Применение методов экспериментальной аллополиплоидии и культуры зародышей in vitro для получения межродовых гибридов у винограда (семейство Vitaceae)
Используя метод аллополиплоидии и культуры зародышей in vitro, у винограда после межродовой гибридизации получены растения, но для установления истинности их межродового происхождения необходимы дополнительные молекулярно- генетический и цитогенетический анализы. Використовуючи метод аллополіплої...
Gespeichert in:
| Veröffentlicht in: | Фактори експериментальної еволюції організмів |
|---|---|
| Datum: | 2009 |
| Hauptverfasser: | , , , |
| Format: | Artikel |
| Sprache: | Russian |
| Veröffentlicht: |
Інститут молекулярної біології і генетики НАН України
2009
|
| Schlagworte: | |
| Online Zugang: | https://nasplib.isofts.kiev.ua/handle/123456789/176887 |
| Tags: |
Tag hinzufügen
Keine Tags, Fügen Sie den ersten Tag hinzu!
|
| Назва журналу: | Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine |
| Zitieren: | Применение методов экспериментальной аллополиплоидии и культуры зародышей in vitro для получения межродовых гибридов у винограда (семейство Vitaceae) / В.А. Волынкин, В.А. Зленко, А.А. Полулях, В.В. Лиховской // Фактори експериментальної еволюції організмів: Зб. наук. пр. — 2009. — Т. 7. — С. 166-170. — Бібліогр.: 12 назв. — рос. |
Institution
Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine| id |
nasplib_isofts_kiev_ua-123456789-176887 |
|---|---|
| record_format |
dspace |
| spelling |
Волынкин, В.А. Зленко, В.А. Полулях, А.А. Лиховской, В.В. 2021-02-08T18:16:34Z 2021-02-08T18:16:34Z 2009 Применение методов экспериментальной аллополиплоидии и культуры зародышей in vitro для получения межродовых гибридов у винограда (семейство Vitaceae) / В.А. Волынкин, В.А. Зленко, А.А. Полулях, В.В. Лиховской // Фактори експериментальної еволюції організмів: Зб. наук. пр. — 2009. — Т. 7. — С. 166-170. — Бібліогр.: 12 назв. — рос. 2219-3782 https://nasplib.isofts.kiev.ua/handle/123456789/176887 Используя метод аллополиплоидии и культуры зародышей in vitro, у винограда после межродовой гибридизации получены растения, но для установления истинности их межродового происхождения необходимы дополнительные молекулярно- генетический и цитогенетический анализы. Використовуючи метод аллополіплоїдії і культури зародків in vitro, у винограду після міжродової гібридизації отримані рослини, але для встановлення істинності їх міжродового походження необхідні додаткові молекулярно-генетичний і цитогенетичний аналізи. Plants were achieved from intergeneric hybridization in grapevine by use of the method of allopolyploidy and in vitro embryo culture. Nevertheless, their intergeneric origin needs to be confirmed by additional molecular genetic and cytogenetic analyses. ru Інститут молекулярної біології і генетики НАН України Фактори експериментальної еволюції організмів Біотехнології у медицині та сільському господарстві Применение методов экспериментальной аллополиплоидии и культуры зародышей in vitro для получения межродовых гибридов у винограда (семейство Vitaceae) Article published earlier |
| institution |
Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine |
| collection |
DSpace DC |
| title |
Применение методов экспериментальной аллополиплоидии и культуры зародышей in vitro для получения межродовых гибридов у винограда (семейство Vitaceae) |
| spellingShingle |
Применение методов экспериментальной аллополиплоидии и культуры зародышей in vitro для получения межродовых гибридов у винограда (семейство Vitaceae) Волынкин, В.А. Зленко, В.А. Полулях, А.А. Лиховской, В.В. Біотехнології у медицині та сільському господарстві |
