Индуцированный морфогенез ореха грецкого in vitro
Исследовали способность к морфогенезу in vitro апикальных и латеральных почек из деревьев 15–30- и 1–3-летнего возраста ореха грецкого. Формирование адвентивных побегов индуцировали на среде MC с ИMK (0,01 мг/л) и 6-БАП (1 мг/л) спустя 12 недель культивирования, включая два субкультивирования через...
Gespeichert in:
| Datum: | 1991 |
|---|---|
| Hauptverfasser: | , , |
| Format: | Artikel |
| Sprache: | Russian |
| Veröffentlicht: |
Інститут молекулярної біології і генетики НАН України
1991
|
| Schriftenreihe: | Биополимеры и клетка |
| Schlagworte: | |
| Online Zugang: | https://nasplib.isofts.kiev.ua/handle/123456789/153602 |
| Tags: |
Tag hinzufügen
Keine Tags, Fügen Sie den ersten Tag hinzu!
|
| Назва журналу: | Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine |
| Zitieren: | Индуцированный морфогенез ореха грецкого in vitro / Н.М. Пивень, Г.Г. Мельничук, А.С. Фелалиев // Биополимеры и клетка. — 1991. — Т. 7, № 4. — С. 61-65. — Бібліогр.: 15 назв. — рос. |
Institution
Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine| id |
nasplib_isofts_kiev_ua-123456789-153602 |
|---|---|
| record_format |
dspace |
| spelling |
nasplib_isofts_kiev_ua-123456789-1536022025-02-09T17:23:40Z Индуцированный морфогенез ореха грецкого in vitro Індукований морфогенез горіху волоського in vitro In vitro induced morphogenesis of walnut Пивень, Н.М. Мельничук, Г.Г. Фелалиев, А.С. Клеточная биология Исследовали способность к морфогенезу in vitro апикальных и латеральных почек из деревьев 15–30- и 1–3-летнего возраста ореха грецкого. Формирование адвентивных побегов индуцировали на среде MC с ИMK (0,01 мг/л) и 6-БАП (1 мг/л) спустя 12 недель культивирования, включая два субкультивирования через 2 и 6 недель. Побеги, полученные в культуре in vitro, выдерживали в жидкой среде MC с ИMK (1; 5; 10 мг/л) и сахарозой (60 г/л ) в течение 6 сут в темноте. Укореняли побеги ореха грецкого на безгормональной среде, макроэлементы которой разбавляли в 4 раза, с агаром. Досліджували здатність до морфогенезу in vitro апікальних і латеральних бруньок із дерев 15–30- та 1–3-літнього віку горіха волоськог о. Формування адвентивних пагонів індукували на середовищі MC з IMK (0,01 мг/л) та 6-БАП (1 мг/л) через 12 тижнів культивування, включаючи два субкультивування через 2 і 6 тижнів. Пагони, отримані в культурі in vitro, видержували в рідкому середовищі MC з IMK (1; 5; 10 мг/л) та сахарозою (60 г/л) на протязі 6 діб в темряві. Вкоріняли пагони горіха волоського на безгормональному середовищі, макроелементи якого розбавляли в 4 рази, з агаром. The ability of apical axillary buds of 15–30 and 1–3 years old walnut trees to morphogenesis in vitro was studied. Adventitious shoot formation was induced on MS- media containing IBA (0,01 mg/1) and 6-BAP (1 mg/l) after 12 weeks of cultivation (including two subcultivations after 2 and 6 weeks). Propagated shoots were pretreated in liquid MS-medium with IBA (1; 5; 10 mg/1) and sucrose (60 g/l) during 6 days in dark. Rooting of the walnut shoots was achieved on hormone free MS-medium (macro-salts were dissolved 1/4) with agar. 1991 Article Индуцированный морфогенез ореха грецкого in vitro / Н.М. Пивень, Г.Г. Мельничук, А.С. Фелалиев // Биополимеры и клетка. — 1991. — Т. 7, № 4. — С. 61-65. — Бібліогр.: 15 назв. — рос. 0233-7657 DOI: http://dx.doi.org/10.7124/bc.0002E2 https://nasplib.isofts.kiev.ua/handle/123456789/153602 631.51:58.09 ru Биополимеры и клетка application/pdf Інститут молекулярної біології і генетики НАН України |
