Морфологічні особливості селезінки за умов експериментальної моделі поліорганної недостатності та застосування стовбурових клітин
Saved in:
| Published in: | Проблемы криобиологии и криомедицины |
|---|---|
| Date: | 2018 |
| Main Authors: | , , , , , , , , , |
| Format: | Article |
| Language: | Ukrainian |
| Published: |
Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України
2018
|
| Subjects: | |
| Online Access: | https://nasplib.isofts.kiev.ua/handle/123456789/138367 |
| Tags: |
Add Tag
No Tags, Be the first to tag this record!
|
| Journal Title: | Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine |
| Cite this: | Морфологічні особливості селезінки за умов експериментальної моделі поліорганної недостатності та застосування стовбурових клітин / В.В. Ліходієвський, А.В. Корсак, Д.М. Іродов, Ю.Б. Чайковський, В.А. Кордюм, С.С. Олефір, А.О. Забіла, М.В. Ковальчук, Т.А. Рубан, Н.С. Шувалова // Проблемы криобиологии и криомедицины. — 2018. — Т. 28, № 1. — С. 64-68. — Бібліогр.: 6 назв. — укр., англ. |
Institution
Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine| _version_ | 1859758516658503680 |
|---|---|
| author | Ліходієвський, В.В. Корсак, А.В. Іродов, Д.М. Чайковський, Ю.Б. Кордюм, В.А. Олефір, С.С. Забіла, А.О. Ковальчук, М.В. Рубан, Т.А. Шувалова, Н.С. |
| author_facet | Ліходієвський, В.В. Корсак, А.В. Іродов, Д.М. Чайковський, Ю.Б. Кордюм, В.А. Олефір, С.С. Забіла, А.О. Ковальчук, М.В. Рубан, Т.А. Шувалова, Н.С. |
| citation_txt | Морфологічні особливості селезінки за умов експериментальної моделі поліорганної недостатності та застосування стовбурових клітин / В.В. Ліходієвський, А.В. Корсак, Д.М. Іродов, Ю.Б. Чайковський, В.А. Кордюм, С.С. Олефір, А.О. Забіла, М.В. Ковальчук, Т.А. Рубан, Н.С. Шувалова // Проблемы криобиологии и криомедицины. — 2018. — Т. 28, № 1. — С. 64-68. — Бібліогр.: 6 назв. — укр., англ. |
| collection | DSpace DC |
| container_title | Проблемы криобиологии и криомедицины |
| first_indexed | 2025-12-02T02:21:58Z |
| format | Article |
| fulltext |
1Bogomolets National Medical University, Kyiv, Ukraine
2Institute of Genetic and Regenerative Medicine of the National
Academy of Medical Sciences of Ukraine, Kyiv, Ukraine
1Національний медичний університет імені О.О. Богомольця,
м. Київ, Україна
2ДУ «Інститут генетичної та регенеративної медицини НАМН Ук-
раїни», м. Київ, Україна
Надійшла 26.01.2018
Прийнята до друку 19.02.2018
Received January, 26, 2018
Accepted February, 19, 2018
Multiple organ failure syndrome (MOFS) is a complex
of pathological changes, resulting in terminal stage of
functioning in many organs, being characterized by
such a degree of organ damage, when they are unable
to support the body life. To date there are no clear clinical
guidelines and efficient therapeutic products to treat
MOFS consequences have been designed.
In the experiment we developed the model of syste-
mic damage of a body with tetrachloromethane [4], based
on reproducting of oxidative stress, which caused MOFS
development in human [6], being accompanied by patho-
logical changes in liver, lungs, kidneys and spleen [1, 5].
At current state of medicine one considers mesen-
chymal fibroblast-like stem cells to be promising in
correction of various pathologies because of their mul-
tipotency, capability of differentiating into cells of me-
sodermal organs and a simple procurement from diffe-
rent sources [3]. There are the reports about a succes-
sful use of mesenchymal stem cells to treat liver cirrhosis,
cicatricial changes in myocardium [3]. Now, there is only
scarce information about morphological changes in
spleen under MOFS and stem cell application for splenic
function restoration.
