintissueofcryopreservedhumanplacentalamnioticmembraneafterantiglaucomatoussurgery
AT deminûa growthfactorsbdnfandtgf1βintissueofcryopreservedhumanplacentalamnioticmembraneafterantiglaucomatoussurgery
AT râzancevvv growthfactorsbdnfandtgf1βintissueofcryopreservedhumanplacentalamnioticmembraneafterantiglaucomatoussurgery
first_indexed 2025-11-24T16:26:14Z
last_indexed 2025-11-24T16:26:14Z
_version_ 1850482644553302016
fulltext УДК 616.12-089.844:615.477.2 И.Л. Казмирук1, Ю.А. Демин1, В.В. Рязанцев2* Факторы роста BDNF и TGF1βββββ в ткани криоконсервированной амниотической оболочки плаценты человека после антиглаукоматозной операции UDC 616.12-089.844:615.477.2 I.L. Kazmiruk1, Yu.A. Demin1, V.V. Ryazantsev2* Growth Factors BDNF and TGF1βββββ in Tissue of Cryopreserved Human Placental Amniotic Membrane after Antiglaucomatous Surgery Реферат: Исследовали влияние криоконсервированной амниотической оболочки плаценты человека (АОПЧ) на процесс высвобождения клеточных факторов роста BDNF и TGF1β во внешнюю среду и орган зрения в срок наблюдения до 21-х суток. Методом иммуноферментного анализа определяли содержание факторов роста клеток в тканях органа зрения после использования в качестве покрытия замороженной по 2-этапному режиму АОПЧ при антиглуакоматозной операции. Показана эффективность применения размороженной АОПЧ в отношении процесса высвобождения клеточных факторов роста после ее аппликации в зоне послеоперационного дефекта. Установлена зависимость накопления факторов роста BDNF и TGF1β от времени аппликации криоконсервированной АОПЧ, вида ткани глаза и тропности факторов роста. Ключевые слова: амниотическая оболочка плаценты человека, криоконсервирование, проницаемость, факторы роста клеток, антиглаукоматозная операция. Реферат: Досліджували вплив кріоконсервованої амніотичної оболонки плаценти людини (АОПЛ) на процес вивільнення клітинних факторів росту BDNF і TGF1β у зовнішнє середовище та орган зору в термін спостереження до 21-х діб. Методом імуноферментного аналізу визначали вміст факторів росту клітин у тканинах органа зору після використання в якості покриття замороженої за 2-етапним режимом АОПЛ при антиглуакоматозній операції. Показана ефективність застосування розмороженої АОПЛ щодо процесу вивільнення клітинних факторів росту після її аплікації у зоні післяопераційного дефекту. Встановлено залежність накопичення факторів росту BDNF і TGF1β від часу аплікації кріоконсервованої АОПЛ, виду тканини ока та тропності факторів росту. Ключові слова: амніотична оболонка плаценти людини, кріоконсервування, проникність, фактори росту клітин, антиглаукоматозна операція. Abstract: The effect of cryopreserved human placental amniotic membrane (HPAM) on the release of cell growth factors BDNF and TGF1β into both an environment and eye within the observation period of up to 21 days has been studied. By enzyme immunoassay there was investigated the content of cell growth factors in ocular tissues after use as a coating of the frozen according two-step regimen HPAM in antiglaucomatous surgery. The efficiency of using the frozen-thawed HPAM in respect of releasing the cell growth factors after its application into the post-surgery defect zone has been demonstrated. There was found the dependence of accumulation of growth factors TGF1β and BDNF on time of cryopreserved HPAM application, eye tissue type and tropism of growth factors. Key words: human placental amniotic membrane, cryopreservation, permeability, cell growth factors, antiglaucomatous surgery. *Автор, которому необходимо направлять корреспонденцию: ул. Переяславская, 23, г. Харьков, Украина 61016; тел.: (+38 057) 373-30-34, факс: (+38 057) 373-30-84, электронная почта: vvryaz@i.ua *To whom correspondence should be addressed: 23, Pereyaslavskaya str., Kharkiv, Ukraine 61016; tel.:+380 57 373 3034, fax: +380 57 373 3084, e-mail: vvryaz@i.ua 1Kharkiv Medical Academy of Post-Diploma Education, Kharkov, Ukraine 2Department of Cryocytology, Institute for Problems of Cryobiology and Cryomedicine of the National Academy of Sciences of Ukraine, Kharkiv, Ukraine 1Харьковская медицинская академия последипломного образо- вания, г. Харьков 2Отдел криоцитологии, Институт проблем криобиологии и криомедицины НАН Украины, г. Харьков Поступила 09.09.2014 Принята в печать 30.03.2016 Проблемы криобиологии и криомедицины. – 2016. – Т. 26, №2. – С. 145–154. © 2016 Институт проблем криобиологии и криомедицины НАН Украины Received September, 09, 2014 Accepted March, 30, 2016 Probl. Cryobiol. Cryomed. 2016. 