Methylene blue: an alternative, multi-purpose stain for detection, analysis and isolation of nucleic acids
A series of experiments was performed utilizing Methylene Blue (MeB) in place of the intercalating dyes ethidium bromide (EtBr) and acridine orange (AO) to stain, visualize, and isolate DNA and RNA. MeB proved to be superior to the other dyes for several purposes: 1) visualization of glyoxalated (ch...
Збережено в:
| Опубліковано в: : | Биополимеры и клетка |
|---|---|
| Дата: | 1997 |
| Автори: | , , |
| Формат: | Стаття |
| Мова: | Англійська |
| Опубліковано: |
Інститут молекулярної біології і генетики НАН України
1997
|
| Теми: | |
| Онлайн доступ: | https://nasplib.isofts.kiev.ua/handle/123456789/155205 |
| Теги: |
Додати тег
Немає тегів, Будьте першим, хто поставить тег для цього запису!
|
| Назва журналу: | Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine |
| Цитувати: | Methylene blue: an alternative, multi-purpose stain for detection, analysis and isolation of nucleic acids / К.M. Johnson, T. Hanekamp, M.M. Stayton // Биополимеры и клетка. — 1997. — Т. 13, № 3. — С. 250-253. — Бібліогр.: 8 назв. — англ. |
Репозитарії
Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine| _version_ | 1859667668471119872 |
|---|---|
| author | Johnson, K.M. Hanekamp, T. Stayton, M.M. |
| author_facet | Johnson, K.M. Hanekamp, T. Stayton, M.M. |
| citation_txt | Methylene blue: an alternative, multi-purpose stain for detection, analysis and isolation of nucleic acids / К.M. Johnson, T. Hanekamp, M.M. Stayton // Биополимеры и клетка. — 1997. — Т. 13, № 3. — С. 250-253. — Бібліогр.: 8 назв. — англ. |
| collection | DSpace DC |
| container_title | Биополимеры и клетка |
| description | A series of experiments was performed utilizing Methylene Blue (MeB) in place of the intercalating dyes ethidium bromide (EtBr) and acridine orange (AO) to stain, visualize, and isolate DNA and RNA. MeB proved to be superior to the other dyes for several purposes: 1) visualization of glyoxalated (chemically denatured) RNA in agarose gels, 2) staining of nucleic acids that are to be used in subsequent hybridization experiments, and 3) isolation and purification of plasmid DNA by CsCl ultracentrifugation. MeB was found to perform at least as well as EtBr or AO for visualization of DNA in agarose of acrylamide gels, and DNA stained with MeB can be purified from agarose gel slices by the Gene Clean protocol. These results indicate that MeB is a very effective nucleic acid stain. Its safety versus conventional intercalating dyes will be discussed.
Здійснено серію експериментів з використання метиленового синього (МС) замість інтеркалюючих барвників бромистого етидію (ЕВ) та. акридинового оранжевого (АО) для забарвлення, візуалізації та виділення ДНК і РНК. Показано, що МС переважає інші барвники у використанні для декількох цілей: 1) візуалізації гліоксильовано'і (хімічно денатурованої) РНК в агарозних гелях; 2) забарвлювання нуклеїнових кислот, які в подальшому будуть використані в експериментах з гібридизації; 3) виділення та очистки плазмідної ДНК ультрацентрифугуванням в CsCl. Знайдено, що за допомогою МС ДНК так само добре виявляється в гелях агарози або акриламіду, як і з використанням ЕВ і АО, а ДНК, забарвлена МС, може бути очищена із зрізів гелей агарози по протоколу «Gene Clean». Ці результати вказують на те, що МС є дуже ефективним барвником нуклеїнових кислот. Обговорюється його безпека іюрівняно з загальноприйнятними інтеркалюючими барвниками.