| title_short |
Применение методов экспериментальной аллополиплоидии и культуры зародышей in vitro для получения межродовых гибридов у винограда (семейство Vitaceae) |
| title_full |
Применение методов экспериментальной аллополиплоидии и культуры зародышей in vitro для получения межродовых гибридов у винограда (семейство Vitaceae) |
| title_fullStr |
Применение методов экспериментальной аллополиплоидии и культуры зародышей in vitro для получения межродовых гибридов у винограда (семейство Vitaceae) |
| title_full_unstemmed |
Применение методов экспериментальной аллополиплоидии и культуры зародышей in vitro для получения межродовых гибридов у винограда (семейство Vitaceae) |
| title_sort |
применение методов экспериментальной аллополиплоидии и культуры зародышей in vitro для получения межродовых гибридов у винограда (семейство vitaceae) |
| author |
Волынкин, В.А. Зленко, В.А. Полулях, А.А. Лиховской, В.В. |
| author_facet |
Волынкин, В.А. Зленко, В.А. Полулях, А.А. Лиховской, В.В. |
| topic |
Біотехнології у медицині та сільському господарстві |
| topic_facet |
Біотехнології у медицині та сільському господарстві |
| publishDate |
2009 |
| language |
Russian |
| container_title |
Фактори експериментальної еволюції організмів |
| publisher |
Інститут молекулярної біології і генетики НАН України |
| format |
Article |
| description |
Используя метод аллополиплоидии и культуры зародышей in vitro, у винограда
после межродовой гибридизации получены растения, но для установления истинности
их межродового происхождения необходимы дополнительные молекулярно-
генетический и цитогенетический анализы.
Використовуючи метод аллополіплоїдії і культури зародків in vitro, у винограду
після міжродової гібридизації отримані рослини, але для встановлення істинності їх
міжродового походження необхідні додаткові молекулярно-генетичний і
цитогенетичний аналізи.
Plants were achieved from intergeneric hybridization in grapevine by use of the method of
allopolyploidy and in vitro embryo culture. Nevertheless, their intergeneric origin needs to be
confirmed by additional molecular genetic and cytogenetic analyses.
|
| issn |
2219-3782 |
| url |
https://nasplib.isofts.kiev.ua/handle/123456789/176887 |
| citation_txt |
Применение методов экспериментальной аллополиплоидии и культуры зародышей in vitro для получения межродовых гибридов у винограда (семейство Vitaceae) / В.А. Волынкин, В.А. Зленко, А.А. Полулях, В.В. Лиховской // Фактори експериментальної еволюції організмів: Зб. наук. пр. — 2009. — Т. 7. — С. 166-170. — Бібліогр.: 12 назв. — рос. |
| work_keys_str_mv |
AT volynkinva primeneniemetodovéksperimentalʹnoiallopoliploidiiikulʹturyzarodyšeiinvitrodlâpolučeniâmežrodovyhgibridovuvinogradasemeistvovitaceae AT zlenkova primeneniemetodovéksperimentalʹnoiallopoliploidiiikulʹturyzarodyšeiinvitrodlâpolučeniâmežrodovyhgibridovuvinogradasemeistvovitaceae AT polulâhaa primeneniemetodovéksperimentalʹnoiallopoliploidiiikulʹturyzarodyšeiinvitrodlâpolučeniâmežrodovyhgibridovuvinogradasemeistvovitaceae AT lihovskoivv primeneniemetodovéksperimentalʹnoiallopoliploidiiikulʹturyzarodyšeiinvitrodlâpolučeniâmežrodovyhgibridovuvinogradasemeistvovitaceae |
| first_indexed |
2025-11-25T04:54:12Z |
| last_indexed |
2025-11-25T04:54:12Z |
| _version_ |
1850504489271820288 |
| fulltext |
166
Проведена проверка возможности применения разработанных ранее методик
микроклонального размножения U. vіctorіs для сохранения генофонда этого редкого
лекарственного растения. Результаты RAPD-анализа свидетельствуют о высокой
стабильности генома вида при прямой регенерации и регенерации из длительно-
культивируемых каллусных тканей.
