Состав клеточных стенок каллусных культур земляники с различной способностью к морфогенезу
Проанализирован состав полисахаридов и фенольных соединений клеточных стенок каллусных культур земляники с различной способностью к регенерации растений. Не обнаружено существенных различий ни по содержанию клеточных стенок, ни по составу и содержанию фракций полисахаридов. В то же время спектр фе...
Збережено в:
| Опубліковано в: : | Биополимеры и клетка |
|---|---|
| Дата: | 1996 |
| Автори: | , , , , , |
| Формат: | Стаття |
| Мова: | Russian |
| Опубліковано: |
Інститут молекулярної біології і генетики НАН України
1996
|
| Теми: | |
| Онлайн доступ: | https://nasplib.isofts.kiev.ua/handle/123456789/153784 |
| Теги: |
Додати тег
Немає тегів, Будьте першим, хто поставить тег для цього запису!
|
| Назва журналу: | Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine |
| Цитувати: | Состав клеточных стенок каллусных культур земляники с различной способностью к морфогенезу / Е.В, Яблокова, Р.Г. Киямова, Н.М. Тюленева, Е.В. Колесниченко Т.А. Горшкова, Л.В. Желтоножская // Биополимеры и клетка. — 1996. — Т. 12, № 2. — С. 56-61. — Бібліогр.: 8 назв. — рос. |
Репозитарії
Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine| id |
nasplib_isofts_kiev_ua-123456789-153784 |
|---|---|
| record_format |
dspace |
| spelling |
Яблокова, Е.В. Киямова, Р.Г. Тюленева, Н.М. Колесниченко, Е.В. Горшкова, Т.А. Желтоножская, Л.В. 2019-06-14T16:11:09Z 2019-06-14T16:11:09Z 1996 Состав клеточных стенок каллусных культур земляники с различной способностью к морфогенезу / Е.В, Яблокова, Р.Г. Киямова, Н.М. Тюленева, Е.В. Колесниченко Т.А. Горшкова, Л.В. Желтоножская // Биополимеры и клетка. — 1996. — Т. 12, № 2. — С. 56-61. — Бібліогр.: 8 назв. — рос. 0233-7657 DOI: http://dx.doi.org/10.7124/bc.000422 https://nasplib.isofts.kiev.ua/handle/123456789/153784 581.17:634.75 Проанализирован состав полисахаридов и фенольных соединений клеточных стенок каллусных культур земляники с различной способностью к регенерации растений. Не обнаружено существенных различий ни по содержанию клеточных стенок, ни по составу и содержанию фракций полисахаридов. В то же время спектр фенольных соединений имел четко выраженные отличия: среди фенольных продуктов окисления клеточных стенок регенерирующих каллусных культур значительную долю составлял ванилин, который полностью отсутствовал у нерегенерирующих калуссов. Спектрофотометрический анализ позволил предположить, что это связано с наличием феруловой кислоты в клеточных стенках регенерирующих культур. Проаналізовано склад полісахаридів фенольних сполук клітинних стінок калусних культур суниці з різною здатністю до морфогенезу. Не виявлено суттєвих відмінностей ні за кількісним вмістом клітинних стінок, ні за складом та вмістом фракцій полісахаридів. У той же час спектр фенольних сполук регенеруючого калу'су різко відрізнявся від такого нерегенеруючого калусу. Серед фенольних продуктів окислення клітинних стінок регенеруючих калусних культурзначна частина припадала на ваниліну який повністю був відсутній у нерегенеруючому калусі. На підставі результатів спектрофотометричного аналізу зроблено припущення, що це пов'язано з наявністю ферулової кислоти в клітинних стінках регенеруючого калусу. The composition of polysaccharides and phenol combinations of cell walls in callus cultures of strawberries with different ability to regeneration of the plant has been investigated. No essential differences have been found either in the content of cell walls or in the content and composition of poly saccharide fractions. At the same time the spectrum of phenol compounds had some clear-cut distinction: among the phenol products of oxidation of cell walls in regenerating callus