Проведена серия экспериментов по использованию метиленового синего (МС) вместо интеркалирующих красителей бромистого этидия (ЭВ) и акридинового оранжевого (АО) для окрашивания, визуализации и выделения ДНК и РНК. Показано, что МС превосходит другие красители в использовании для нескольких целей: 1) визуализации глиоксилированной (химически денатурированной) РНК в агарозных гелях; 2) окрашивания нуклеиновых кислот, которые впоследствии будут использоваться в экспериментах по гибридизации; 3) выделения и очистки плазмидной ДНК ультрацентрифугированием в CsCl. Обнаружено, что МС так же пригоден для визуализации ДНК в гелях агарозы или акриламида, как ЭВ или АО, а ДНК, окрашенная МС, может быть очищена из срезов гелей агарозы по протоколу «Gene Clean». Эти результаты указывают на то, что МС – очень эффективный краситель нуклеиновых кислот. Обсуждается его безопасность по сравнению с общепринятыми интеркалирующими красителями.
|
| first_indexed | 2025-11-30T12:18:09Z |
| format | Article |
| fulltext |
ISSN 0233-7657. Биополимеры и клетка. 1997. Т. 13. № 3
МЕТОДЫ
Methylene blue: an alternative, multi-purpose stain
for detection, analysis and isolation of nucleic acids
К. M. Johnson, T. Hanekamp1, M. M. Stayton1
Kennedy Space Center
NASA/KSC, Mai! Code D Y N - 3 , FL 32899, USA
1
University of Wyoming Department of Molecular Biology
Laramie, WY 8 2 0 7 1 — 3 9 4 4 , USA
A series of experiments was performed utilizing Methylene Blue (MeB) in place of the intercalating dyes
ethidium bromide (EtBr) and acridine orange (AO) to stain, visualize, and isolate DNA and RNA. MeB
proved to be superior to the other dyes for several purposes: 1) visualization of glyoxalated (chemically
denatured) RNA in agarose gels, 2) staining of nucleic acids that are to be used in subsequent hybridization
experiments, and 3) isolation and purification of plasmid DNA by CsCl ultracentrifugation. MeB was
found to perform at least as well as EtBr or AO for visualization of DNA in agarose of acrylamide gels,
and DNA stained with MeB can be purified from agarose gel slices by the Gene Clean protocol. These
results indicate that MeB is a very effective nucleic acid stain. Its safety versus conventional intercalating
dyes wilt be discussed.
Introduction. Detection and analysis of nucleic acids
is an integral part of molecular biology, and several
dyes are commonly used for this purpose, including
ethidium bromide (EtBr) and acridine orange (AO).
The ideal stain is rapid, sensitive, s table, non-toxic,
required no special equipment for use, is useful for
double and single s t randed nucleic acids, and does
not interfere with subsequent hybridization expe
riments. We have investigated the use of methylene
blue (MeB) as an alternative to EtBr and AO, and
found it to perform as well as or bet ter than these
intercalating dyes in many experimental procedures.
Additional advantages to the use of MeB are that
exposure to ultra-violet (UV) light is not necessary to
visualize DNA or RNA, thus eliminating undesirable
UV cross linking of samples and exposure of labo
ratory personnel to the potentially harmful effects of
UV light.
Evidence also indicates that MeB is less toxic
than either EtBr or AO, making it safer to use and
easier to dispose of than s t andard intercalating dyes.
T h e lowest reported lethal dose (LDLo) for int ra
peritoneal adminis trat ion in mice is 20 m g / k g for
© К M. J O H N S O N , T. HANBKAMP, M M. S T A Y T O N , 1997
EtBr [1 ], and 64 m g / k g for AO 12 |. T h e LDLo of
MeB for subcutaneous adminis trat ion in guinea pig is
300 m g / k g , and 1000 m g / k g a n d 500 mg /kg in rabbit
and dog, respectively, for oral adminis trat ion [3J.
Materials and Methods . Methylene blue staining
of denatured RNA. Duplicate sets of samples, con
sisting of 15 jug total soybean leaf RNA, were
electrophoresed in identical 1.0 % (w/v) agarose gels
in 10 mM sodium phosphate buffer, pH 7.0. RNA was
visualized by one of two methods : 1) stained in 10
^ g / m l MeB in DEPC- t rea ted , sterile water for 15
min, then destained in 3 changes of deionized water
over approximately 1 hr, or 2) s tained in 1 jug/ml AO
in sterile water, then desta ined.