This study tests an opportunity for application of developed earlier U. victoris micro-
propagation techniques for protection of this rare medicinal plant genetic resources. The
RAPD-analysis results suggest the high genetic stability of the species under conditions of
direct regeneration and regeneration from long-term cultured callus.
ВОЛЫНКИН В.А., ЗЛЕНКО В.А., ПОЛУЛЯХ А.А., ЛИХОВСКОЙ В.В.
Национальный институт винограда и вина «Магарач» УААН
Украина, 98600, АР Крым, г. Ялта, ул. Кирова, 31, e-mail: select_magarach@ukr.net
ПРИМЕНЕНИЕ МЕТОДОВ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОЙ АЛЛОПОЛИПЛОИДИИ
И КУЛЬТУРЫ ЗАРОДЫШЕЙ IN VITRO ДЛЯ ПОЛУЧЕНИЯ МЕЖРОДОВЫХ
ГИБРИДОВ У ВИНОГРАДА (СЕМЕЙСТВО VITACEAE)
Эволюция у представителей родов семейства Vitaceae происходила на разных
континентах под воздействием специфических биотических и абиотических факторов,
влияющих на процесс естественного отбора. Так у дикорастущего винограда Европы
Vitis vinifera ssp. silvestris Gmel., и у окультуренных сортов, относящихся к Vitis vinifera
ssp. sativa L., не сформировались признаки устойчивости к филлоксере, возбудителю
милдью, поскольку эти патогены впервые появились в Европе только в XIX веке. Они
были завезены с американского континента, на котором на протяжении длительного
времени проходила их сопряженная эволюция с формами винограда, происходящими
также с американского континента.
Сохранение виноградарства в Европе на основе селекции осуществлялось в двух
радикальных кардинально отличающихся направлениях: 1) создание
филлоксероустойчивых подвоев (привитая культура винограда) и 2) выведение
устойчивых c высокой продуктивностью и высоким качеством урожая сортов путем
скрещивания американских видов с сортами V. vinifera. Однако если виды подрода
Euvitis легко скрещиваются между собой, то получить гибриды между видом V. vinifera
(подрод Euvitis, 38 хромосом) с видом V. rotundifolia Michaux (подрод Muscadinia, 40
хромосом) удалось с большим трудом [11]. Фертильности таких гибридных сеянцев
удалось достичь лишь только после их полиплоидизации (аллотетраплоидии) [12].
В 1922-1924 гг. Г.Д. Карпеченко экспериментально доказал возможность
получения фертильных межродовых гибридов редьки и капусты методом аллоплоидии
(аллотетраплоидии) [4,5]. Но получение межродовых гибридов, применяя методы
аллополиплоидии и культуры in vitro изолированных из семян зародышей, даже у
культур растений, роды которых представлены широким спектром полиплоидных
рядов, связано с большими трудностями из-за несовместимости различных родов,
принадлежащих к одному семейству растений на генетическом (генетически
нестабильных) и физиолого-биохимическом уровнях [6,8]. Также генетически
нестабильными являются межродовые соматические гибриды, полученные в результате
слияния протопластов в культуре in vitro [2].
Межродовые гибриды у семейства Vitaceae пока не получены. Создание же
межродовых гибридов у винограда (хотя бы с частичным присутствием генов
различных родов из-за возможной элиминации хромосом одного из них) позволит
167
получить качественно новые устойчивые к биотическим и абиотическим факторам
среды генотипы, урожай которых может иметь новое направление использования, в
частности в фармакологической и парфюмерной промышленности.
Материалы и методы
Целью исследований являлось создание гибридов между сортами V. vinifera (род
Vitis, 2n =38 хромосом) и видами других родов (Ampelopsis и Parthenocissus, 2n = 40
хромосом) семейства Vitaceae: Ampelopsis acontifolia Lavalee, Ampelopsis cordata
Michaux, Ampelopsis serjaniefolia Regel, Parthenocissus inserta Fritch и Parthenocissus
quinquefolia Planch.