cultures the vanilinaccountedfor a considerable fraction which was totally missing in nonregenerating calluses. Spectrophotometric analysis has made itpoissible to suppose that this phenomenon involves the presence offerulic acid in the cell walls of regenerating cultures. ru Інститут молекулярної біології і генетики НАН України Биополимеры и клетка Клеточная биология Состав клеточных стенок каллусных культур земляники с различной способностью к морфогенезу Склад клітинних стінок калусних культур суниці з різною здатністю до морфогенезу Composition of cellular walls in callus cultures of strawberries with different capacity to morphogenesis Article published earlier |
| institution |
Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine |
| collection |
DSpace DC |
| title |
Состав клеточных стенок каллусных культур земляники с различной способностью к морфогенезу |
| spellingShingle |
Состав клеточных стенок каллусных культур земляники с различной способностью к морфогенезу Яблокова, Е.В. Киямова, Р.Г. Тюленева, Н.М. Колесниченко, Е.В. Горшкова, Т.А. Желтоножская, Л.В. Клеточная биология |
| title_short |
Состав клеточных стенок каллусных культур земляники с различной способностью к морфогенезу |
| title_full |
Состав клеточных стенок каллусных культур земляники с различной способностью к морфогенезу |
| title_fullStr |
Состав клеточных стенок каллусных культур земляники с различной способностью к морфогенезу |
| title_full_unstemmed |
Состав клеточных стенок каллусных культур земляники с различной способностью к морфогенезу |
| title_sort |
состав клеточных стенок каллусных культур земляники с различной способностью к морфогенезу |
| author |
Яблокова, Е.В. Киямова, Р.Г. Тюленева, Н.М. Колесниченко, Е.В. Горшкова, Т.А. Желтоножская, Л.В. |
| author_facet |
Яблокова, Е.В. Киямова, Р.Г. Тюленева, Н.М. Колесниченко, Е.В. Горшкова, Т.А. Желтоножская, Л.В. |
| topic |
Клеточная биология |
| topic_facet |
Клеточная биология |
| publishDate |
1996 |
| language |
Russian |
| container_title |
Биополимеры и клетка |
| publisher |
Інститут молекулярної біології і генетики НАН України |
| format |
Article |
| title_alt |
Склад клітинних стінок калусних культур суниці з різною здатністю до морфогенезу Composition of cellular walls in callus cultures of strawberries with different capacity to morphogenesis |
| description |
Проанализирован состав полисахаридов и фенольных соединений клеточных стенок каллусных культур земляники с различной способностью к регенерации растений. Не обнаружено существенных различий ни по содержанию клеточных стенок, ни по составу и содержанию фракций полисахаридов. В то же время спектр фенольных соединений имел четко выраженные отличия: среди фенольных продуктов окисления клеточных стенок регенерирующих каллусных культур значительную долю составлял ванилин, который полностью отсутствовал у нерегенерирующих калуссов. Спектрофотометрический анализ позволил предположить, что это связано с наличием феруловой кислоты в клеточных стенках регенерирующих культур.
Проаналізовано склад полісахаридів фенольних сполук клітинних стінок калусних культур суниці з різною здатністю до морфогенезу. Не виявлено суттєвих відмінностей ні за кількісним вмістом клітинних стінок, ні за складом та вмістом фракцій полісахаридів. У той же час спектр фенольних сполук регенеруючого калу'су різко відрізнявся від такого нерегенеруючого калусу. Серед фенольних продуктів окислення клітинних стінок регенеруючих калусних культурзначна частина припадала на ваниліну який повністю був відсутній у нерегенеруючому калусі. На підставі результатів спектрофотометричного аналізу зроблено припущення, що це пов'язано з наявністю ферулової кислоти в клітинних стінках регенеруючого калусу.