RNA was then transferred by capillary blotting to
Schleicher and Schuell Ny t ran nylon membranes in
10-SSC (1-SSC = 0.15 M NaCl , 0.015 M Na-Citrate)
overnight. Nylon membranes were baked at 67 °С for
approximately 1.5 hr , then pre-hybridized in Solution
1 (5 % (w/v) SDS, 4-SSC, 5 - D e n h a r d t ' s , 50 mM
N a P 0 4 , pH 6.8, 100 /ug/ті dena tured salmon sperm
DNA) at 42 °С for at least 6 hr . Hybridization to a
3 2 P- labe led (random priming; specific activity of at
least 1-Ю 8 cpm) cDNA probe was performed in
Solution 2 (50 % (v/v) formamide, 0.5 % (w/v) SDS,
250
4 S S C , 5 - D e n h a r d t ' s , 50 mM N a P 0 4 , pH 6.8,
50 / /g /ml denatured salmon sperm DNA) at 42 °С for
at least 12 hr. Blots were washed in 0.1 SSC plus
0.1 % (w/v) SDS, and exposed to film (Kodak X-AR).
Densitometer scans of autoradiographs were per
formed on an LKB. Ultroscan XXL Laser Den
sitometer with LKB 2400 Gelscan XL software version
1.0. Peak areas were calculated as:
peak area = mm * A U h 3 3 n m .
The valley-to-valley method was used to calculate
baselines, and data were normalized to the strongest
signal.
Methylene blue staining of DNA in agarose and
polyacrylamide gels. Duplicate samples of 500, 100,
50, and 10 ng of lambda DNA digested with Hindi!I
were electrophorcsed in identical 1.0 % (w/v) agarose
gels in 1-TAE (40 mM Tris acetate, 1 mM EDTA) .
Similarly, duplicate sets of samples were separated in
7 % acrylamidc gels (prepared from a 40 % (w/v)
solution of acrylamide.bisacrylamide, 19:1) in 1-TBE
(90 mM Tris borate, 2 mM EDTA; 4) Gels were
stained with either 1 /j.g/ml EtBr or 10 / i g /mM MeB
in water, then destained.
Use of methylene blue in DNA isolation and
recovery. S t a n d a r d l a rge sca le p r e p a r a t i o n s of
pUCI 18/119 plasmid DNA were prepared by the
alkaline lysis method [4] . The density of the crude
plasmid DNA solutions was adjusted to 1.55 g /ml
with solid CsCI, and equal volumes (6.2 ml) of this
solution were transferred to 2 15-ml Corcx tubes. 300
//•I of 10 mg/ml EtBr or 300 p \ of 2 mg /ml MeB was
added, the density readjusted to 1.55 g CsCl /ml , and
tubes were centrifuged for 5 min at 7000*g to pellet
remaining precipitated proteins and cell debris . The
supernatant fractions were transferred to 5-ml Beck-
man quick-seal tubes (the pellet in the MeB tube was
looser and more flaky than that in the EtBr tube,
making it more difficult to avoid transferring some
solid to the quick-seal tube) .
U1 tracentr ifLigation was performed at 50,000*g
for about 15 hr at 20 C. Plasmid DNA bands were
clearly visible in each tube, and were extracted with
a 16 gauge needle at tached to a 3-mI syringe. 100/ї ї
more of each stain was added to the appropriate
sample, and a second round of ultracentrifugation was
performed as above. Distinct plasmid bands were
visible in both tubes (Fig. 4) ; note that MeB-stained
plasmid DNA migrates further down the CsCI gra
dient due to its increased density. Plasmid DNA
bands were extracted from the tubes as above.