Применялся традиционный путь преодоления генетической несовместимости при
межродовой гибридизации (разного количества диплоидного набора хромосом у
исходных форм), заключающийся в методе аллополиплоидии – использовании для
скрещивания полиплоидных родительских форм. Наличие парных хромосом каждого
рода у гибридных сеянцев необходимо для конъюгации между хромосомами в процессе
прохождения мейоза и образования гамет, что может обеспечить фертильность
гибридных сеянцев [7]. Для достижения этой цели проводились эксперименты
параллельно по двум направлениям.
Результаты и обсуждение
Первое направление исследований заключалось в том, чтобы воздействуя
раствором колхицина на распускающиеся почки с зачаточными соцветиями
последующим методом инцухта получить тетраплоидные семена, а затем и сеянцы у
сортов вида V. vinifera и у видов родов Ampelopsis и Parthenocissus. В дальнейшем на 3
– 5 годы, после вступления этих полиплоидных (тетраплоидных) сеянцев в
плодоношение, провести между ними межродовую гибридизацию с дальнейшим
культивированием изолированных зародышей на ранних стадиях развития и
выращиванием из них сеянцев – межродовых гибридов.
С другой стороны, по данным Ш.Г. Топалэ [9] среди сортов V. vinifera найден
тетраплоидный сорт Шасла Гро Куляр белая и сорта, у которых встречаются
полиплоидные клетки при определенных погодных условиях (диплоидно-
тетраплоидные цитохимеры): Пикпуль черный, Харти про Ливье, Баян ширей, Шабаш
крупноягодный, Шабаш, Рислинг рейнский, Мускат Александрийский и Яхеи (с
женским типом цветка). Для получения полипоидов путем обработки распускающихся
почек колхицином использовались эти сорта – диплоидно-тетраплоидные цитохимеры
прогнозируя возможность образования полиплоидных клеток, которые у них будут
более жизнеспособные и у этих сортов большая вероятность образования диплоидных
гамет в результате мейоза.
Для определения соответствующих сроков и концентраций применения колхицина
были проведены в 2006-2008 годах обработки почек в фазе распускания. Для обработки
применялись концентрации колхицина в растворе Н2О: 0,12; 0,25, и 0,5 %. Изменения
побегов и листьев наблюдались только в варианте обработки 0,5% раствором
колхицина. Побеги имели утолщенную форму с короткими междоузлиями. Листья
очень сильно отличались от контроля и имели гофрированную форму, с интенсивной
темно-зеленой окраской. На два узла выше соцветия наблюдалось разветвление
побегов. После разветвления развивались побеги обычной толщины и длины
междоузлий, свойственной сорту. Таким образом, полученные побеги до ветвления, в
результате обработки раствором колхицина в концентрации 0,5 %, соответствовали по
вышеизложенным морфологическим признакам полиплоидным формам. Раздвоенные
побеги по морфологическим признакам, по всей вероятности, являлись диплоидными
[1].
Для получения полиплоидных сеянцев почки растений родов Ampelopsis и
Parthenocissus, а также инцухта миксоплоидных сортов V. vinifera весной на стадии
распускания были обработаны 0,5 % раствором колхицина в воде с добавкой 0,5 мг/л
168
6-бензиламинопурина (БАП). После инцухта соцветий у этих генотипов осенью были
получены семена, которые различаются по форме и размерам у каждого генотипа
(возможно в результате полиплоидизации). Всего получено семян: Ampelopsis
acontifolia (1846 шт.), Ampelopsis cordata (2245 шт.), Ampelopsis serjaniefolia (1723 шт.),
Parthenocissus inserta (1162 шт.) и Parthenocissus quinquefolia (701 шт.); у тетраплоида
Шасла Гро Куляр белая (313 шт), и у миксоплоидных сортов рода Vitis вид V. vinifera:
Харти про Ливье (1061 шт.), Пикпуль черный (1276 шт.), Шабаш крупноягодный (432
шт.), Шабаш (1244 шт.), Рислинг рейнский (123 шт.) и Мускат Александрийский (70
шт.). Эти семена будут высеяны и среди сеянцев, как по морфологическим признакам,
так и методом цитогенетического анализа будут выделены полиплоидные сеянцы. В
последующем, через 3 – 5 лет после вступления тетраплоидных сеянцев в пору
плодоношения будет проводиться межродовая гибридизация между тетраплоидными
сеянцами (род Vitis с родами Ampelopsis и Parthenocissus).