26(2): 145–154. © 2016 Institute for Problems of Cryobiology and Cryomedicine оригинальное исследование research article В настоящее время актуальной медико- социальной проблемой является рост численности населения с заболеваниями органа зрения, свя- занными с глаукоматозным состоянием [3]. Тра- диционно при данной патологии показан хирурги- ческий метод лечения, однако известно [2], что в послеоперационном периоде, а именно в момент выраженного рубцевания ткани, возможно разви- тие воспалительного процесса. Поэтому для коррекции послеоперационного дефекта применяют биологические тканевые покрытия, в частности For now, a growing number of patients with eye diseases related to glaucomatous condition is a vital medical and social issue [4]. Treatment of this pathology usually includes a surgery, which is often accompanied with an inflammation [1] in the post- surgery period, mostly during an expressed tissue scarring. One of the methods to control the post-surgery course is the application of biological tissue coatings, in particular, human placental amniotic membrane (HPAM) into the post-surgery defect area [8]. Using this treatment in medical practice is stipulated by the 146 проблемы криобиологии и криомедицины problems of cryobiology and cryomedicine том/volume 26, №/issue 2, 2016 амниотическую оболочку плаценты человека (АОПЧ) [6]. Такой метод лечения используют в медицинской практике, поскольку в АОПЧ отмечается большое количество факторов кле- точного роста (BDNF и TGF1β), она обладает минимальной иммуногенностью (клетки эпителия на поверхности ткани практически не имеют маркеров HLA 1-го типа и HLA-DR 2-го типа), антимикробным эффектом (за счет лизоцима, трансферрина и лактоферрина), противоспалитель- ным действием (обеспечивается цитокинами ИЛ- 6 и ИЛ-8), а также в ней содержатся ингибиторы тканевых протеаз (ТIMP- 1, 2, 3, 4) [10]. Криоконсервирование АОПЧ позволяет созда- вать запасы ткани для дальнейшего ее использова- ния по мере необходимости при антиглаукоматоз- ных операциях (АГО). Однако на сегодняшний день отсутствуют достоверные данные о поступ- лении биологически активных веществ и нейропро- текторов в ткани глаза из амниона, покрывающего раневой дефект, in situ до 21-х суток послеопера- ционного периода. Ранее для замораживания ткани плаценты человека применяли 2-этапный режим, который обеспечивал высокий показатель структурной со- хранности ткани [7]. В данной работе показана эффективность использования этого режима замо- раживания в отношении процесса высвобождения из размороженной АОПЧ клеточных факторов роста после аппликации на ткани органа зрения. Целью работы было определение содержания факторов роста в тканях глаза в период использо- вания в качестве биологического покрытия при антиглаукоматозной операции замороженной по 2-этапному режиму амниотической оболочки пла- центы человека. Эффективность режима криокон- сервирования оценивали по выходу из криоконсер- вированной АОПЧ (кАОПЧ) факторов роста клеток в ткани глаза после операции: нейротро- фического фактора мозгового происхождения (BDNF) и трансформирующего фактора роста клеток (TGF1β). Нами была поставлена задача после размораживания кАОПЧ получить ткань с минимально возможной проницаемостью для этих маркеров и использовать такой режим заморажи- вания, который бы обеспечивал наиболее дли- тельное (до 21-х суток) высвобождение нейротро- фических и клеточных факторов из кАОПЧ в органе зрения. Материалы и методы Эксперименты проводили на кроликах породы Шиншилла (n = 25), которых содержали в условиях вивария при соответствующем освещении на presence of large amounts of cell growth factors (BDNF and TGF1β) in HPAM, its minimal immuno- genicity (tissue surface epithelial cells virtually do not have HLA type 1 and HLA-DR type 2 markers), antimicrobial effect (due to lysozyme, lactoferrin and transferrin), anti-inflammatory action (ensured by cytokines (IL-6, IL-8)) and inhibitors of tissue proteases (TIMP- 1, 2, 3, 4) as well [4]. Cryopreservation of HPAM allows to create the stocks of the tissue for future application in antiglauco- matous surgery (AGS) when needed. However, there are no valid data on releasing the biologically active substances and neuroprotectors into an ocular tissue from the covering the wound defect amnion in situ to the 21st day of post-surgery period. Two-step protocol was used to freeze the human placental tissue previously, providing a high rate of the tissue structure preservation [9]. This paper will demonstrate an effective freezing regimen in respect of the release of cell growth factors from the frozen- thawed HPAM after application to an ocular tissue. The research goal was to determine the content of growth factors in eye tissues in case of using in antiglaucomatous surgeries a biological coating of cryopreserved HPAM (cHPAM), frozen according to two-step protocol. Efficiency of the cryopreservation regimen was assessed by release of cell growth factors from cryopreserved HPAM (cHPAM) in eye tissue after surgery, i. e. neurotrophic factor of cerebral origin (BDNF) and transforming growth factor of cells (TGF1β). We planned to procure cHPAM which would have a minimal permeability of these markers after thawing of the tissue and to use such freezing regimen, which would provide the longest release (up to 21 days) of neurotrophic and cellular factors of cHPAM in an eye. Materials and methods Experiments were carried out in Chinchilla rabbits (n = 25) kept in the animal house conditions with appro- priate light regimen and the standard diet. Adrenaline was administered to simulate eye glaucoma in animals [5, 7]. The work was performed in accordance with the General Principles of Experiments in Animals, approved by the 5th National Congress in Bioethics (Kiev, 2013) and consistent with the statements of the European Convention for the Protection of Vertebrate Animals Used for Experimental and Other Scientific Purposes (Strasbourg, 1986). To prepare HPAM we have used the same tech- nique as for the medical immune biological product ‘Plateks-amniotic membrane for ophthalmology’ (registration certificate Nr. 734/08-300 200 000, проблемы криобиологии и криомедицины problems of cryobiology and cryomedicine том/volume 26, №/issue 2, 2016 147 стандартном рационе питания. Для формирования глаукомы глаз животным вводили адреналин [3, 5]. Работу выполняли в соответствии с «Общими принципами экспериментов на животных», одоб- ренными V Национальным конгрессом по биоэтике (Киев, 2013) и согласованными с положениями «Европейской конвенции по защите позвоночных животных, используемых для экспериментальных и других научных целей» (Страсбург, 1986). Для приготовления препарата АОПЧ использо- вали такую же технологию, как и при создании медицинского иммуно-биологического препарата «Платекс-амниотическая оболочка для офтальмо- логии» (Регистрационное свидетельство №734/08- 300200000 до 09.07.2013 г.), с соблюдением условий Хельсинской декларации. Перед замораживанием фрагменты АОПЧ инкубировали в растворе криоконсерванта диме- тилсульфоксида (ДМСО) с конечной концент- рацией 10% (Корпорация «Артериум», Украина) в течение 18–20 мин, затем каждый фрагмент помещали в стерильный одноразовый контейнер («Nunc», Германия), герметизировали и маркиро- вали. Образцы замораживали по 2-этапной прог- рамме: охлаждение до –40°С со скоростью от 3 до 5 град/мин и дальнейшее погружение в жидкий азот (–196°С). После замораживания контейнеры с материалом переносили в низкотемпературный банк для хранения при температуре –196°С. После формирования в течение 2-х месяцев у лабораторных животных глаукомы проводили АГО, затем в зоне послеоперационного дефекта использовали кАОПЧ сразу после ее разморажи- вания [1]. Операцию выполняли в любом из свободных секторов глазного яблока между пря- мыми мышцами. У лимба, после предварительного определения проекции канала Шлемма, иссекали глубокие слои фильтрующей зоны вместе с сину- сом и трабекулой в виде треугольника. Скле- ральный лоскут фиксировали у его вершины к выпуклой части склеры одним П-образным швом и узловыми швами с каждой стороны с одномо- ментным захватом кАОПЧ. Для заживления на конъюнктивальную рану накладывали непрерыв- ный шов. Освобожденный от дебриса гомогенат из на- тивной и замороженной ткани АОПЧ, а также других тканей глаза лабораторных животных готовили следующим образом. Из жидкого азота извлекали одну дозу кАОПЧ, в части экспери- ментов содержание факторов роста определяли в незамороженной АОПЧ или здоровой ткани (рого- вица, сетчатка, глазной нерв и склера) из локуса АГО. Гомогенат получали из 100 мг ткани АОПЧ или ткани глаза, которую измельчали в пробирке 09/07/2013), the procedure complied with the conditions of the Declaration of Helsinki. Prior to freezing the HPAM fragments were incubated in dimethyl sulfoxide (DMSO) cryoprotectant solution at a final concentration of 10% (Arterium Corporation, Ukraine) for 18–20 min, then each fragment was placed into a sterile disposable container (Nunc, Germany), sealed and marked. The samples were frozen according to the two-step program: cooling down to –40°C at a rate of 3 to 5 deg/min and further immersion into liquid nitrogen (–196°C). After freezing the containers with the material were transferred to the Low Temperature Bank for storage at liquid nitro- gen temperature. Within 2 months after simulation of glaucoma the laboratory animals were subjected to AGS, during which the cHPAM was applied in a zone of post-surgery defect right after thawing [12]. The surgery was per- formed in any of the eyeball free sectors between the rectus muscles. Near the limb, after a preliminary determination of the projection of Schlemm’s canal, we have dissected the deep layers of filter area with a sinus and trabeculae as a triangle. The scleral flap was fixed at its top to the convex part of the sclera by means of one U-shaped suture and interrupted sutures on each side with a simultaneous capture of cHPAM. Conjunctival wound was closed with a continuous suture. Debris-free homogenate from native and frozen tissue of HPAM, as well as other eye tissues of laboratory animals were prepared as follows. A single dose of amniotic membrane was taken from liquid nitrogen, in some experiments the content of growth factors was determined in the non-frozen amniotic membrane or in healthy tissue (cornea, retina, optic nerve and sclera) from the locus of AGS. The homogenate was derived from 100 mg HPAM tissue or eye tissue which were ground in a 1.5 ml tube using a Potter micro-homogenizer in phosphate based physiological saline pH 7.4, supplemented with 1 mM protease inhibitor phenyl-methylsulfonilfluoride in 1:9 ratio. The resulted homogenate was cleared of debris by centrifugation at 1000g for 10 min. The supernatant was collected into separate tubes for the measurement of cell growth factors and neurotrophins. To assess the yield of growth