In this context the research aim was to study the
morphological features of spleen under experimental
simulation of MOFS and stem cell administration.
Research was performed in 2–3-month-old ICR mice
(n = 45), weighing 22–24 g. Animals were divided into
УДК 616.411-008.6-092.4:615.361:611.018.1
В.В. Ліходієвський1,*, А.В. Корсак1, Д.М. Іродов2, Ю.Б. Чайковський1,
В.А. Кордюм2, С.С. Олефір1, А.О. Забіла1, М.В. Ковальчук2, Т.А. Рубан2, Н.С. Шувалова2
Морфологічні особливості селезінки за умов експериментальної моделі
поліорганної недостатності та застосування стовбурових клітин
UDC 616.411-008.6-092.4:615.361:611.018.1
V.V. Likhodiievskyi1,*, A.V. Korsak1, D.M. Irodov2, Yu.B. Chaikovsky1, V.A. Kordium2,
S.S. Olefir1, A.O. Zabila1, M.V. Kovalchuk2, T.A. Ruban2, N.S. Shuvalova2
Spleen Morphological Features Under Experimental Model
of Multiple Organ Failure and Stem Cell Application
Ключові слова: регенерація, синдром поліорганної недостатності, мезенхімальні стовбурові клітини.
Ключевые слова: регенерация, синдром полиорганной недостаточности, мезенхимальные стволовые клетки.
Key words: regeneration, multiple organ failure, mesenchymal stem cells.
день стовбурової клітини. коротке повідомлення stem cell day. short communication
This is an Open Access article distributed under the terms of the Creative Commons Attribution License (http://creativecommons.org/licenses/by/4.0),
which permits unrestricted reuse, distribution, and reproduction in any medium, provided the original work is properly cited.
© 2018 V.V. Likhodiievskyi et al. Published by the Institute for Problems of Cryobiology and Cryomedicine
Probl Cryobiol Cryomed 2018; 28(1):064–068
https://doi.org/10.15407/cryo28.01.064
*Автор, якому необхідно надсилати кореспонденцію:
бульв. Т. Шевченка, 13, м. Київ 01601;
тел.: (+38 044) 454-49-89
електронна пошта: Legebrill@gmail.com
*To whom correspondence should be addressed:
13, T. Shevchenko ave., Kyiv, Ukraine 01601;
tel.:+380 44 454 4989
e-mail: Legebrill@gmail.com
Синдром поліорганної недостатності (СПОН) –
це сукупність патологічних змін, які призводять до
термінальної стадії функціонування багатьох орга-
нів і характеризується таким ступенем ураженням
органів, при якому вони не здатні підтримувати жит-
тєзабезпечення організму. На даний час не розроб-
лено чітких клінічних рекомендацій та дієвих засо-
бів лікування наслідків СПОН.
У експерименті розроблено модель системного
ураження організмy тетрахлорметаном [4], яка грун-
тується на відтворенні оксидативного стресу, що вик-
ликає розвиток СПОН у людини [6] і супроводжується
патологічними змінами печінки, легенів, нирок та
селезінки [1, 5].
На сучасному етапі розвитку медицини для ко-
рекції різних патологій перспективним об’єктом ви-
користання вважаються мезенхімальні фібробласто-
подібні стовбурові клітини, оскільки вони є мульти-
потентними, здатні до диференціації в клітини органів
мезодермального походження і можуть бути легко
отримані з різних джерел [3]. Існують повідомлення
про успішне застосування мезенхімальних стовбу-
рових клітин із метою лікування цирозу печінки,
рубцевих змін міокарда [3]. На даний час є небагато
відомостей щодо морфологічних зміни селезінки за
умов СПОН та застосування стовбурових клітин для
відновлення функції селезінки.