Другое направление наших исследований также с применением методов
аллотетраплоидии и культуры in vitro незрелых зародышей, выделенных из незрелых
семян, направлено на ускорение межродовой гибридизации. Исследовались следующие
генотипы винограда: 1) естественный тетраплоидный сорт Шасла Гро Куляр белая
(обоеполый, проводилась кастрация цветков); 2) миксоплоидный сорт Яхеи (женский
тип цветка); 3) миксоплоидные сорта Харти про Ливье и Пикпуль черный (обоеполые,
проводилась кастрация цветков). Эти генотипы были обработаны колхицином на
стадии распускания почек с находящимися в них зачаточными соцветиями для
полиплоидизации яйцеклеток. Соцветия этих сортов – относящихся к роду Vitis были
опылены пыльцой видов Ampelopsis acontifolia и Parthenocissus inserta взятой от
соцветий, развившихся на побегах, которые в свою очередь развились из почек,
обработанных колхицином на стадии распускания.
Так как в семенах, полученных в результате межродовой гибридизации,
наблюдается гибель зародышей из-за физиолого-биохимической несовместимости
различных родов, в нашем эксперименте семена собирались на ранних стадиях после
оплодотворения. Собранные на 40 день после гибридизации незрелые ягоды хранились
в холодильнике в течение 8-12 недель при –2 ºС. Затем из ягод выделялись семена,
которые стерилизовались 10 % «Доместас» в течение 12 – 15 мин., затем 96 % спиртом
10 - 20 сек. и промывались 4 – 5 раза стерильной водой. Семена в чашках Петри в
ламинарном боксе разрезались поперек и носики семян (части семян, в которых
находились зародыши) были высажены в 3 варианта жидкой среды, различающихся
между собой содержанием регуляторов роста: 1) 0,2 мг/л БАП для развития из
глобулярных зародышей сердцевидных; 2) 0,1 мг/л ß-индолилуксусной кислоты (ИУК)
и 30 мг/л гумата Na для превращения сердцевидных зародышей в торпедовидные; 3) 0,2
мг/л гибберелловый кислоты (ГА3) и 0,2 мг/л БАП для развития проростков с зелеными
семядолями и гипокотилями из торпедовидных зародышей. Основа жидкой среды
состояла из среды для размножения растений [3] следующего состава макроэлементов:
308 мг/л NH4NO3, 922 мг/л KNO3, 597 мг/л MgSO4 · 7H2O, 82 мг/л KH2PO4, 331 мг/л
CaCl2; микроэлементы и Fe-EDTA [10], 20 мг/л мезоинозита, 0,5 мг/л никотиновой
кислоты и 10 г/л сахарозы, но с повышенным содержанием витаминов тиамина и
пиридоксина (по 5 мг/л); рН каждого варианта среды перед автоклавированием (1атм,
25 мин) было доведено NaOH до 5,6.
При разрезании семян перед высадкой на 3 варианта жидких сред были выявлены
специфические сорто-биологические особенности. У сорта Яхеи при межродовой
гибридизации образуются пустые семена (без зародышей и эндосперма); у сортов
Шасла Гро Куляр белая и Харти про Ливье – как пустые семена, так и с эндоспермом,
но проростки не развивались, а у сорта Пикпуль черный почти все семена были с
эндоспермом, но при этом редко происходило развитие проростков и редко
образовывались у них побеги. В результате скрещивания сорта Пикпуль черный с
169
Ampelopsis acontifolia из 69 частей семян с эндоспермом после 40 дней
культивирования на 3-х вариантах жидких сред выросло только 20 проростков (30 %).