| institution |
Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine |
| collection |
DSpace DC |
| language |
Russian |
| topic |
Клеточная биология Клеточная биология |
| spellingShingle |
Клеточная биология Клеточная биология Пивень, Н.М. Мельничук, Г.Г. Фелалиев, А.С. Индуцированный морфогенез ореха грецкого in vitro Биополимеры и клетка |
| description |
Исследовали способность к морфогенезу in vitro апикальных и латеральных почек из деревьев 15–30- и 1–3-летнего возраста ореха грецкого. Формирование адвентивных побегов индуцировали на среде MC с ИMK (0,01 мг/л) и 6-БАП (1 мг/л) спустя 12 недель культивирования, включая два субкультивирования через 2 и 6 недель. Побеги, полученные в культуре in vitro, выдерживали в жидкой среде MC с ИMK (1; 5; 10 мг/л) и сахарозой (60 г/л ) в течение 6 сут в темноте. Укореняли побеги ореха грецкого на безгормональной среде, макроэлементы которой разбавляли в 4 раза, с агаром. |
| format |
Article |
| author |
Пивень, Н.М. Мельничук, Г.Г. Фелалиев, А.С. |
| author_facet |
Пивень, Н.М. Мельничук, Г.Г. Фелалиев, А.С. |
| author_sort |
Пивень, Н.М. |
| title |
Индуцированный морфогенез ореха грецкого in vitro |
| title_short |
Индуцированный морфогенез ореха грецкого in vitro |
| title_full |
Индуцированный морфогенез ореха грецкого in vitro |
| title_fullStr |
Индуцированный морфогенез ореха грецкого in vitro |
| title_full_unstemmed |
Индуцированный морфогенез ореха грецкого in vitro |
| title_sort |
индуцированный морфогенез ореха грецкого in vitro |
| publisher |
Інститут молекулярної біології і генетики НАН України |
| publishDate |
1991 |
| topic_facet |
Клеточная биология |
| url |
https://nasplib.isofts.kiev.ua/handle/123456789/153602 |
| citation_txt |
Индуцированный морфогенез ореха грецкого in vitro / Н.М. Пивень, Г.Г. Мельничук, А.С. Фелалиев // Биополимеры и клетка. — 1991. — Т. 7, № 4. — С. 61-65. — Бібліогр.: 15 назв. — рос. |
| series |
Биополимеры и клетка |
| work_keys_str_mv |
AT pivenʹnm inducirovannyjmorfogenezorehagreckogoinvitro AT melʹničukgg inducirovannyjmorfogenezorehagreckogoinvitro AT felalievas inducirovannyjmorfogenezorehagreckogoinvitro AT pivenʹnm índukovanijmorfogenezgoríhuvolosʹkogoinvitro AT melʹničukgg índukovanijmorfogenezgoríhuvolosʹkogoinvitro AT felalievas índukovanijmorfogenezgoríhuvolosʹkogoinvitro AT pivenʹnm invitroinducedmorphogenesisofwalnut AT melʹničukgg invitroinducedmorphogenesisofwalnut AT felalievas invitroinducedmorphogenesisofwalnut |
| first_indexed |
2025-11-28T16:04:56Z |
| last_indexed |
2025-11-28T16:04:56Z |
| _version_ |
1850050769147920384 |
| fulltext |
-УДК 631.51:58.09
Η. Μ. Пивень, Г. Г. Мельничук, А. С. Фелалиев
ИНДУЦИРОВАННЫЙ МОРФОГЕНЕЗ
ОРЕХА ГРЕЦКОГО IN VITRO
Исследовали способность к морфогенезу in vitro апикальных и латеральных почек из
деревьев 15—30- и 1—3-летнего возраста ореха грецкого. Формирование адвентивных
побегов индуцировали на среде MC с ИMK (0,01 мг/л) и 6-БАП (1 мг/л) спустя 12
недель культивирования, включая два субкультивирования через 2 и 6 недель. По-
беги, полученные в культуре in vitro, выдерживали в жидкой среде MC с ИMK (1; 5;
10 мг/л) и сахарозой (60 г / л ) в течение 6 сут в темноте. Укореняли побеги ореха грец-
кого на безгормональной среде, макроэлементы которой разбавляли в 4 раза, с агаром.