factors BDNF and TGF1β the frozen-thawed cHPAM tissue was incuba- ted in a sterile physiological saline. The cHPAM tissue (100 mg) was placed into 1 ml solution at 37°C and after 1, 3, 6, 9 hrs the supernatant was collected for measurement of growth factors. Content of TGF1β, BDNF growth factors (human) was measured by highly sensitive test systems from DRG (USA; sensitivity 2 pg/ml) and R&D Systems (USA, sensitivity 20 pg/ml), respectively. Measure- 148 проблемы криобиологии и криомедицины problems of cryobiology and cryomedicine том/volume 26, №/issue 2, 2016 объемом 1,5 мл с помощью микрогомогенизатора Поттера в физиологическом растворе на фосфат- ном буфере рН 7,4 с добавлением 1 ммоль ингиби- тора протеаз фенилметилсульфонилфлуорида в соотношении 1:9. Полученный гомогенат освобож- дали от дебриса центрифугированием при 1000g в течение 10 мин. Надосадок отбирали в отдельную пробирку для измерения содержания факторов роста клеток и нейротрофинов. Для оценки выхода факторов роста BDNF и TGF1β размороженную ткань кАОПЧ инкубиро- вали в стерильном физиологическом растворе. Ткань кАОПЧ (100 мг) помещали в 1 мл раствора (37°С) и через 1, 3, 6, 9 ч отбирали надосадок для измерения содержания факторов роста. Содержание факторов роста BDNF и TGF1β (человека) измеряли высокочувствительными тест-системами «DRG» (США; чувствительность 2 пг/мл) и «R&D Systems» (США; чувствительность 20 пг/мл) соответственно. Измерения проводили согласно инструкции к данным тест-системам методом иммуноферментного анализа на полу- автоматическом спектрофотометре для 96-луноч- ных планшетов с вертикальным лучом «StatFax 2400» (США). Данные статистически обрабатывали методом Стьюдента и представляли на рисунках как сред- ние значения М ± m. Различия считали значимыми при р < 0,05. Результаты и обсуждение В результате проведенных исследований уста- новлено, что через 7, 14, 21 суток после наложения на место послеоперационного шва кАОПЧ, замо- роженной по 2-этапной программе, быстрее восстанавливалась ткань глаза и формировался мягкий шов. Один из наиболее важных показателей струк- турной целостности ткани АОПЧ после замора- живания-отогрева – способность удерживать внутриклеточные вещества. Достаточно распро- страненным является измерение выхода внутри- клеточных веществ из ткани, концентрацию которых принято определять сразу после размора- живания биообъекта. Однако при таком методи- ческом подходе остается неясным, как аппликация кАОПЧ в зоне послеоперационного шва спустя значительное время после размораживания может повлиять на ее сохранность. С целью наиболее объективной оценки структурной целостности кАОПЧ и моделирования реальных условий ее нахождения в органе зрения после размораживания ткань помещали в физиологический раствор, затем измеряли выход факторов роста клеток BDNF и TGF1β в надосадок. ments were carried out by ELISA with StatFax 2400 semiautomatic spectrophotometer (USA) with a vertical beam in 96-well plates according to the manufacturers’ instructions. The data were statistically processed by the Student test and represented in the Figures as M ± m. The differences were considered as significant at p < 0.05. Results and discussion The findings allowed to establish that to days 7, 14, and 21 after application of cHPAM, frozen-thawed by two-step program, to the site of post-surgery suture the ocular tissue recovered more quickly and a soft suture formed. One of the most important indices of HPAM tissue structure preservation after freeze-thawing could be the ability to keep the intracellular substances. Quite common is the measurement of intracellular substances release from a tissue, which concentration is usually determined immediately after thawing of biological object. However we believe such a methodical approach could not to provide a true information, since it has remained unclear how cHPAM application in the post-surgery suture zone could affect its safety in a considerable time after thawing. In order to more objectively assess the structural integrity of cHPAM and to simulate the real conditions of its being in an eye after thawing the tissue was placed in a physiologi- cal saline, and afterwards the release of growth factors BDNF and TGF1β into a supernatant was measured . After using two-step protocol of HPAM freezing in 10% DMSO solution the yield of growth factors within one hour was considerably lower than that with no cryoprotectant used during freezing. The findings suggested the higher preservation rate of the cells and tissues as well as their structural integrity, which were supported by the data of morphological studies [6]. After one-hour incubation of unfrozen HPAM tissue (control) in a physiological saline an insignificant release of BDNF and TGF1β growth factors was observed, after freezing according to two-step protocol a moderate yield was found (in average by 20% higher than the control) and a significant loss of cell contents was noticed in negative control (freeze-thawing with no cryoprotectant). Incubation of HMAP in physiolo- gical saline could simulate the coating of a wound surface of conjunctiva with the HPAM, i. e. we can