При этом 17 из них были зелеными, у трех из которых развились побеги (21 %). Три
проростка были с белыми семядолями и гипокотилями (15 % альбиносов от всех
развившихся проростков). Из 72 частей семян с эндоспермом скрещивания Пикпуль
черный с Parthenocissus inserta развилось меньше как проростков (2 зеленых и 1 белый
проросток), так и побегов из них (1 побег).
У всех семян с развившимся эндоспермом, полученных в результате межродовых
скрещиваний в большей или меньшей степени был выражен некроз оболочек семян и
эндосперма, что указывает на физиологическую несовместимость родов на
биохимическом уровне. Следует заключить, что в дальнейшем необходимо собирать и
высаживать семена на более ранних этапах их развития (10, 15 и 20 дней после
гибридизации). Проростки пересажены на питательную твердую среду для развития у
них побегов и корней. Состав концентраций компонентов этой среды отличается от
приведенной выше основы среды более низкой концентрацией витаминов (0,1 мг/л
тиамина и 0,2 мг/л пиридоксина), добавкой 30 мг/л гумата Na, 7,5 г/л агара и
концентрацией регуляторов роста: 0,15 мг/л ИУК, 0,005 мг/л α-нафтилуксусной
кислоты (НУК) и 0,001 мг/л БАП; значение рН было доведено NaOH до 6.0 – 6.2 перед
добавкой агара и автоклавированием. Как на жидких средах, так и на твердой среде, на
которую были пересажены проростки, наблюдается дальнейшее их аномальное
развитие и рост побегов у некоторых из них.
Выводы
Окончательный вывод о том, что полученные растения являются межродовыми
гибридами, или оплодотворение произошло в результате случайного попадания
пыльцы сортов рода Vitis, или произошла частичная или полная элиминация хромосом
одного из родов, можно будет сделать после молекулярно-генетического и
цитогенетического анализов исходных материнских форм и растений, развившихся из
гибридных семян в культуре зародышей in vitro.
Литература
1. Волынкин В.А., Зленко В.А., Лиховской В.В. Селекция винограда на
бессемянность, крупноягодность и раннеспелость на полиплоидном уровне// Труды
НИВиВ «Магарач».- 2009.- т. XXXIX.- С.5-10
2. Глеба Ю.Ю., Сытник К.М. Клеточная инженерия растений. – Киев.- 1984.- 160с.
3. Зленко В.А. Диагностика хозяйственноценных признаков и клональное
микроразмножение винограда in vitro. – Автореф. дис. канд. с.- х. наук, Ялта.- 1991.-
22с.
4. Карпеченко Г.Д. Полиплоидные гибриды Raphanus sativus L. x Brassica oleraceae
L.// Тр. По прикл. ботанике, генетике и селекции.- 1927.- т.17, №3.- С.393-398.
5. Карпеченко Г.Д. Теория отдаленной гибридизации. – М.–Л.- 1935.- 64с.
6. Кунах В.А. Бiотехнологiя лiкарських рослин. Генетичнi та фiзiолого-бiохiмiчнi
основи. – Київ.- 2005.- 724с.
7. Лобашев М.Е. Генетика. – Ленинград.- 1967.- 751с.
8. Першина Л.А., Шумный В.К. Проблемы использования методов in vitro при
отдаленной гибридизации злаков// Биология культивируемых клеток и биотехнология
растений. – Москва.- 1991.- С.102 -114.
9. Топалэ Ш.Г. Полиплоидия у винограда. Систематика, кариология, цитогенетика.
– Кишинев.- 1983.- 215с.
10. Murashige T. Skoog F. A revised medium for rapid growth and bioassays with
tobacco tissue culture// Physiol. Plant.- 1962.- vol.15.- P.473 - 497.
11. Patel G.I., Olmo H.P. Cytogenetics of Vitis: I. The hybrid V. vinifera x V.
rotundifolia// Amer. J. Bot.- 1955. vol. 42.- P. 36-42.