The composition of polysaccharides and phenol combinations of cell walls in callus cultures of strawberries with different ability to regeneration of the plant has been investigated. No essential differences have been found either in the content of cell walls or in the content and composition of poly saccharide fractions. At the same time the spectrum of phenol compounds had some clear-cut distinction: among the phenol products of oxidation of cell walls in regenerating callus cultures the vanilinaccountedfor a considerable fraction which was totally missing in nonregenerating calluses. Spectrophotometric analysis has made itpoissible to suppose that this phenomenon involves the presence offerulic acid in the cell walls of regenerating cultures.
|
| issn |
0233-7657 |
| url |
https://nasplib.isofts.kiev.ua/handle/123456789/153784 |
| citation_txt |
Состав клеточных стенок каллусных культур земляники с различной способностью к морфогенезу / Е.В, Яблокова, Р.Г. Киямова, Н.М. Тюленева, Е.В. Колесниченко Т.А. Горшкова, Л.В. Желтоножская // Биополимеры и клетка. — 1996. — Т. 12, № 2. — С. 56-61. — Бібліогр.: 8 назв. — рос. |
| work_keys_str_mv |
AT âblokovaev sostavkletočnyhstenokkallusnyhkulʹturzemlânikisrazličnoisposobnostʹûkmorfogenezu AT kiâmovarg sostavkletočnyhstenokkallusnyhkulʹturzemlânikisrazličnoisposobnostʹûkmorfogenezu AT tûlenevanm sostavkletočnyhstenokkallusnyhkulʹturzemlânikisrazličnoisposobnostʹûkmorfogenezu AT kolesničenkoev sostavkletočnyhstenokkallusnyhkulʹturzemlânikisrazličnoisposobnostʹûkmorfogenezu AT gorškovata sostavkletočnyhstenokkallusnyhkulʹturzemlânikisrazličnoisposobnostʹûkmorfogenezu AT želtonožskaâlv sostavkletočnyhstenokkallusnyhkulʹturzemlânikisrazličnoisposobnostʹûkmorfogenezu AT âblokovaev skladklítinnihstínokkalusnihkulʹtursunicízríznoûzdatnístûdomorfogenezu AT kiâmovarg skladklítinnihstínokkalusnihkulʹtursunicízríznoûzdatnístûdomorfogenezu AT tûlenevanm skladklítinnihstínokkalusnihkulʹtursunicízríznoûzdatnístûdomorfogenezu AT kolesničenkoev skladklítinnihstínokkalusnihkulʹtursunicízríznoûzdatnístûdomorfogenezu AT gorškovata skladklítinnihstínokkalusnihkulʹtursunicízríznoûzdatnístûdomorfogenezu AT želtonožskaâlv skladklítinnihstínokkalusnihkulʹtursunicízríznoûzdatnístûdomorfogenezu AT âblokovaev compositionofcellularwallsincallusculturesofstrawberrieswithdifferentcapacitytomorphogenesis AT kiâmovarg compositionofcellularwallsincallusculturesofstrawberrieswithdifferentcapacitytomorphogenesis AT tûlenevanm compositionofcellularwallsincallusculturesofstrawberrieswithdifferentcapacitytomorphogenesis AT kolesničenkoev compositionofcellularwallsincallusculturesofstrawberrieswithdifferentcapacitytomorphogenesis AT gorškovata compositionofcellularwallsincallusculturesofstrawberrieswithdifferentcapacitytomorphogenesis AT želtonožskaâlv compositionofcellularwallsincallusculturesofstrawberrieswithdifferentcapacitytomorphogenesis |
| first_indexed |
2025-11-25T22:28:46Z |
| last_indexed |
2025-11-25T22:28:46Z |
| _version_ |
1850563549263298560 |
| fulltext |
ISSN 0233-7657. Биополимеры и клетка. 1996. Т. 12. № 2
56
Состав клеточных стенок каллусных культур
земляники с различной способностью к морфогенезу
Е. В, Яблокова, Р. Г. Киямова1*, Н. М. Тюленева,
Е. В. Колесниченко1 Т. А. Горшкова, Л. В. Желтоножская1
Институт биологии Казанского научного центра Российской академии наук
420503 Казань, ул. Лобачевского, 2/31
Национальный аграрный университет
252041 Киев, ул. Героев Обороны, 15
Проанализирован состав полисахаридов и фенольных соединений клеточных сте
нок каллусных культур земляники с различной способностью к регенерации расте
ний. Не обнаружено существенных различий ни по содержанию клеточных стенок,
ни по составу и содержанию фракций полисахаридов. В то же время спектр фе
нольных соединений имел четко выраженные отличия: среди фенольных продук
тов окисления клеточных стенок регенерирующих каллусных культур значи
тельную долю составлял ванилин, который полностью отсутствовал у нереге-
нерирующих калуссов. Спектрофотометрический анализ позволил
предположить, что это связано с наличием феруловой кислоты в клеточных
стенках регенерирующих культур.