У зв’язку із вищевикладеним метою роботи було
дослідження морфологічних особливостей селезінки
проблеми кріобіології і кріомедицини
problems of cryobiology and cryomedicine
том/volume 28, №/issue 1, 2018
65
за умов експериментального моделювання СПОН та
введення стовбурових клітин.
Роботу виконували на 2–3-місячних мишах (n =
45) лінії ICR, масою 22–24 г. Тварин розділили на
групи. Контрольну групу (n = 5) склали тварини,
яким внутрішньовенно вводили 0,3 мл 0,9%-го роз-
чину NaCl, без моделювання патології. Твари-
нам експериментальної групи 1 (n = 20) моделювали
поліорганну недостатність внутрішньоочеревин-
ним введенням 0,3 мл 30%-го масляного розчину
тетрахлорметану 2 рази на тиждень протягом 12 тиж-
нів.
Мишам експериментальної групи 2 (n = 20) одра-
зу ж після закінчення моделювання СПОН (внутріш-
ньоочеревинне введення 0,3 мл 30%-го масляного
розчину тетрахлорметану 2 рази на тиждень протягом
12 тижнів) однократно внутрішньовенно вводили
1 × 104 ембріональних мезенхімальних фібробласто-
подібних стовбурових клітин мишей лінії ICR, носіїв
гену GFP. Використовували вказану дозу мезенхі-
мальних фібробластоподібних стовбурових клітин
мишей лінії ICR, оскільки результати попередніх до-
сліджень довели, що введення більшої їх концентрації
недоцільне [2].
Первинну культуру мишиних ембріональних клітин
отримували з м’яких тканин 15–17-денних ембріонів
мишей. Фрагменти тканин витримували в розчині
пеніциліну та стрептоміцину, обробляли трипсином,
ресуспендували та висівали на середовище DMEM.
У експерименті використовували клітини не вище дру-
гого пасажу.
Через 3 та 9 тижнів після введення стовбурових
клітин усіх тварин виводили з експерименту. Для гіс-
тологічного аналізу забирали фрагменти селезінки.
Після стандартної їх обробки виготовляли парафі-
нові зрізи, які забарвлювали гематоксиліном та еози-
ном. Мікропрепарати досліджували на мікроскопі
«Olympus BX51» («Olympus», Японія). Мікрофото-
графії аналізували за допомогою програми аналізу
біомедичних зображень «ImageJ v. 1.50.» («National
Institutes of Health», США). Морфометрично визна-
чали середню площу лімфоїдних фолікулів, питому
площу білої пульпи.
Утримання тварин, маркування та необхідні ма-
ніпуляції виконували з дотриманням принципів
біоетики та положень Директиви 2010/63/EU Ради
Європи та Європейського парламенту «Щодо захисту
лабораторних тварин, які використовуються з науко-
вою метою».
Отримані цифрові дані обробляли за допомогою
статистичного пакету «GNU PSPP» («Free software
foundation», США) із перевіркою на нормальність роз-
поділу за критерієм Колмогорова-Смирнова, а також
критерієм Крускала-Уолліса, для порівнянням ознак
groups. The control group (n = 5) comprised the ani-
mals with intravenous injection of 0.3 ml of 0.9% NaCl,
with no pathology simulation. In animals of experi-
mental group 1 (n = 20) we simulated a multiple organ
failure via intraperitoneal administration of 0.3 ml of
a 30% tetrachloromethane oil solution twice a week for
12 weeks. Immediately after completing MOFS si-
mulation (intraperitoneal administration of 0.3 ml of a
30% tetrachloromethane oil solution twice a week for
12 weeks) the mice of experimental group 2 (n = 20)
were intravenously injected with 1 × 104 embryonic me-
senchymal fibroblast-like stem cells of ICR mice, GFP
gene carriers.We used here just the mentioned dose of
mesenchymal fibroblast-like stem cells of ICR mice,
since their higher concentration was proven to be inexpe-
dient in previous findings [2].