conclude a release of the growth factors during healing (Fig. 1). Therefore, the effective healing of post- surgery suture wound will be largely determined by the durable release of biologically active substances from the cHPAM into an eye. After incubation of the HPAM tissue in physiological solution we determined the remaining amount of BDNF and TGF1β in the cHPAM tissue, since it was important проблемы криобиологии и криомедицины problems of cryobiology and cryomedicine том/volume 26, №/issue 2, 2016 149 После использования 2-этапного режима замо- раживания АОПЧ в 10%-м растворе ДМСО выход факторов роста в течение часа был существенно меньше, чем при замораживании без криопро- тектора. Полученные данные свидетельствуют о большей сохранности клеток и структурной целост- ности ткани и подтверждаются данными проведен- ного морфологического исследования [4]. В незамороженной ткани АОПЧ (контроль) после инкубации (1 ч) в физиологическом растворе наблюдался незначительный выход факторов роста BDNF и TGF1β, после замораживания по 2-этапно- му режиму – их умеренный выход (в среднем на 20% выше контроля), а в отрицательном контроле (замораживание без криопротектора) – значитель- ная потеря клеточного содержимого. Таким обра- зом, результаты инкубации АОПЧ в физиологичес- ком растворе, моделирующей пребывание кАОПЧ на раневой поверхности конъюнктивы, показывают что в процессе заживления ткань высвобождает факторы роста (рис. 1). Поэтому эффективность заживления послеоперационного шва будет в боль- шой степени определяться наиболее продолжи- тельным поступлением биологически активных веществ из кАОПЧ в орган зрения. После инкубации ткани АОПЧ в физиологичес- ком растворе мы определяли оставшееся в ткани кАОПЧ количество BDNF и TGF1β, поскольку важно было изучить содержание факторов роста не только в надосадке, но и в самой ткани кАОПЧ (рис. 2). Показано, что через 9 ч после разморажи- вания кАОПЧ (замораживание по 2-этапному режиму) сохраняется 65–75% клеточных ростовых факторов, в то время как при неоптимальных условиях замораживания уже через 3 ч после ото- грева их содержание составило не более 10–15% от первоначального. Этот эффект объясняется уве- личением степени разрушения клеток ткани кАОПЧ после замораживания при погружении в жидкий азот и, напротив, при 2-этапном режиме замораживания в 10%-м растворе ДМСО сохра- няется целостность клеток АОПЧ и миними- зируется потеря клеточных факторов роста после размораживания ткани кАОПЧ. В дальнейшем важно было оценить поступление и распределение факторов роста в разных тканях органа зрения при использовании кАОПЧ после АГО. Для этого в месте операционного вмеша- тельства мы исследовали ткань роговицы, сет- чатки, глазного нерва и склеры. В этих тканях в разные сроки после проведения операции было измерено содержание факторов роста BDNF и TGF1β. На рис. 3 показано, что в ткань роговицы на 1-е и 3-и сутки из кАОПЧ, по сравнению с неза- мороженной, более интенсивно поступают факторы 0 200 400 600 800 1000 1200 1400 1600 0 1 3 6 9 0 50 100 150 200 250 300 350 400 0 1 3 6 9 Время инкубации, ч Incubation term, hrs Рис. 1. Содержание факторов роста BDNF (А) и TGF1β (B) в физиологическом растворе после их выхода из криоконсервированной АОПЧ, подвергнутой гипотер- мическому хранению после размораживания: – контроль; – замораживание без криопротектора; – замораживание в 10% ДМСО. Fig. 1. Content in the physiological saline of BDNF (A) and TGF1β (B) growth factors released from HPAM stored hypothermically after thawing: – control; – freeze- thawing without cryoprotectant; – freeze-thawing with 10% DMSO. Время инкубации, ч Incubation term, hrs to examine the content of growth factors not only in the supernatant, but in the cHPAM tissue itself (Fig. 2). It has been shown that 9 hrs later thawing the cHPAM (frozen-thawed according to two-step protocol) has retained 65–75% cell growth factors, while under non- optimal conditions of freezing their content was not more than 10–15% of the initial one already 3 hrs later thawing. This effect could be associated with the increased cell destruction in cHPAM tissue after A B С од ер жа ни е BD N F пг /м л BD N F co nt en t, p g/ m l С од ер жа ни е TN F1 β, п г/м л TN F1 β co nt en t, p g/ m l 150 проблемы криобиологии и криомедицины problems of cryobiology and cryomedicine том/volume 26, №/issue 2, 2016 роста, что, возможно, связано с выходом из части поврежденных клеток кАОПЧ внутриклеточного содержимого. По сравнению с контролем этот показатель был больше на 60%. В эти же сроки (например, в первые сутки) поступление фактора роста BDNF в ткань сетчатки и глазного нерва превышало данный показатель незамороженной АОПЧ на 100%. Такая же тенденция сохранялась в отношении глазного нерва, в котором на 7-е сутки содержание фактора роста BDNF было на 30% выше, чем в незамороженной АОПЧ. Следует отметить, что выход нейротрофина BDNF в ткань сетчатки и роговицы сравним с поступлением из незамороженной АОПЧ. Для склеры отмечалось недостаточное поступление BDNF, как можно предположить, из поврежденных клеток ткани кАОПЧ как на начальных сроках, так и после 7, 14, 21 суток