Введение. Проблема регенерации растений из каллусных культур является
одной из центральных в биотехнологии. К сожалению, до сих пор отсутст
вует теория, позволяющая направленно регулировать процессы морфогене
за, и подбор условий осуществляется, как правило, эмпирически. Поэтому
поиск отличий между каллусными культурами с различной способностью к
регенерации является актуальным для выявления как маркеров этой
способности, так и ключевых звеньев в метаболизме клетки, запускающих
и реализующих сложнейший комплекс процессов формообразования.
Клеточная стенка растительной клетки — многокомпонентная система,
выполняющая разнообразные функции. По современным представлениям,
одной из фундаментальных ее функций является регуляция роста и морфо
генеза [1 ]. Задача нашей работы состояла в сравнении состава клеточных
стенок различных каллусных культур земляники. При этом в нашем
распоряжении имелись механически отселектированные каллусные культу
ры, полученные из одного экспланта, выращиваемые на одной питательной
среде, но с различной способностью к регенерации растений.
Материалы и методы. Каллусные культуры, В работе использованы
каллусные культуры земляники садовой (Fragaria grandiflora) двух сортов:
Русановка и Мускатная. Эксплантами служила верхушечная меристема
(0,2 — 1 мм). Для получения каллуса экспланты помещали на модифици-
*Correspondence address.
© Е. В. Я Ь Л О К О В А , Р. Г. КМЯМОВА, Н. М. Т Ю Л Е Н Е В А ,
Е. В. К О Л Е С Н И Ч Е Н К О , Т. А. Г О Р Ш К О В А , Л. В. Ж Е Л Т О Н О Ж С К А Я , 1996
СОСТАВ К Л Е Т О Ч Н Ы Х С Т Е Н О К К А Л Л У С Н Ы Х К У Л Ь Т У Р З Е М Л Я Н И К И
57
рованные питательные среды [2], содержащие гормоны в следующих
концентрациях (мг/л): ИМК — 1; БАП— 0,1 ; ГК — 0,1. Каллусообразова-
ние начиналось на 6—7-й день культивирования. Через 30 дней первичный
каллус отделяли и переносили на свежую питательную среду того же
состава. Каллусы культивировали в термостатах при температуре 25 ± 1 °С
без освещения. Полученные каллусы различались по цвету, консистенции и
интенсивности нарастания каллусной массы, что позволило разделить их на
две группы: плотные (узловатые, медленнорастущие) и рыхлые (светлые,
быстрорастущие). Для получения растений-регенерантов каллусы переноси
ли на морфогенные питательные среды, содержащие БАП (0,5 мг/л) и
культивировали их на свету (25 ± 1 °С). На плотных узловатых каллусах
на 14—18-й день культивирования начинали формироваться растения-реге-
неранты. На рыхлых каллусах растения-регенеранты не образовывались.
Плотный узловатый каллус был назван регенерирующим, а рыхлый —
нерегенерирующим.
Для анализа состава клеточной стенки каллусы снимали с питательной
среды на 24-й день культивирования, фиксировали в термостате при
температуре 105 °С и досушивали при 60 °С до постоянной массы.