/т-Butanol was found to extract MeB and EtBr equally
well from the samples (data not shown). Following
dialysis in ТЕ buffer pH 8.0 (ТЕ - 10 mM Tris ,
M E T H Y L E N E B L U E : AN A L T E R N A T I V E . ANALYSIS AND I S O L A T I O N
1 mM EDTA) to remove remaining CsCI | 4 ] , DNA
samples were precipitated with 95 % (v/v) ethanol,
dried under vacuum, and resuspended in sterile ТЕ.
Concentrat ions were determined speetrophotomctri-
cally on duplicate samples.
Results and Discussion. Although methylene blue
is commonly used as a stain for the detection of RNA
on Northern blots [5, 6 ], it has not been tested as a
general purpose nucleic acid stain. Thus , we sub
stituted MeB for traditional intercalating dyes, ethi
dium bromide and acridine orange, in several mole
cular biology procedures. Use of MeB was found to be
preferable to intercalating dyes for staining glyo-
xalated RNA in agarose gels (Fig. 1). Glyoxal che
mically denatures RNA by covalently modifying gua
nine residues, and glyoxalated RNA does not stain
well with EtBr or AO unless the glyoxal is first
removed from the gel by brief t rea tment with 0.05 M
N a O H and neutralization [7 |, which we found to have
undesirable effects on RNA stability and its transfer
А /V A
Acridine Orange Methylene Blue
Fig. 1. Visualization of total RNA isolated from the soybean cultivars
Acme (A) and Norchief (AO. Fifteen ug samples of glyoxalated
(denatured) RNA were electrophorcsed as described in «Materia Is
and Mcthods» and stained with 1 /*g/ml AO or 10wg/ml MeB. MeB
was more effective than intercalating dyes for staining chemically
denatured RNA
251
J O H N S O N К VI F/I ЛІ
Л N А N
Methylene Blue Acridine Orange
Fig. 2. Northern blot analysis of total RNA isolated from the soybean
cultivars Acme (A) and Norchief (/V). After electrophoresis and
staining of RNA samples with either AO or MeB, RNA was
transferred to nylon membranes by blotting and hybridized with a
^ P labeled DNA probe specific for an mRNA transcript found in N.
but not A (A was included as a negative control) . Visual inspection
of the autoradiograph revealed that MeB stained RNA bound the
probe more effectively (top pane l ) . Densitometric analysis of the film
showed that the increase in hybridization efficiency over AO-stained
RNA was approximately 100 % (bottom panel)
to nylon membranes . Tn addit ion, our results indicate
that binding of a u P - l a b e l e d cDNA probe to AO-
stained RNA samples was inhibited about two-fold in
comparison to McB-stained samples (Fig. 2) , de
monstrat ing that MeB-staincd RNA is also superior
for hybridization to DNA probes. Because visu
alization of RNA by MeB staining does not require
prior removal of glyoxal from the gel, denatured RNA
can be processed as the glyoxalated adduct throu
ghout electrophoresis and transfer, thus minimizing
the risk of RNA degradation [8 |.
For visualizing DNA after electrophoresis, MeB
provides comparable sensitivity to EtBr in agarose
gels (Fig. 3) , and in acrylamide gels (data not
shown). MeB-stained gels can be viewed in ambient
room light and photographed on a white light box;
they require no exposure of the investigator or DNA
samples to UV light. In contrast to EtBr, however,
MeB can not be used in the gel to stain nucleic acids
during electrophoresis, as this was found to cause
distortions in the migration of DNA fragments.