наблюдения. Установлено, что основное количество фактора роста клеток TGF1β накапливается в ткани рого- вицы в первые сутки аппликации кАОПЧ (рис. 4), незначительное – в глазном нерве, сетчатке и склере. При этом действие незамороженной и криоконсервированной АОПЧ было сходным [9, 12]. На поздних сроках наблюдения содержание TGF1β, превышающее контрольное, отмечалось только в роговице, значимых различий в ткани сетчатки, глазном нерве и склере при использо- вании кАОПЧ по сравнению с незамороженной АОПЧ выявлено не было. Однако в ткани склеры наблюдалась тенденция к снижению содержания TGF1β. 0 500 1000 1500 2000 2500 3000 0 1 3 6 9 0 200 400 600 800 1000 0 1 3 6 9 Рис. 2. Содержание факторов роста BDNF (А) и TGF1β (B) в ткани АОПЧ после криоконсервирования и гипотермического хранения: – контроль; – замораживание без криопротектора; – замораживание в 10% ДМСО. Fig. 2. Content of BDNF (A) and TGF1β (B) growth factors in the HPAM tissue following cryopreservation and hypothermic storage: – control; – freeze-thawing without cryoprotectant; – freeze-thawing with 10% DMSO. С од ер жа ни е BD N F пг /м л BD N F co nt en t, p g/ m l С од ер жа ни е TN F1 β, п г/м л TN F1 β co nt en t, p g/ m l Время инкубации, ч Incubation term, hrs Время инкубации, ч Incubation term, hrs freezing by immersion into liquid nitrogen unlike the two-step protocol of freezing in 10% DMSO solution, when the integrity of HPAM cells was preserved and the loss of cell growth factors was minimal after thawing of cHPAM tissue. Afterwards it was of an importance to assess the delivery and distribution of growth factors in different ocular tissues when using cHPAM after the AGS. To do this we investigated the tissues of cornea, retina, optic nerve and sclera in the site of surgery. At different post surgery terms we measured the content of growth factors BDNF and TGF1β in these tissues. Fig. 3 shows that there was more intense release of growth factors from the cHPAM into the corneal tissue to days 1 and 3 if compared with unfrozen one, that might be associated with releasing of intracellular content from some damaged cells of the frozen HPAM. The index was higher than 60% if compared to the control. At the same time period (e.g. during the first 24 hrs) the entering of BDNF growth factor into retina and optic nerve tissue exceeded by 100% this index for an unfrozen HPAM. The same tendency was found in the optic nerve, wherein to day 7 the growth factor BDNF content was 30% higher than in unfrozen HPAM. It should be noted that the release of BDNF neurotrophin into retinal and corneal tissues was similar to the one in unfrozen HPAM. For sclera there was found a poor BDNF release from the cHPAM tissue both at initial terms and after days 7, 14, 21 of observation period. Major amount of the cell growth factor TGF1β has been found to be accumulated in the corneal tissue A B 0 200 400 600 800 1000 1 3 7 14 21 0 200 400 600 800 1000 1 3 7 14 21 проблемы криобиологии и криомедицины problems of cryobiology and cryomedicine том/volume 26, №/issue 2, 2016 151 Следует отметить, что через 7 суток содер- жание BDNF и TGF1β в роговице после апплика- ции как нативной, так и кАОПЧ было практически одинаковым, что по-видимому, связано с высво- бождением факторов роста не из поврежденных замораживанием, а из целых клеток, которые в нативной и криоконсервированной АОПЧ присут- ствуют в значительном количестве. Аналогичная закономерность наблюдается при исследовании тканевой тропности поступления фактора роста клеток BDNF в сетчатку и глазной нерв. С 1-х по 3-и сутки аппликации кАОПЧ в зоне операционного дефекта содержание нейротрофина BDNF увеличивалось как в сетчатке, так и глазном нерве, поскольку эти ткани обогащены нервными клетками. Наибольшее содержание TGF1β в этот срок отмечалось в роговичной ткани. Характерно, 0 200 400 600 800 1000 1 3 7 14 21 С од ер жа ни е BD N F пг /м л BD N F co nt en t, p g/ m l Период наблюдения, сут Observation period, day Ткань роговицы Corneal tissue С од ер жа ни е BD N F пг /м л BD N F co nt en t, p g/ m l Период наблюдения, сут Observation period, day Ткань сетчатки Retinal tissue С од ер жа ни е BD N F пг /м л BD N F co nt en t, p g/ m l Период наблюдения, сут Observation period, day Ткань глазного нерва Optic nerve tissue С од ер жа ни е BD N F пг /м л BD N F co nt en t, p g/ m l Период наблюдения, сут Observation period, day Ткань склеры Scleral tissue 0 200 400 600 800 1000 1 3 7 14 21 Рис. 3. Содержание ростового фактора BDNF в различных тканях органа зрения после применения АОПЧ в разные сроки после АГО: – контроль; – замораживание-отогрев в 10% ДМСО. Fig. 3. Content of BDNF growth factor in various tissues of eye in different terms after applying the HPAM during antiglaucomatous surgery: – control; – freeze-thawing in 10% DMSO. within the first 24 hrs of cHPAM application (Fig. 4), an insignificant content was found in the ophthalmic nerve, retina and sclera. Herewith the action of cryopreserved and unfrozen HPAM was similar [3, 11]. At late observation terms the TGF1β content, exceeding the control, was observed only in cornea, and no statistically significant