Выделение и фракционирование клеточных стенок. Для выделе
ния клеточных стенок 200 мг сухого растительного материала гомогенизи
ровали в ступке в 10 мл 70 %-го этанола. Гомогенат центрифугировали при
1200 g в течение 5 мин, осадок последовательно промывали четыре раза в
0,5 М К-фосфатном буфере (рН 7,0), дважды — водой и дважды — 80 %-м
ацетоном. Для удаления крахмала промытый водой осадок обрабатывали в
течение ночи альфа-амилазой (10 ед/мл, «Serva», ФРГ). После двукратной
промывки водой и ацетоном выделенные стенки высушивали, взвешивали и
фракционировали.
Осадок дважды экстрагировали на кипящей водяной бане в 2 мл
0,5 %-го раствора оксалата аммония (рН 7). Полученные супернатанты
объединяли. К оставшемуся после экстракции растительному материалу
добавляли 2 мл 4 М КОН с 3 мг/мл NaBH 4 и интенсивно перемешивали в
течение 1 ч. Осадок повторно экстрагировали щелочью в течение ночи.
Супернатанты объединяли и нейтрализовали ледяной уксусной кислотой.
Кислоторастворимые гемицеллюлозы удаляли кипячением в уксусно-азот-
ном реактиве (смесь концентрированной азотной и ледяной уксусной кислот
в соотношении 1:10) в течение 1 ч. Оставшийся при этом осадок представ
лял собой целлюлозу [3], количество которой определяли взвешиванием.
Качественный и количественный состав фракций полисахаридов
определяли толуидиновым методом. Фракции клеточных стенок, раствори
мые в оксалате аммония (ОХА) и в щелочи (КОН), анализировали на
содержание гексоз, пентоз и уроновых кислот. К 0,5 мл исследуемого
образца добавляли 0,5 мл 4 N серной кислоты и выдерживали в течение
3 ч на кипящей водяной бане. После охлаждения смесь нейтрализовали
1 мл 2 М Na 2 C0 4 . Из полученного раствора отбирали 50 мкл в другую
пробирку, добавляли 2 мл толуидинового реактива и выдерживали в
течение 30 мин на водяной бане. Далее измеряли оптическую плотность при
365, 385 и 630 нм соответственно для гексоз, пентоз и уроновых кислот. Их
содержание определяли по калибровочным кривым для стандартов.
Анализ фенольних соединений клеточной стенки. Окисление феноль-
ных соединений клеточных стенок с использованием оксида меди в щелоч
ной среде проводили по методу [4]. После завершения реакции смесь
подкисляли до рН 2,5 с помощью НС1 и экстрагировали фенольные
соединения этиловым эфиром. Пробы высушивали, растворяли в ацетоне и
анализировали на стеклянной колонке (250 х 3 мм), заполненной 4 % СЕ52
на Хромосорбе W (100—200 mesh) («Sigma», США), на хроматографе
Я Б Л О К О Н А Е. В. И Д Р .
58
Хром-5 («Laboratorni pristroje», Прага). Температуру колонки изменяли по
следующей программе: 170 °С — 10 мин, от 170 до 185 °С со скоростью
4 °С/мин с двухминутной задержкой при 185 °С, затем от 185 до 200 °С со
скоростью 10 °С/мин и задержкой при 200 °С до завершения анализа.
Температура пламенно-ионизационного детектора 210 °С, давление газа
носителя (гелий) — 0,85 Па.
Спектрофотометрическое определение содержания феруловой кисло
ты. Клеточные стенки экстрагировали 1 N NaOH в течение 16 ч при
комнатной температуре [5], центрифугировали при 2500 g (10 мин),
супернатант фильтровали и разбавляли в 10 раз водой. 1 мл этого раствора
смешивали с 0,5 мл 0,05 М трис-HCl (рН 9,0) и 0,5 мл 0,06 %-го
2,6-дихлорхинон-4-хлоримида (реактив Гиббса) в этаноле. Оптическую
плотность сканировали от 500 до 670 нм на спектрометре Hitachi-557.