MeB can also be subst i tuted for traditional inter
calating dyes in the isolation and purification of
plasmid DNA by CsCl density ultracentrifugation
(Fig. 4) . Surprisingly, plasmid yield after CsCl den-
/ 2 3 4 1 2 J 4
Ethidium Bromide Methylene Blue
Fig. 3. Visualization of f/indllf restriction endonuolease-digcste(
lambda DNA after electrophoresis. Duplicate sets of 500 , 100, 50
and 10 ng samples (lanes / through 4, respectively) were elec
trophoresed and stained with either 1 / tg /ml EtBr or \0 ug/m\ MeB
MeB stained the DNA at least as effectively as the more common!;
used dye, EtBr
252
MF.THYT.BNF, B U J E : AN A L T E R N A T I V E . ANALYSES AND ISOLATION
F.ihidium Bromide Methylene Blue
Fig. 4. Cesium chloride density gradient purification of plasmid
DNA. Crude plasmid DNA was prepared by a s tandard alkaline lysis
protocol and then purified by ultracentrifugation in a CsCl gradient ,
utilizing either FvtRr or MeB for visualization of the plasmid band
(see «Materials and Methods» for details) . Arrows indicate the
position of each band; note that MeB increases the density of the
DNA, resulting in its migration further down the tube
sity ultracentrifugation with MeB staining was up to
10-fold higher than with EtBr staining. While we
cannot explain this result, the increased yield with
MeB was consistent and repeatable. Both MeB and
EtBr plasmid preparations yielded very pure DNA
that was easily digestible with restriction endonuc-
Ieases.
Finally, we determined that agarose gel slices
containing MeB-stained DNA bands could be pro
cessed by the Gene Clean protocol (Biol01, La Jolla,
CA) to recover DNA fragments for cloning. DNA
fragments stained with either EtBr or MeB are equally
recoverable by this procedure (data not shown).
Tn this safety-conscious age, it is desirable to
develop molecular biology protocols that are less
hazardous to the scientist and have fewer negative
environmental side effects than conventional methods .
This series of experiments was carried out to demon
strate that MeB can be used in place of the more
hazardous intercalating dyes EtBr or AO in many
applications involving DNA or RNA.
Acknowledgments. We thank L. Todd Buckman for
his invaluable help with the photography and dark
room work.
К. M. Джонсон, Т. Хенекамп, M. М. Стейтон
Метиленовий синій: альтернативний багатоцільовий барвник для
виявлення, аналізу та виділення нуклеїнових кислот
Резюме
Здійснено серію експериментів з використання метиленового
синього (МС) замість інтеркалюючих барвників бромистого
етидію (ЕВ) та. акридинового оранжевого (АО) для забарвлен
ня, візуалізації та виділення ДНК і РНК. Показано, що МС
переважає інші барвники у використанні для декількох цілей:
І) візуалізації гліоксильовано'і (хімічно денатурованої) РНК в
агарозних гелях; 2) забарвлювання нуклеїнових кислот, які в
подальшому будуть використані в експериментах з гібри
дизації; 3) виділення та очистки плазмідної ДНК ультрацен
трифугуванням в CsCl. Знайдено, що за допомогою МС ДНК
так само добре виявляється в гелях агарози або акриламіду,
як і з використанням ЕВ і АО, а ДНК, забарвлена МС, може
бути очищена із зрізів гелей агарози по протоколу «Оепе
Clean». IU результати вказують на те, що МС є дуже
ефективним барвником нуклеїнових кислот. Обговорюється
його безпека іюрівняно з загальноприйнятними інтеркалю-
ючими барвниками.
К. М. Джонсон, Т. Хенекамп, М. М. Стэйтон
Метиленовьгй синий: альтернативный многоцелевой краситель
для обнаружения , анализа и выделения нуклеиновых кислот
Резюме
Проведена серия экспериментов по использованию метилено
вого синего (МС) вместо интеркалирующих красителей бро
мистого этидия (ЭВ) и акридинового оранжевого (АО) для
окрашивания, визуализации и выделения ДНК и РНК. Показа
но, что МС превосходит другие красители в использовании
для нескольких целей: I) визуализации глиоксилированной (хи
мически денатурированной) РНК в агарозных гелях; 2) окра
шивания нуклеиновых кислот, которые впоследствии будут
использоваться в экспериментах по гибридизации; 3) выделе
ния и очистки плазмидной ДНК ультрацентрифугированием в
CsCl. Обнаружено, что МС так же пригоден для визуализации
ДНК в гелях агарозы или акриламида, как ЭВ или АО, а ДНК,
окрашенная МС, может быть очищена из срезов гелей агарозы
по протоколу «Оепе Сіеап». Эти результаты указывают на
то, что МС — очень эффективный краситель нуклеиновых
кислот. Обсуждается его безопасность по сравнению с обще-
принятыми интеркалирующими красителями.