differences were found in retinal tissue, ophthalmic nerve and sclera after using cHPAM if compared with unfrozen HPAM. However, there was a tendency to decrease the TGF1β content in sclera tissue. It should be noted that in 7 days the BDNF and TGF1β content in cornea after the application of both native and cHPAM was virtually the same, which was likely due to the release of growth factors from the cells not damaged by freezing, which amount was large both in native and cryopreserved HPAM. 0 50 100 150 200 250 300 1 3 7 14 21 152 проблемы криобиологии и криомедицины problems of cryobiology and cryomedicine том/volume 26, №/issue 2, 2016 С од ер жа ни е TN F1 β, п г/м л TN F1 β co nt en t, p g/ m l Период наблюдения, сут Observation period, day Ткань роговицы Corneal tissue С од ер жа ни е TN F1 β, п г/м л TN F1 β co nt en t, p g/ m l Период наблюдения, сут Observation period, day Ткань сетчатки Retinal tissue С од ер жа ни е TN F1 β, п г/м л TN F1 β co nt en t, p g/ m l Период наблюдения, сут Observation period, day Ткань глазного нерва Optic nerve tissue С од ер жа ни е TN F1 β, п г/м л TN F1 β co nt en t, p g/ m l Период наблюдения, сут Observation period, day Ткань склеры Scleral tissue 0 50 100 150 200 250 300 1 3 7 14 21 0 50 100 150 200 250 300 1 3 7 14 21 0 50 100 150 200 250 300 1 3 7 14 21 Рис. 4. Содержание ростового фактора TGF1β в различных тканях органа зрения после применения АОПЧ в разные сроки после АГО: – контроль; – замораживание-отогрев в 10% ДМСО. Fig. 4. Content of TGF1β growth factor in various tissues of eye in different terms after applying the HPAM during antiglaucomatous surgery: – control; – freeze-thawing in 10% DMSO. A similar regularity was observed in the study of the tissue tropism associated with the entering of BDNF growth factor into retina and ophthalmic nerve. From the day 1 to day 3 following cHPAM application in the zone of surgery defect the BDNF neurotrophin content was increased in retina and in optic nerve, since these tissues were enriched with nerve cells. The highest content of TGF1β in this term was noted in corneal tissue. Interestingly, that the largest amount of neuroprotective growth factor BDNF was revealed in retina and optic nerve, which was higher than in cornea (in average by 100%) and if compared to unfrozen HPAM. Within the period from day 7 to 21 of observation the delivery of growth factors into retina and optic nerve was stabilized and approached to the control, which was in consistence with our previous data [6]. Morphological analysis enabled to establish что в сетчатке и глазном нерве выявлено наиболь- шее количество нейропротекторного фактора роста BDNF, которое выше, чем в роговице (в среднем на 100%), по сравнению с незамороженной АОПЧ. В срок от 7-и до 21-х суток поступление факторов роста в сетчатку и глазной нерв стабилизируется и выравнивается по сравнению с контролем, что совпадает с ранее полученными данными [4]. В результате морфологического анализа было установлено, что при формировании глаукомы в первую очередь гибели и атрофии подвергались мелкие и средние ганглиозные клетки сетчатой оболочки. Количество крупных клеток статисти- чески значимо уменьшалось, но их процентное содержание по отношению к общему количеству клеток увеличивалось [4, 8]. Поэтому наибольшее количество биологически активных веществ, как проблемы криобиологии и криомедицины problems of cryobiology and cryomedicine том/volume 26, №/issue 2, 2016 153 Литература 1. Золотарев А.В., Милюдин Е.С. Хирургическое лечение рецидивирующего птеригиума с пластикой силико- высушенной амниотической мембраной // Вестник оф- тальмологии. – 2007. – Т. 123, №1. – С. 39–42. 2. Кривошеина О.П. Пролиферативная витреоретинопатия: факторы патогенеза и закономерности развития // Вестник офтальмологии. – 2003. – №3. – С. 47–50. 3. Липовецкая Е.М. Развитие экспериментальной глаукомы при длительном внутривенном введении адреналина // Офтальмолог. журнал. – 1966. – №3.– С. 221–223. 4. Малова Н.Г., Демин Ю.А., Казмирук И.Л. Интрасклераль- но-супроцилиарная имплантация криоконсервированного амниона с нейропротекторной целью при эксперимен- тальной адреналин-индуцированной глаукоме // Мир медицины и биологии. – 2013. – Т. 9, №1–4. – С. 71–75. 5. Михейцева И.Н. Модели глаукомы, преимущества и недостатки. Адреналин-индуцированная глаукома как адекватная модель глаукомного процесса человека // Офтальмолог. журнал. – 2011. – №3. – С. 89–92. 6. Плацента: криоконсервирование, структура, свойства и перспективы клинического применения / Под ред. В.И. Гри- щенко, Т.Н. Юрченко. – Харьков, 2011. – 292 с. 7. Прокопюк В.Ю., Прокопюк О.С. Оценка сохранности эксплантов плаценты, пуповины и плодных оболочек после криоконсервирования // Клітинна та органна трансплантологія. – 2015. – Т. 3, №1. – С. 29–33. 8. Самусенко И.А., Алексеев В.Н., Абузайед В.Н. Морфологи- ческие проявления лечебного патоморфоза глаукоматоз- ной оптической нейропатии при экспериментальной глаукоме // Глаукома. – 2003. – №4. – С. 21–32. References 1. Grischenko V.I., Yurchenko T.N., editors. Placenta: cryopre- servation, structure, properties and perspectives of clinical applications. Kharkov; 2011. 