Стандартный спектр поглощения для феруловой кислоты определяли при ее
Таблица 1
Содержание клеточных стенок (КС ) и их фракций в различных каллусных культурах
земляники (мг/100 мг сухой массы)
Таблица 2
Состав фракций клеточных стенок в различных каллусных культурах земляники ( % от
массы фракции)
СОСТАВ К Л Е Т О Ч Н Ы Х С Т Е Н О К КАЛЛУСНЫХ. К У Л Ь Т У Р З Е М Л Я Н И К И
Примечание. 1, 2, 5, 6, 8, 9 — неидентифицированные пики; 3 — ванилин; 4 — ацетова-
нилон; 7 — сиреневый альдегид.
Спектр фенольных продуктов окисления
клеточных стенок каллусных культур зем
ляники (сорт Мускатная, 24 дня; I —
регенерирующая и II — нерегенерирую-
щая каллусная культура). По оси абс
цисс — время удерживания (мин); по оси
ординат — интенсивность сигнала
концентрации 4,65-10 - 5 моль/л.
Результаты и обсуждение. Клеточная стенка составляла более 40 %
сухой массы у всех проанализированных каллусных культур (табл. 1). Доля
различных фракций в клеточной стенке имела некоторые различия между
сортами, но не отличались существенно у регенерирующих и нерегенериру-
ющих каллусных культур одного сорта (см. табл. 1).
Аналогичный вывод можно сделать о результатах анализа состава
фракции клеточных стенок толуидиновым методом (табл. 2).
В то же время спектр фенольных соединений имел четко выраженные
отличия: среди фенольных продуктов окисления клеточных стенок регене
рирующих каллусных культур значительную долю (34 %) составлял
ванилин, который полностью отсутствовал у нерегенерирующих каллусов
(табл. 3, рисунок). Существенное превышение количества ванилина среди
продуктов окисления клеточной стенки может быть результатом высокого
содержания 1) кониферилового спирта в лигнине; 2) феруловой кислоты в
клеточной стенке; 3) гликозида кониферилового спирта в клеточной стенке
[1]. Известно, что в каллусной массе лишь часть клеток (иногда очень
немногочисленная) вовлекается в процесс регенерации. Столь заметная
Таблица 3
Состав фенольных продуктов окисления клеточных стенок каллусных культур земляники
(% от суммы всех пиков на хроматограмме)
59
разница в содержании ванилина среди продуктов окисления клеточной
стенки может означать либо крайне высокую концентрацию его предшест
венников в клетках, способных к регенерации, либо то, что последнее
свойство присуще всей совокупности каллусных клеток, а не конкретно тем,
которые начинают дифференцироваться.
Все проанализированные каллусные культуры независимо от способно
сти к регенерации содержат среди продуктов окисления клеточной стенки
сиреневый альдегид. Синаповая кислота, имеющая две метоксильные груп
пы и являющаяся предшественником синапового спирта, дающего при
окислении сиреневый альдегид, образуется в клетках только через феруло
вую кислоту, включающую одну метоксильную группу [1 ]. Это означает,
что в исследуемых растительных тканях функционирует механизм образо
вания феруловой кислоты. Чтобы объяснить отсутствие ванилина (типично
го для продуктов окисления лигнина всех покрытосеменных растений),
необходимо знать, входят ли анализируемые фенольные соединения в
лигнин или это низкомолекулярные вещества.
Для этого мы провели экстракцию фенольных кислот, связанных с
полисахаридами клеточной стенки. Известно, что эфирные связи феноль
ных кислот с полисахаридами клеточной стенки можно разорвать раствором
щелочи [6]. В полученных экстрактах обнаружены резкие отличия в
содержании феруловой кислоты (табл. 4). Его корреляция со способностью
к регенерации может быть связана с иммобилизацией феруловой кислоты
(если она выступает как ингибитор регенерации) посредством включения ее
в лигнин или в гликозид. Другим возможным объяснением этого является
модификация состава и свойств клеточной стенки вследствие присоединения
феруловой кислоты к полисахаридным остаткам. В литературе в последнее
время появились данные об участии фенольных кислот клеточной стенки в
регуляции способности клетки к растяжению и формированию агрегатов [7,
8 ]. Наши результаты свидетельствуют о ключевой роли этих соединений в
процессах регенерации в каллусных культурах.