The primary cell culture was derived from soft tissues
of 15–17-day murine embryos. The tissue fragments
were kept in Penicillin and Streptomycin solution, treated
with trypsin, resuspended and inoculated in DMEM. The
cells from cultures not older than passage 2 were used in
the experiment.
In 3 and 9 weeks after stem cell administration, all
the animals were sacrificed. Spleen fragments were taken
for histological analysis. After their standard treatment,
the paraffin sections were prepared, further stained with
hematoxylin and eosin. The micropreparations were
analyzed with microscope Olympus BX51 (Olympus, Ja-
pan). Microphotographs were processed by the Image J
(version 1.50) software (National Institutes of Health,
USA). An average area of lymphoid follicles and a spe-
cific one of white pulp were determined morphomet-
rically.
Animal housing, labeling and necessary manipu-
lations were carried out in compliance with bioethical
principles and provisions of the Directive 2010/63/ EU of
the European Parliament and of the Council ‘On the Pro-
tection of Animals Used for Scientific Purposes’.
The obtained digital data was processed using the
software for statistical analysis GNU PSPP (Free Soft-
ware Foundation, USA). The normal distribution was
verified with the Kolmogorov-Smirnov test and Kruskal-
Wallis one as well. The Mann-Whitney U test was used
to compare the characteristics between the groups.
The analysis of spleen histological preparations of
animals of control group demonstrated the spleen paren-
chyma to be of a normal structure, consisted of red
and white pulp (Fig. 1). In spleen of the animals control
group the white pulp area was 53.49%. The amount of
connective tissue was minimal. The white pulp was re-
presented by medium-sized follicles (lymph nodes)
and periarterial sheaths. An average area of follicle was
(75,667.24 ± 4,389.65) µm2. The red pulp was formed
by Billroth’ strands and venous sinuses.
66 проблеми кріобіології і кріомедицини
problems of cryobiology and cryomedicine
том/volume 28, №/issue 1, 2018
між групами використовували непараметричний
критерій Манна-Уїтні.
Аналіз гістологічних препаратів селезінки тва-
рин контрольної групи виявив, що паренхіма селе-
зінки мала нормальну будову і складалася із черво-
ної та білої пульпи (рис. 1). В селезінці тварин конт-
рольної групи площа білої пульпи дорівнювала 53,49%.
Кількість сполучної тканини мінімальна. Біла пульпа
предствлена фолікулами середнього розміру (лімфа-
тичні вузлики) та періартеріальними піхвами. Середня
площа фолікула складала (75667,24 ± 4389,65) мкм2
Червона пульпа формувалася селезінковими тяжами
Більрота і венозними синусами.
In sections of the animals spleen of experimental
group 1 the parenchyma was revealed to consist of red
and white pulp. The morphological structure of spleen
of animals in this group had signs of atrophy, which
were more pronounced in 3 weeks after last injection of
tetrachloromethane and were kept to week 9 (Fig. 1).
To week 3 the area of white pulp was 42.0% and de-
creased down to 37.2% to week 9. The size of follicles
was reduced, and there were insignificant areas of fibro-
sis in them. An average area of follicle to week 3 was
(48,591.74 ± 2,229.70) µm2, being significantly lo-
wer than in the animals of control group (p < 0.05). To
week 9 after completing the MOFS simulation, the ave-
rage area of follicles was (25,413.46 ± 4,808.64) µm2,
which was significantly lower than in previous obser-
vation period (p < 0.05). The red pulp had signs of fib-
rosis.
In animals spleen of experimental group 2, subjected
to the MOFS model and stem cell administration, the histo-
logical sections, stained with hematoxylin and eosin, de-
monstrated a typical pathomorphological picture of reac-
tive changes and signs of antigenic stimulation in 3 and
9 weeks after the last injection of tetrachlorometha-
ne. To week 3 after completing MOFS simulation and
stem cell administration, a part of white pulp from the
cutting area was 64.5% with a decrease down to 62.4%
to week 9. The follicles in spleen had a large size and dark
color, and the fibrosis zones were practically absent
in them. The average area of spleen follicles 3 weeks
Рис. 2. Селезінка з ознаками атрофії. Модель СПОН
через 9 тижнів після закінчення моделювання. По-
рушене співвідношення червоної та білої пульпи в бік
зменшення кількості останньої. Фолікули зморщені.