2. Krivosheina O.P. Proliferative vitreoretinopathy: factors of pathogenesis and development regularit ies. Vestnik Ofthalmologii 2003; (3): 47–50. 3. Limb G.A., Chignell A.H., Green W. et al. Distribution of TGF and its reactive vascular adhesion molecules in fibrovascular membranes of proliferative diabetic retinopathy. Br J Ophthalmol 1996; 80(2): 168–173. 4. Limb G.A., Little B.C., Meager A. et al. Cytokines in proliferative vitreoretinopathy Eye 1991; 5(6): 686–693. 5. Lipovetskaya E.M. Development of experimental glaucoma with prolonged intravenous administration of adrenaline. Journal of Ophthalmology (Ukraine) 1966; (3): 221–223. 6. Malova N.G., Demin Yu.A, Kazmiruk I.L. Intrascleral supracilliar implantation of cryopreserved amnion with neuroprotective aim in experimental adrenaline induced glaucoma. Mir Meditsyny i Biologii 2013; 9(4): 71–75. 7. Mikheytseva I.H. Glaucoma models, advantages and disadvantages. Adrenaline-induced glaucoma as an adequate model of human glaucoma process. Journal of Ophthalmology (Ukraine) 2011; (3): 89–92. 8. Mori K., Duh E., Gehlbach P. et al. Pigment epithelium-derived factor inhibits retinal and choroidal neovascularization J Cell Physiol 2002; 188(2): 253–263. 9. Prokopyuk V.Yu., Prokopyuk O.S. Evaluation of the safety of placental explants, umbilical cord and membranes after cryopreservation cryopreservation. Klitynna ta Organna Transplantologіya 2015; 3(1): 29–33. мы предполагаем, поступает в наиболее повреж- денные в результате глаукомы клетки. Возможно существует качественная и количественная зави- симость накопления факторов роста клеток, опре- деляемая видом ткани глаза и тропностью фактора роста. Поскольку именно в тканях глаза, повреж- денных глаукомой, по-видимому, имеются дефект- ные рецепторные и ганглиозные нервные клетки, в которые из кАОПЧ в значимых количествах поступает обладающий выраженным нейропротек- торным действием фактор роста BDNF [11]. Выводы Таким образом, в зоне проведения антиглауко- матозной операции после аппликации кАОПЧ, замороженной по 2-этапной программе в растворе 10%-го ДМСО, установлено увеличение содержа- ния факторов роста BDNF и TGF1β в тканях глаза (до 7-ми суток) и их стабильный уровень на про- тяжении всего послеоперационного срока наблю- дения (до 21-х суток). При использовании эффек- тивного режима замораживания АОПЧ в месте послеоперационного дефекта обеспечивается более длительное высвобождение факторов роста BDNF и TGF1β в органе зрения. that experimental glaucoma was accompanied primarily with the death and atrophy of small and medium sized ganglion cells of retina. Number of large cells was significantly decreased, but their proportion in the total number of cells increased [6, 10]. Therefore we believe the largest amount of biologically active substances to enter the cells mostly damaged by glaucoma. There is likely a qualitative and quantitative dependence of cell growth factors accumulation, determined by the type of an ocular tissue and growth factor tropism. Since the very in the damaged by glaucoma ocular tissues there are likely defective receptor and ganglion nerve cells, whereto from cHPAM in considerable amounts the BDNF having a pronounced neuroprotective effect is released [8]. Conclusions Thus, application of HPAM, frozen-thawed according to the two-step program in 10% DMSO solution in the AGS zone resulted in an increased content of BDNF and TGF1β growth factors in ocular tissues (up to 7 days’ observation term) and stable level over the postoperative observation period (up to 21 days observation term). An effective freeze- thawing regimen for HPAM provided a sustained release of BDNF and TGF1β growth factors in an eye from the site of post-surgery defect. 154 проблемы криобиологии и криомедицины problems of cryobiology and cryomedicine том/volume 26, №/issue 2, 2016 9. Limb G.A., Chignell A.H., Green W. et al. Distribution of TGF and its reactive vascular adhesion molecules in fibrovascular membranes of proliferative diabetic retinopathy // Br. J. Ophthalmol. – 1996. – Vol. 80, №2. – P. 168–173. 10. Limb G.A., Little B.C., Meager A. et al. Cytokines in proliferative vitreoretinopathy // Eye. – 1991. – Vol. 5, №6. – P. 686–693. 11. Mori K., Duh E., Gehlbach P. et al. Pigment epithelium–derived factor inhibits retinal and choroidal neovascularization // J. Cell. Physiol. – 2002. – Vol. 188, №2. – P. 253–263. 12. Yam H.F., Pang C.P., Fan D.S. et al. Growth factor changes in ex vivo expansion of human limbal epithelial cells on human amniotic membrane // Cornea. – 2002. – Vol. 21, №1. – Р. 101– 105. 10. Samusenko I.A., Alekseev V.N., Abuzayed V.N. Morphological manifestations of therapeutic pathomorphism of glaucomatous optic neuropathy in experimental glaucoma. Glaukoma 2003; 4(21): 32. 11. Yam H.F., Pang C.P., Fan D.S. et al. Growth factor changes in ex vivo expansion of human limbal epithelial cells on human amniotic membrane Cornea 2002; 21(1): 101–105. 12. Zolotarev A.V., Milyudin E.S. Surgical treatment of recurrent pterygium with plastics by silico-dried amniotic membrane. Vestnik Oftalmologii 2007; 123(1): 39–42.