О. В. Яблокова, Р. Г. Киямова, Н. М. Тюленева, О. В. Колесніченко, Т. А Горшкова,
Л. В. Желтоножська
Склад клітинних стінок калусних культур суниці з різною здатністю до морфогенезу
Резюме
Проаналізовано склад полісахаридів фенольних сполук клітинних стінок калусних культур суниці
з різною здатністю до морфогенезу. Не виявлено суттєвих відмінностей ні за кількісним
вмістом клітинних стінок, ні за складом та вмістом фракцій полісахаридів. У той же час
спектр фенольних сполук регенеруючого калу'су різко відрізнявся від такого нерегенеруючого
калусу. Серед фенольних продуктів окислення клітинних стінок регенеруючих калусних культур
Таблица 4
Содержание лигнина и феруловой кислоты в клеточных стенках различных каллусных
культур земляники (% от массы клеточных стенок)
60
С О С Т А В К Л Е Т О Ч Н Ы Х С Т Е Н О К К А Л Л У С Н Ы Х К У Л Ь Т У Р З Е М Л Я Н И К И
значна частина припадала на ваниліну який повністю був відсутній у нерегенеруючому калусі. На
підставі результатів спектрофотометричного аналізу зроблено припущення, що це пов'язано з
наявністю ферулової кислоти в клітинних стінках регенеруючого калусу.
Е. V. Yablokova, R. G. Kiyaтоva, N. М. Tuleneva, Е. V. Kolesnichenko, Т. A. Gorshkova,
L. V. Zheltonozhskaya
Composition of cellular walls in callus cultures of strawberries with different capacity to morphogenesis
Summary
The composition of polysaccharides and phenol combinations of cell walls in callus cultures of strawberries
with different ability to regeneration of the plant has been investigated. No essential differences have been
found either in the content of cell walls or in the content and composition of polysaccharide fractions. At the same time the spectrum of phenol compounds had some clear-cut distinction: among the phenol products of
oxidation of cell walls in regenerating callus cultures the vanilin accounted for a considerable fraction which
was totally missing in nonregenerating calluses. Spectrophotometric analysis has made it poissible to sup
pose that this phenomenon involves the presence of ferulic acid in the cell walls of regenerating cultures.
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
1. Fry S. C. The growing plant cell wall: Chemical and metabolic analysis / Ed. M. Wiikins.—New
York: John Willey and Sons, 1988.—333 p.
2. Murashige Т., Skoog E A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue
culture / / Physiol. Plant.—1962.—15.—P. 473—497.
3. Updegraff D. M. Semimicrodetermination of cellulose in biological materials //Analyt.
Biochem.—1969.—32, N 3.—P. 420—424.
4. Hartley R. D. Improved methods for the estimatiom by gas-liquid chromatography of lignin
degradation products for plants / / J. Chromatogr.—1971.—54, N 3.—P. 335—344.
5. Willemse M. T. A/., Emons A. M. C. Autofluorescence and HPLC analysis of phenoiics in Zea
mays L. stem cell wall //Acta bot. neer.—1991.—40, N 2.—P. 115—124.
6. Harris P. J., Hartley R. D. Detection of bound ferulic acid in cell walls of Gramineae by
ultraviolet fluorescence microscopy / / Nature.—1976.—259.—P. 508—510.
7. Kato Y., Yamanouchi H., Hinata K. et ai Involvement of phenolic esters in cell aggregation of
suspension cultured rice cells / / Plant Physiol.—1994.—104.—P. 144—152.
8. Locher R., Martin H. V.f Grison R., Filet P. E. Cell wall-bound trans- and cfs-ferulic acids in
growing maize roots //Ibid.—90.—P. 734—738.
У Д К 5 8 1 . 1 7 : 6 3 4 . 7 5 Поступила в редакцию 27.06.95
бі
|