170
12. Patel G.I., Olmo H.P. Induction of polyploidy in sterile F1 hybrid of Vitis vinifera L.
and Vitis rotundifolia Michx.// Phyton (B.A.)/- 1956/- vol. 7, № 2.- P.12-15.
Резюме
Используя метод аллополиплоидии и культуры зародышей in vitro, у винограда
после межродовой гибридизации получены растения, но для установления истинности
их межродового происхождения необходимы дополнительные молекулярно-
генетический и цитогенетический анализы.
Використовуючи метод аллополіплоїдії і культури зародків in vitro, у винограду
після міжродової гібридизації отримані рослини, але для встановлення істинності їх
міжродового походження необхідні додаткові молекулярно-генетичний і
цитогенетичний аналізи.
Plants were achieved from intergeneric hybridization in grapevine by use of the method of
allopolyploidy and in vitro embryo culture. Nevertheless, their intergeneric origin needs to be
confirmed by additional molecular genetic and cytogenetic analyses.
ЗЮЗЮН А.Б., КОВТУН С.І., ЩЕРБАК О.В., ПОРХУН М.Г.
Інститут розведення і генетики тварин УААН
Україна, 08321, Київська обл., Бориспільський р-н., с. Чубинське, вул. Погребняка, 1,
e-mail: kovtun_si@gala.net
ФОРМУВАННЯ ЕМБРІОНІВ IN VITRO ЯК СПОСІБ ОЦІНКИ
ЗАПЛІДНЮВАЛЬНОЇ ЗДАТНОСТІ СПЕРМАТОЗОЇДІВ БУГАЇВ
Найпоширенішим методом визначення фертильності самців сільськогоспо-
дарських тварин є оцінка запліднювальної здатності сперматозоїдів за результатами
штучного осіменіння корів і телиць [1, 2]. Вивчення лише фізіологічних параметрів
сперми плідників не забезпечує повноцінної оцінки запліднювальної здатності
сперматозоїдів сільськогосподарських тварин. Завершальна оцінка здатності
сперматозоїдів до запліднення можлива на підставі результатів штучного осіменіння,
що вимагає великих витрат і тривалості в часі [3, 4, 5].
Нині застосовуються сучасні автоматизовані аналізатори якості сперми
сільськогосподарських тварин багатьох фірм, які визначають протягом 1 хв. основні
параметри – загальну концентрацію гамет, їх рухливість, концентрацію рухливих
сперматозоїдів, концентрацію з прямолінійно-поступальним рухом, середню швидкість
сперматозоїдів, розрахунок кратності розбавлення для підготовки доз («Гамета-Агро»,
www.gameta.ru). Також аналізатори автоматично розраховують кількість гамет із
нормальної морфологією, число нерухомих клітин і ін. («SFA – 500», www.biola.ru,
www.labmetod.ru). Рекламуючи автоматизовані аналізатори якості сперми, виробники
наголошують на мінімальних вимогах до знань оператора, який працює з ними.
Необхідно поєднувати для детального розуміння закономірностей ефективної оцінки
запліднювальної здатності сперми плідників загальнобіологічні знання
закономірностей ембріонального розвитку тварин і їх відтворювальної здатності [6, 7].
До найбільш поширених методів оцінки якості сперми відносяться візуальна
оцінка морфології, рухливості, концентрації і виживання сперматозоїдів, виявлення
кількості живих та нежиттєздатних (мертвих, з коливальним рухом) сперміїв після
забарвлення сперми розчином еозина. Недоліком багатьох методів є суб’єктивність при
вимірюваннях. У зв’язку з цим виникла необхідність пошуку нових ефективних методів
дослідження показників сперми [8, 9].
Для визначення запліднювальної здатності в умовах in vitro використовують
методи гетерологічного і гомологічного запліднення. При гетерологічному заплідненні
використовують ооцити золотистого хом'яка [10, 11], що також не дає повної оцінки
|