Кількість клітинних елементів зменшена. Забарвлення
гематоксиліном та еозином.
Fig. 2. Spleen with atrophy signs. MOFS model 9 weeks
after finishing the simulation. Distorted ratio of red and
white pulp towards the reduced amount of white pulp. Fol-
licles are shrunk. Reduced number of cell elements. Stain-
ing with hematoxylin and eosin.
Рис. 1. Селезінка. Контроль. Нормальне співвідно-
шення червоної та білої пульпи. Чітко визначається
світлий гермінативний центр. Забарвлення гематокси-
ліном та еозином.
Fig. 1. Spleen. Control. Normal ratio of red and white pulp.
Clear light germinal center is distinctly revealed. Staining
with hematoxylin and eosin.
На гістологічних препаратах селезінки тварин екс-
периментальної групи 1 виявлено, що паренхіма скла-
далась із червоної та білої пульпи. Морфологічна
структура селезінки тварин даної групи мала ознаки
атрофії, які були більш виражені через 3 тижні після
останньої ін’єкції тетрахлорметану та зберагілися на
9-му тижні (рис. 2). На 3-му тижні площа білої пульпи
складала 42,0% і зменшилася до 37,2% на 9-му тижні.
Розмір фолікулів зменшений, в них були наявні
незначні ділянки фіброзу. Середня площа фолікула
на 3-му тижні складала (48591,74 ± 2229,70) мкм2,
що значуще менше, ніж у тварин контрольної групи
(р < 0,05). На 9-му тижні після закінчення моделю-
вання СПОН середня площа фолікулів складала
(25413,46 ± 4808,64) мкм2, що значуще менше порів-
няно з попереднім терміном спостереження (p < 0,05).
Червона пульпа мала ознаки фіброзу.
проблеми кріобіології і кріомедицини
problems of cryobiology and cryomedicine
том/volume 28, №/issue 1, 2018
67
У селезінці тварин експериментальної групи 2,
з моделлю СПОН та введенням стовбурових клітин,
на гістологічних препаратах, забарвлених гематок-
силіном і еозином, через 3 та 9 тижнів після останньої
ін’єкції тетрахлорметану виявлено типову патоморфо-
логічну картину реактивних змін та ознаки антиген-
ної стимуляції. На 3-му тижні після закінчення моделю-
вання СПОН та введення стовбурових клітин частка
білої пульпи від площі зрізу складала 64,5% із змен-
шенням до 62,4% на 9-му тижні. Фолікули в селезінці
мали великий розмір та темний колір, зони фіброзу
у них практично відсутні. Середня площа фолікулів
селезінки через 3 тижні після введення стовбурових
клітин складала (93635,66 ± 12765,69) мкм2, що зна-
чуще більше, ніж у тварин групи 1 (p < 0,05). На 9-му
тижні середній розмір фолікулів складав (77467,09 ±
±7535,83) мкм2, що значуще менше, ніж на поперед-
ньому терміні спостереження, значуще більше, ніж у
тварин попередньої групи (p < 0,05), та не відрізнявся
від контролю (p = 0,23). При цьому у біологічному
матеріалі тварин, який досліджували через 9 тижнів
після ін’єкції, розмір фолікулів наближався до норми,
а щільність клітин білої пульпи збільшилася (рис. 3).
Червона пульпа була щільно заповнена клітинними
елементами.
Атрофія білої пульпи та зменшення кількості клітин
лімфоцитарного ряду в селезінці тварин із моделлю
СПОН, можливо, є ознакою виснаження імунної
системи та свідчить про міграцію клітинних елемен-
тів до уражених органів (печінка, легені, нирка). Від-
новлення структури фолікулів та збільшення кількості
лімфоцитів білої пульпи в селезінці тварин із моделлю
СПОН та введенням стовбурових клітин свідчать про
активацію імунної відповіді.