Введение. Исследование проведено на ценной сельскохозяйственной
орехоплодной культуре — орехе грецком (Juglans regia L.) и посвяще-
но физиологическим аспектам морфогенеза in vitro. Следует отметить,
что для ореха грецкого, как и других гетерозиготных растений, един-
ственным способом поддержания сортовых особенностей пока остается
вегетативное размножение. Несмотря на то, что подобные способы опи-
саны ранее [1] и в дальнейшем предпринимались попытки их совершен-
ствования [2, 3], проблема эффективности вегетативного размноже-
ния остается пока нерешенной из-за низкого выхода привитых сажен-
цев. Д л я целого ряда древесных культур, которые, как и орех грецкий,
относятся к трудноразмножаемым видам, применение методов микро-
клонирования in vitro может привести к хорошим результатам [4, 5] .
Такие исследования были начаты и по отношению к орехоплодным
культурам [6—8], в том числе и ореху грецкому [9—11]. В частности,
показано, что из незрелых зародышей или их частей можно индуциро-
вать развитие эмбриоидов in vitro [10, 12]. Известны отдельные рабо-
ты и по использованию меристемных тканей ореха грецкого для мик-
роклонирования in vitro [9], однако практически значимых данных по-
лучено не было. Поэтому в настоящей работе предпринят широкий экс-
периментальный поиск по изучению факторов, влияющих на индуциро-
ванный морфогенез ореха грецкого in vitro, с целью отработки отдель-
ных стадий микроклонального размножения.
Материалы и методы. В качестве эксплантатов использовали вер-
хушечные (5—7 мм) и боковые (2—3 мм) почки ореха грецкого (Jug-
Ians regia L.) с деревьев 15—30-летнего возраста интродуцированных
сортов и форм из коллекционного сада Ин-та ботаники им. Н. Г. Хо-
лодного АН УССР, а также 1—3-летних сеянцев и саженцев. Почки
стерилизовали 10 с (в случае травянистых) и 60 с (в случае деревя-
нистых) побегов в 70 %-ном растворе этанола и 6—7 мин — в диациде.
Эксплантаты культивировали на питательной среде, содержащей мак-
ро- и микроэлементы по Вуду [8] или Мурасиге — Скуга (MC) [13].
Макроэлементы последней разбавляли в 4 раза в первую и в 2 раза —
во вторую неделю выращивания. В дальнейшем минеральные компо-
ненты среды MC использовали без изменений. Начиная со второй не-
дели культивирования в питательную среду добавляли фитогормоны:
3-индолилмасляную кислоту (ИМК, 0,01—0,02 мг/л) и 6-бензиламино-
пурин (БАП, 1 мг/л). Добавочные побеги получали на аналогичной по
составу среде. На протяжении первой недели эксплантаты выдержива-
ли в темноте при температуре 2 6 ± 3 °С. После перенесения на свежую
среду (вторая неделя культивирования) их оставляли при освещении
150—200 лк и 16-4 фотопериоде. В дальнейшем освещение увеличива-
ли до 500 лк. Укореняли побеги длиной 2—3 см, которые культивиро-
вали в темноте при температуре 26=4=3 °С на жидкой среде MC с раз-
бавлением в 4 раза макросолей и добавлением ИМК (1,0; 5,0; 10 мг/л)
и 60 г/л сахарозы. Через неделю побеги переносили на аналогичную
по составу среду без ИМК, уменьшали количество сахарозы до 30 г/л,
Η. М. Пивень, Г. Г. Мельничук, А. С. Фелалиев, 1991.
ISSN 0233-7Γ)·57. БИОПОЛИМЕРЫ И КЛЕТКА. 1991. Т. 7. № 4 61
добавляли агар (7 г/л) и переносили в условия освещения с 16-ч фото-
периодом. В качестве контроля использовали побеги, выращиваемые
на среде с полным составом макросолей.
Результаты и обсуждение. При культивировании эксплантатов оре-
ха грецкого наблюдали потемнение ткани и питательной среды, что
чаще всего происходило в первые три недели выращивания и прежде
всего у травянистых побегов в летний период. Потемнение экспланта-
тов ореха грецкого in vitro является одним из препятствий при разра-
ботке методики микроразмножения этой ценной породы древесных рас-
тений [9]. Наличие этого феномена у ореха связывают с присутствием
фенольных соединений в тканях, которое специфично для различных
фаз развития растения и, как было показано, может служить биохими-
ческим маркером его физиологического состояния [14].