R E F E R E N C E S
1. Ethidium Bromide MSDS (Report Number O H S 6 0 7 0 3 ) . - - S a n
Feandro: MDL Inform. Syst., 1994.
2. Acridine Orange MSDS (Report Number O H S 6 0 0 1 0 ) . - Ibid.
3. Methylene Blue MSDS (Report Number O H S l 9415) . —Ibid.
4. Samhrook J., Fritsch E. F., Maniatis Т., Irwin N. Molecular
Cloning. A Laboratory Manual.— New York: Cold Spring
Ftarbor Fab . press, 1989. — 3 2 5 p.
5. Herrin D. /,, Schmidt G. W. II BioTechniques, 1988 6.
P. 196—200.
6. Wilkinson M., Doskow J., Findsey S. II Nucl. Acids Res.
1991 . - - 1 9 . -P. 679.
7. Carmichael G. С. II Electrophoresis. 1980. — 1 . — P . 78—82.
8. Thomas P. S. II Meth. Enzymol. 1983 . - - -100 . - P. 255 -
266.
Received 1 1.12.96
253
|
| id | nasplib_isofts_kiev_ua-123456789-155205 |
| institution | Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine |
| issn | 0233-7657 |
| language | English |
| last_indexed | 2025-11-30T12:18:09Z |
| publishDate | 1997 |
| publisher | Інститут молекулярної біології і генетики НАН України |
| record_format | dspace |
| spelling | Johnson, K.M. Hanekamp, T. Stayton, M.M. 2019-06-16T10:57:30Z 2019-06-16T10:57:30Z 1997 Methylene blue: an alternative, multi-purpose stain for detection, analysis and isolation of nucleic acids / К.M. Johnson, T. Hanekamp, M.M. Stayton // Биополимеры и клетка. — 1997. — Т. 13, № 3. — С. 250-253. — Бібліогр.: 8 назв. — англ. 0233-7657 DOI: http://dx.doi.org/10.7124/bc.000487 https://nasplib.isofts.kiev.ua/handle/123456789/155205 A series of experiments was performed utilizing Methylene Blue (MeB) in place of the intercalating dyes ethidium bromide (EtBr) and acridine orange (AO) to stain, visualize, and isolate DNA and RNA. MeB proved to be superior to the other dyes for several purposes: 1) visualization of glyoxalated (chemically denatured) RNA in agarose gels, 2) staining of nucleic acids that are to be used in subsequent hybridization experiments, and 3) isolation and purification of plasmid DNA by CsCl ultracentrifugation. MeB was found to perform at least as well as EtBr or AO for visualization of DNA in agarose of acrylamide gels, and DNA stained with MeB can be purified from agarose gel slices by the Gene Clean protocol. These results indicate that MeB is a very effective nucleic acid stain. Its safety versus conventional intercalating dyes will be discussed. Здійснено серію експериментів з використання метиленового синього (МС) замість інтеркалюючих барвників бромистого етидію (ЕВ) та. акридинового оранжевого (АО) для забарвлення, візуалізації та виділення ДНК і РНК. Показано, що МС переважає інші барвники у використанні для декількох цілей: 1) візуалізації гліоксильовано'і (хімічно денатурованої) РНК в агарозних гелях; 2) забарвлювання нуклеїнових кислот, які в подальшому будуть використані в експериментах з гібридизації; 3) виділення та очистки плазмідної ДНК ультрацентрифугуванням в CsCl. Знайдено, що за допомогою МС ДНК так само добре виявляється в гелях агарози або акриламіду, як і з використанням ЕВ і АО, а ДНК, забарвлена МС, може бути очищена із зрізів гелей агарози по протоколу «Gene Clean». Ці результати вказують на те, що МС є дуже ефективним барвником нуклеїнових кислот. Обговорюється його безпека іюрівняно з загальноприйнятними інтеркалюючими барвниками. Проведена серия экспериментов по использованию метиленового синего (МС) вместо интеркалирующих красителей бромистого этидия (ЭВ) и акридинового оранжевого (АО) для окрашивания, визуализации и выделения ДНК и РНК. Показано, что МС превосходит