Таким чином, встановлені морфологічні зміни у
селезінці тварин контрольної та обох експеримен-
тальних груп опосередковано свідчать про імуномо-
дулюючий вплив мезінхімальних стовбурових клітин
на організм після моделювання поліорганної недо-
статності введенням тетрахлорметану. Перспективою
подальших досліджень є визначення присутності вве-
дених стовбурових клітин у різних органах за допо-
могою флуоресцентної мікроскопії.
after stem cell injection was (93,635.66 ± 12,765.69) µm2,
which was significantly higher than in animals group 1
(p < 0.05). To week 9 the average size of follicles was
(77,467.09 ± 7,535.83) µm2, which was significantly
lower vs. the previous observation period, and significantly
higher than in animals of previous group (p < 0.05), and
did not differ from the control (p = 0.23). Herewith in
biological material of animals, studied in 9 weeks after
injection, the size of follicles approached the norm, and
the cell density of white pulp increased (Fig. 3). The
red pulp was densely filled with cell elements.
The white pulp atrophy and a decreased number of
lymphocyte series in spleen of animals with MOFS model
may be a sign of the immune system depletion and in-
dicate the migration of cell elements to affected organs
(liver, lung, kidney). Restoring the follicle structure and
increasing a number of white pulp lymphocytes in spleen
of animals with simulated MOFS and administered stem
cells testified to the activation of immune response.
Thus, the established morphological changes in
animals spleen of control and both experimental groups
indirectly testified to immunomodulatory effect of me-
senchymal stem cells on a body after simulating multiple
organ failure via tetrachloromethane introduction. Fur-
ther determination of the presence of administered stem
cells in different organs using fluorescence microscopy
is promising.
Рис. 3. Селезінка з ознаками активації імунної відповіді.
Введення стовбурових клітин 1 × 104. Забір матеріалу
через 9 тижнів після ін’єкції. Лімфатичні вузлики вигля-
дають темними за рахунок збільшення щільності клітин
білої пульпи. За розмірами фолікул наближається до
контролю. Забарвлення гематоксиліном та еозином.
Fig. 3. Spleen with immune response activation signs.
Introduction of stem cells of 1 × 104. Material was harve-
sted 9 weeks after injection. Lymph nodes look dark due
to a rise in the density of white pulp cells. On its dimen-
sions the follicle is approaching to the control. Staining with
hematoxylin and eosin.
Література
1. Ferrari R.S., Tieppo M., Rosa D.P. et al. Lung and liver changes
due to the induction of cirrhosis in two experimental models.
Arq Gastroenterol 2013; 50 (3): 208–213.
2. Kim Y., Kim J., Huh J. et al. The therapeutic effects of optimal
dose of mesenchymal stem cells in a murine model of an
elastase induced-emphysema. Tuberc Respir Dis 2015; 78(3):
239.
68 проблеми кріобіології і кріомедицини
problems of cryobiology and cryomedicine
том/volume 28, №/issue 1, 2018
3. Kobolak J., Dinnyes A., Memic A. et al. Mesenchymal stem
cells: Identification, phenotypic characterization, biological
properties and potential for regenerative medicine through
biomaterial micro-engineering of their niche. Methods 2016;
99: 62–68.
4. Kordium V., Chaikovsky Y., Irodov D. et al. Modelling of systemic
lesion of organism for development of multitarget cellular and
cytokine therapy. Biopolymers and Cell 2016; 32(5): 381–394.
5. Ricon A.R., Covarrubias A., Pedraza-Chaverri J. et al. Differential
effect of CCl 4 on renal function in cirrhotic and non-cirrhotic
rats. Exp Toxic Pathol 1999; 51: 199–205.