Содержание фенольных соединений в тканях ореха грецкого дере-
вьев 15—30-летнего возраста в течение года несколько выше, чем в
1—3-летних сеянцах и саженцах [15]. Причем нами были отмечены
различия при культивировании эксплантатов ореха грецкого в зависи-
мости от генотипа формы, возраста деревьев и сезона года (табл. 1).
Так, к концу первой недели культивирования все эксплантаты формы
Киевская XIV-II увеличивались в размере, тогда как у сорта Влади-
мирский скороплодный развитие наблюдали у 22,5 % эксплантируемых
почек, у остальных форм — еще меньше. Различия в развитии эксплан-
татов в зависимости от генотипа формы сохранялись и в дальнейшем
(см. табл. 1). В течение 11 недель культивирования почки распуска-
лись, но интенсивного роста побегов не наблюдали. Впоследствии эти
эксплантаты темнели и погибали. Однако делать вывод о полной не-
пригодности эксплантатов из 15—30-летних деревьев ореха грецкого,
по-видимому, преждевременно.
Т а б л и ц а 1
Развитие эксплантатов из деревьев ореха грецкого in vitro в зависимости от генотипа,
возраста и сезона года
Сорт, форма
Возраст,
годы Дата
Развившиеся :
0A
I неделя
эксплантаты,
2 недели
Форма Киевская XIV-II » 16 26.11.86 100 Форма Киевская XIV-II » » 01.12' 86 100,0 —
Владимирский скороплодный » 11.12.86' 22,5 30,9
Владимирский красавец » 23.1'2.86 7,7 83,3
» » 28.01.87 Oi 77,7
Д-17 а » 23.12.86 8,8 83,3
Форма Киевская 311.4' 30 24.11.86 • — 100,0 Форма Киевская 311.4'
» 12.06.87 0 100,0
» » 24.02.88 0 28,6
Как известно, при микроразмножении орехоплодных культур обыч-
но используют в качестве эксплантатов ювенильные ткани [6, 7] . Нами
также получены положительные результаты при введении в культуру
in vitro эксплантатов из 1—3-летних сеянцев и саженцев как из травя-
нистых (летний период), так и деревянистых побегов (зимний период).
В табл. 2 приведена последовательность стадий микроклонального раз-
множения ореха грецкого, которой придерживались в ходе экспери-
мента.
Как видно из рис. 1, где приведены данные по морфогенезу почек
ореха грецкого in vitro (α, б — развитие почек через 2 недели культи-
вирования; в—образование побега через 4 недели культивирования;
2 — формирование адвентивных побегов через 12 недель культивирова-
ния), апикальные почки 1—3-летних сеянцев и саженцев увеличивались
в размерах, ч е р е з две недели культивирования появились первые листья.
62 ISSN 0233-7Γ)·57. Б И О П О Л И М Е Р Ы И КЛЕТКА. 1991. Т. 7. № 4 62
К концу четвертой недели побеги достигали высоты 1 —1,5 см, к концу
пятой — 2—3 см, к концу десятой — 6—7 см. Развитие латеральных
почек происходило медленнее, чем апикальных. Появление побегов как
из апикальных, так и из латеральных почек наблюдали только через
четыре недели культивирования (см. рис. 1, в). Продуцирование доба-
вочных побегов на основании эксплантата происходило на питательной
среде MC спустя 12 недель культивирования (см. рис. 1, г). Обычно
Рис. 1
получали 2—3 побега на эксплантат. Наряду с этими побегами разви-
вался главный стебель, у которого закладывались латеральные почки.
При черенковании главного стебля способность к органогенезу прогрес-
сивно уменьшалась у микрочеренков, изолированных по направлению
от верхушки к основанию стебля.