другие красители в использовании для нескольких целей: 1) визуализации глиоксилированной (химически денатурированной) РНК в агарозных гелях; 2) окрашивания нуклеиновых кислот, которые впоследствии будут использоваться в экспериментах по гибридизации; 3) выделения и очистки плазмидной ДНК ультрацентрифугированием в CsCl. Обнаружено, что МС так же пригоден для визуализации ДНК в гелях агарозы или акриламида, как ЭВ или АО, а ДНК, окрашенная МС, может быть очищена из срезов гелей агарозы по протоколу «Gene Clean». Эти результаты указывают на то, что МС – очень эффективный краситель нуклеиновых кислот. Обсуждается его безопасность по сравнению с общепринятыми интеркалирующими красителями. We thank L. Todd Buckman for his invaluable help with the photography and dark room work. en Інститут молекулярної біології і генетики НАН України Биополимеры и клетка Методы Methylene blue: an alternative, multi-purpose stain for detection, analysis and isolation of nucleic acids Метиленовий синій: альтернативний багатоцільовий барвник для виявлення, аналізу та виділення нуклеїнових кислот Метиленовьгй синий: альтернативный многоцелевой краситель для обнаружения, анализа и выделения нуклеиновых кислот Article published earlier |
| spellingShingle | Methylene blue: an alternative, multi-purpose stain for detection, analysis and isolation of nucleic acids Johnson, K.M. Hanekamp, T. Stayton, M.M. Методы |
| title | Methylene blue: an alternative, multi-purpose stain for detection, analysis and isolation of nucleic acids |
| title_alt | Метиленовий синій: альтернативний багатоцільовий барвник для виявлення, аналізу та виділення нуклеїнових кислот Метиленовьгй синий: альтернативный многоцелевой краситель для обнаружения, анализа и выделения нуклеиновых кислот |
| title_full | Methylene blue: an alternative, multi-purpose stain for detection, analysis and isolation of nucleic acids |
| title_fullStr | Methylene blue: an alternative, multi-purpose stain for detection, analysis and isolation of nucleic acids |
| title_full_unstemmed | Methylene blue: an alternative, multi-purpose stain for detection, analysis and isolation of nucleic acids |
| title_short | Methylene blue: an alternative, multi-purpose stain for detection, analysis and isolation of nucleic acids |
| title_sort | methylene blue: an alternative, multi-purpose stain for detection, analysis and isolation of nucleic acids |
| topic | Методы |
| topic_facet | Методы |
| url | https://nasplib.isofts.kiev.ua/handle/123456789/155205 |
| work_keys_str_mv | AT johnsonkm methyleneblueanalternativemultipurposestainfordetectionanalysisandisolationofnucleicacids AT hanekampt methyleneblueanalternativemultipurposestainfordetectionanalysisandisolationofnucleicacids AT staytonmm methyleneblueanalternativemultipurposestainfordetectionanalysisandisolationofnucleicacids AT johnsonkm metilenoviisiníialʹternativniibagatocílʹoviibarvnikdlâviâvlennâanalízutavidílennânukleínovihkislot AT hanekampt metilenoviisiníialʹternativniibagatocílʹoviibarvnikdlâviâvlennâanalízutavidílennânukleínovihkislot AT staytonmm metilenoviisiníialʹternativniibagatocílʹoviibarvnikdlâviâvlennâanalízutavidílennânukleínovihkislot AT johnsonkm metilenovʹgisiniialʹternativnyimnogocelevoikrasitelʹdlâobnaruženiâanalizaivydeleniânukleinovyhkislot AT hanekampt metilenovʹgisiniialʹternativnyimnogocelevoikrasitelʹdlâobnaruženiâanalizaivydeleniânukleinovyhkislot AT staytonmm metilenovʹgisiniialʹternativnyimnogocelevoikrasitelʹdlâobnaruženiâanalizaivydeleniânukleinovyhkislot |