6. Rogobete A., Sandesc D., Papurica M. et al. The influence of
metabolic imbalances and oxidative stress on the outcome of
critically ill polytrauma patients: a review. Burns & Trauma.
2017; 5(1): 256–234.
References
1. Ferrari R.S., Tieppo M., Rosa D.P. et al. Lung and liver changes
due to the induction of cirrhosis in two experimental models.
Arq Gastroenterol 2013; 50 (3): 208–213.
2. Kim Y., Kim J., Huh J. et al. The therapeutic effects of optimal
dose of mesenchymal stem cells in a murine model of an
elastase induced-emphysema. Tuberc Respir Dis 2015; 78(3):
239.
3. Kobolak J., Dinnyes A., Memic A. et al. Mesenchymal stem
cells: Identification, phenotypic characterization, biological
properties and potential for regenerative medicine through
biomaterial micro-engineering of their niche. Methods 2016;
99: 62–68.
4. Kordium V., Chaikovsky Y., Irodov D. et al. Modelling of systemic
lesion of organism for development of multitarget cellular and
cytokine therapy. Biopolymers and Cell 2016; 32(5): 381–394.
5. Ricon A.R., Covarrubias A., Pedraza-Chaverri J. et al. Differential
effect of CCl 4 on renal function in cirrhotic and non-cirrhotic
rats. Exp Toxic Pathol 1999; 51: 199–205.
6. Rogobete A., Sandesc D., Papurica M. et al. The influence of
metabolic imbalances and oxidative stress on the outcome of
critically ill polytrauma patients: a review. Burns & Trauma
2017; 5(1): 256–234.
|
| id | nasplib_isofts_kiev_ua-123456789-138367 |
| institution | Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine |
| issn | 0233-7673 |
| language | Ukrainian |
| last_indexed | 2025-12-02T02:21:58Z |
| publishDate | 2018 |
| publisher | Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України |
| record_format | dspace |
| spelling | Ліходієвський, В.В. Корсак, А.В. Іродов, Д.М. Чайковський, Ю.Б. Кордюм, В.А. Олефір, С.С. Забіла, А.О. Ковальчук, М.В. Рубан, Т.А. Шувалова, Н.С. 2018-06-18T19:26:53Z 2018-06-18T19:26:53Z 2018 Морфологічні особливості селезінки за умов експериментальної моделі поліорганної недостатності та застосування стовбурових клітин / В.В. Ліходієвський, А.В. Корсак, Д.М. Іродов, Ю.Б. Чайковський, В.А. Кордюм, С.С. Олефір, А.О. Забіла, М.В. Ковальчук, Т.А. Рубан, Н.С. Шувалова // Проблемы криобиологии и криомедицины. — 2018. — Т. 28, № 1. — С. 64-68. — Бібліогр.: 6 назв. — укр., англ. 0233-7673 https://nasplib.isofts.kiev.ua/handle/123456789/138367 616.411-008.6-092.4:615.361:611.018.1 uk Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України Проблемы криобиологии и криомедицины День стволовой клетки. Краткие сообщения Морфологічні особливості селезінки за умов експериментальної моделі поліорганної недостатності та застосування стовбурових клітин Spleen Morphological Features Under Experimental Model of Multiple Organ Failure and Stem Cell Application Article published earlier |
| spellingShingle | Морфологічні особливості селезінки за умов експериментальної моделі поліорганної недостатності та застосування стовбурових клітин Ліходієвський, В.В. Корсак, А.В. Іродов, Д.М. Чайковський, Ю.Б. Кордюм, В.А. Олефір, С.С. Забіла, А.О. Ковальчук, М.В. Рубан, Т.А. Шувалова, Н.С. День стволовой клетки. Краткие сообщения |
| title | Морфологічні особливості селезінки за умов експериментальної моделі поліорганної недостатності та застосування стовбурових клітин |
| title_alt | Spleen Morphological Features Under Experimental Model of Multiple Organ Failure and Stem Cell Application |