Выращивание эксплантатов из 1—3-летних сеянцев и саженцев в
летний период также сопровождалось потемнением тканей. Как изве-
стно, Лио и Ган [9] для предотвращения потемнения тканей ореха
грецкого при введении в культуру in vitro предварительно обрабаты-
вали эксплантаты антиоксидантами или вводили их в питательную
среду. Мы также обрабатывали эксплантаты антиоксидантами (ли-
монной и аскорбиновой кислотами) и добавляли в среду активирован-
ный уголь, поливинилпирролидон и поликапролактам, при этом гтотем-
T a б л и ц а 2
Микроклональное размножение почек ореха грецкого in vitro
Стадия Среда, ростовые
регуляторы Длительность
Развитие почки in vitro после иноку-
ляции
Формирование добавочных побегов на
основании эксплантата и первая ге-
нерация побегов
Индукция адвентивных почек и побе-
гов на побегах второй генерации
ИМК (0,0-1 мг/л), 4 недели
БАИ (1 мг/л)
То ж е
»
Предобработка побегов для индукции ИМК (10 мг/л)
корнеобразованпя
Укоренение Безгормональная
среда
8 недель
6 недель с промежуточ-
ной пересадкой через
Э недели
5—7 сут
I—8 педель
ISSN 0233-7Γ)·57. Б И О П О Л И М Е Р Ы И КЛЕТКА. 1991. Т. 7. № 4 3
нение существенно не уменьшалось. Оказалось, что потемнение и некроз
тканей уменьшаются при использовании в качестве эксплантатов почек
из этиолированных побегов, содержащих в четыре раза меньше фено-
лов по сравнению с зелеными. При этиолировании 3-летних саженцев
удалось повысить выход жизнеспособных эксплантатов до 20 %
(табл. 3). Выход развившихся побегов при этом через 12 недель куль-
тивирования увеличивался в 3—4 раза.
Следующей проблемой, характерной для большинства труднораз-
множаемых видов древесных растений, в том числе и ореха грецкого,
является укоренение побегов. Однако сведения об индукции корнеоб-
Р и с . 2
разования в литературе приведены только относительно двух гибридов
ореха грецкого с дикими формами: китайским [6] и черным [7]. При-
меняли двухэтапное укоренение, при котором побеги ореха в тече-
ние 5—7 сут выдерживали первоначально в темноте на среде MC с
разбавлением в 4 раза макросолей и 10 мг/л ИМК, а затем переноси-
ли на безгормональную среду и выращивали на свету (рис. 2: регене-
рация корней у побегов ореха грецкого, полученных in Vitroy после не-
дели (а) и 4 недель (б) культивирования на безгормональной среде).
Через неделю культивирования на безгормональной среде у 10 % побе-
гов формировались корни. Через 8 недель корни появились у 60—70 %
побегов. В контрольном варианте образования корней не наблюдали.
Таким образом, показана способность эксплантатов из травянистых
и деревянистых побегов 1—3-летних сеянцев и саженцев ореха грецкого
к морфогенезу in vitro на среде MC. Обнаружено благоприятное воз-
действие этиоляции на растения, что способствовало увеличению в 3—
4 раза по сравнению с контролем выхода побегов из исходных экс-
плантатов. Д л я укоренения побегов, полученных in Vitroy подобраны
специфические условия, которые заключаются в предварительном вы-
Т а б л и ц а 3
Развитие почек in vitro из этиолированных и зеленых побегов
Срок
культивиро-
вания ,
недели
Развитие эксплантатов
из побегов, % Срок
культивиро-
вания,
недели
Развитие эксплантатов
из побегов, % Срок
культивиро-
вания ,
недели
Этиолированных Зеленых
Срок
культивиро-
вания,
недели
Этиолированных Зеленых
1 100 ,0 9 9 , 8
2 9 9 , 4 9 8 , 0
3 9 9 , 0 9 0 , 0
4 9 0 , 8 8 8 , 0
12 2 0 , 0 5 , 8
6 4 ISSN 0233-7Γ)·57. Б И О П О Л И М Е Р Ы И КЛЕТКА. 1991. Т. 7. № 4 64
держивании побегов на среде с ауксинами и последующем культивиро-
вании их на безгормональной среде.
Отработаны приемы получения развивающихся эксплантатов, ин-
дукции адвентивного побегообразования и укоренения побегов, которые
могут быть в дальнейшем использованы для создания технологий мик-
роклонального размножения и экспериментов по клеточной и генетиче-
ской инженерии ореха.