| title_full | Морфологічні особливості селезінки за умов експериментальної моделі поліорганної недостатності та застосування стовбурових клітин |
| title_fullStr | Морфологічні особливості селезінки за умов експериментальної моделі поліорганної недостатності та застосування стовбурових клітин |
| title_full_unstemmed | Морфологічні особливості селезінки за умов експериментальної моделі поліорганної недостатності та застосування стовбурових клітин |
| title_short | Морфологічні особливості селезінки за умов експериментальної моделі поліорганної недостатності та застосування стовбурових клітин |
| title_sort | морфологічні особливості селезінки за умов експериментальної моделі поліорганної недостатності та застосування стовбурових клітин |
| topic | День стволовой клетки. Краткие сообщения |
| topic_facet | День стволовой клетки. Краткие сообщения |
| url | https://nasplib.isofts.kiev.ua/handle/123456789/138367 |
| work_keys_str_mv | AT líhodíêvsʹkiivv morfologíčníosoblivostíselezínkizaumoveksperimentalʹnoímodelípolíorgannoínedostatnostítazastosuvannâstovburovihklítin AT korsakav morfologíčníosoblivostíselezínkizaumoveksperimentalʹnoímodelípolíorgannoínedostatnostítazastosuvannâstovburovihklítin AT írodovdm morfologíčníosoblivostíselezínkizaumoveksperimentalʹnoímodelípolíorgannoínedostatnostítazastosuvannâstovburovihklítin AT čaikovsʹkiiûb morfologíčníosoblivostíselezínkizaumoveksperimentalʹnoímodelípolíorgannoínedostatnostítazastosuvannâstovburovihklítin AT kordûmva morfologíčníosoblivostíselezínkizaumoveksperimentalʹnoímodelípolíorgannoínedostatnostítazastosuvannâstovburovihklítin AT olefírss morfologíčníosoblivostíselezínkizaumoveksperimentalʹnoímodelípolíorgannoínedostatnostítazastosuvannâstovburovihklítin AT zabílaao morfologíčníosoblivostíselezínkizaumoveksperimentalʹnoímodelípolíorgannoínedostatnostítazastosuvannâstovburovihklítin AT kovalʹčukmv morfologíčníosoblivostíselezínkizaumoveksperimentalʹnoímodelípolíorgannoínedostatnostítazastosuvannâstovburovihklítin AT rubanta morfologíčníosoblivostíselezínkizaumoveksperimentalʹnoímodelípolíorgannoínedostatnostítazastosuvannâstovburovihklítin AT šuvalovans morfologíčníosoblivostíselezínkizaumoveksperimentalʹnoímodelípolíorgannoínedostatnostítazastosuvannâstovburovihklítin AT líhodíêvsʹkiivv spleenmorphologicalfeaturesunderexperimentalmodelofmultipleorganfailureandstemcellapplication AT korsakav spleenmorphologicalfeaturesunderexperimentalmodelofmultipleorganfailureandstemcellapplication AT írodovdm spleenmorphologicalfeaturesunderexperimentalmodelofmultipleorganfailureandstemcellapplication AT čaikovsʹkiiûb spleenmorphologicalfeaturesunderexperimentalmodelofmultipleorganfailureandstemcellapplication AT kordûmva spleenmorphologicalfeaturesunderexperimentalmodelofmultipleorganfailureandstemcellapplication AT olefírss spleenmorphologicalfeaturesunderexperimentalmodelofmultipleorganfailureandstemcellapplication AT zabílaao spleenmorphologicalfeaturesunderexperimentalmodelofmultipleorganfailureandstemcellapplication AT kovalʹčukmv spleenmorphologicalfeaturesunderexperimentalmodelofmultipleorganfailureandstemcellapplication AT rubanta spleenmorphologicalfeaturesunderexperimentalmodelofmultipleorganfailureandstemcellapplication AT šuvalovans spleenmorphologicalfeaturesunderexperimentalmodelofmultipleorganfailureandstemcellapplication |