Р е з ю м е
Досліджували здатність до морфогенезу in vitro апікальних і латеральних бруньок із
дерев 15—30- та 1—3-літнього віку горіха волоськог о. Формування адвентивних пагонів
індукували на середовищі MC з IMK (0,01 мг/л) та 6-БАП (1 мг/л) через 12 тижнів
культивування, включаючи два субкультивування через 2 і 6 тижнів. Пагони, отримані
в культурі in vitro, видержували в рідкому середовищі MC з IMK (1; 5; 10 мг/л) та
сахарозою (60 г/л) на протязі 6 діб в темряві. Вкоріняли пагони горіха волоського на
безгормональному середовищі, макроелементи якого розбавляли в 4 рази, з агаром.
S u m m a r y
The ability of apical axillary buds of 15—30 and 1—3 years old walnut trees to
morphogenesis in vitro was studied. Adventitious shoot formation was induced on MS-
media containing IBA (0,01 mg/1) and 6-BAP (1 mg/1) after 12 weeks of cultivation
(including two subcultivations after 2 and б weeks). Propagated shoots were pretreated
in liquid MS-medium with IBA (1; 5; 10 mg/1) and sucrose (60 g/1) during 6 days in
dark. Rooting of the walnut shoots was achieved on hormone free MS-medium (macro-
salts were dissolved 1/4) with agar.
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
1. Рыбин В. А. Способы вегетативного размножения грецкого ореха.— Кишинев :
Штиинца, 1961.— 29 с.
2. Цуркан И. Π. Выращивание привитого посадочного материала грецкого ореха в
Молдавии // Достижения в плодовом питомниководстве НРБ и МССР.— Кишинев :
Картя Молдовеняске,— 1978.—С. 208—213.
3. Стрела Т. Е. Новая биотехнология прививки ореха грецкого.— Киев : Наук, думка,
1987.— 59 с.
4. Chalupa V. Vegetativni mnozeni brizy (Betula pendula Roth.), dubu (Quercus ro-
bur L.) a jasanu (Fraxinus escelsior L.) in vitro / /Pr . vulhm.— 1983.— N 62.—
P. 179—194.
5. Pua Eng-Chong, Chong Calvin. Regulation of in vitro shoot and root regeneration
in Macspur apple by sorbitol (Z)-glucitol) and related carbon sources / /J . Amer.
Soc. Hort. S c i . - 1985.— 110, N 5 .—P. 705—709.
6. Driver J. A., Kuniyuki A. H. In vitro propagation of Paradox wal nut rootstock//
Hort. S c i . - 1984.— 19, N 4.— P. 507—509.
7. Meynier V. Mise en culture in vitro de meristeme de Noyers hybrioes / /C. r. Acad.
Sci. C.— 1985,— 301, N 5 ,—P. 261—264.
Z.Wood B. W. In vitro proliferation of pecan / /Hort Sci.— 1982.— 17, N 6.—
P. 890—891.
9. Liu S., Han B. In vitro propagation of walnut (Juglans regia L.) / /Acta Agr. Univ.
Pekinesis.— 1986.— 12, N 2 .—P. 143—148.
10. Tulecke W., McGranahan G. Somatic embryogenesis and plant regeneration from
cotyledons of walnut, Juglans regia. L.// Plant Sci.— 1985.— 40, N 1.—P. 57—63.
11. Фелалиев А. С. Морфогенез Juglans regia in vitro Ц Укр. бот. ж у р н — 1990 —47,
No 3.— С. 85—87.
12. Болтивец В. С., Пивень Η. М. Индуцированный эмбриогенез в культуре ткани оре-
ха грецкого//Физиология и биохимия культ, растений.— 1990.— 22, № 4 —
С. 409—413.
13. Murashige Т., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobac-
co tissue culture // Physiol. Plant.— 1962.— 15, N 2/3.— P. 473—497.
14. Jay-Allemand C., Cornu D., Macheix J. J. Characterisation du rajeunissement du
Noyer (Juglans sp.) par une etude spectrophotometrigne globale du contenu polyphe-
noligne / / Ann. Sci. For.— 1987.—44, N 3 .—P. 303—314.
15. Фелалиев А. С. Физиологические основы микроклонального размножения ореха
грецкого in vitro: Автореф. дис. ... канд. биол. наук.— Душанбе, 1990.— 20 с.
Ин-т клеточ. биологии и генет. инженерии АН УССР, Получено 14.01.91
Киев
ISSN 0233-7657. Б И О П О Л И М Е Р Ы И КЛЕТКА. 1991. Т. 7. № 4 5 — 1-284 65
|