Изменения гидратации при образовании комплексов ДНК-лиганд по данным диэлектрометрии

Для вивчення взаємодiї ДНК з лiгандами пропонується використовувати дiелектричнi вимiрювання в мм дiапазонi. Проведено вимiрювання комплексної дiелектричної проникностi розчинiв ДНК та розчинiв комплексiв ДНК з кофеїном, путресцином i профлавiном. Показано, що утворення комплексiв супроводжується зм...

Повний опис

Збережено в:
Бібліографічні деталі
Опубліковано в: :Доповіді НАН України
Дата:2010
Автори: Кашпур, В.А., Хорунжая, О.В., Малеев, В.Я.
Формат: Стаття
Мова:Російська
Опубліковано: Видавничий дім "Академперіодика" НАН України 2010
Теми:
Онлайн доступ:https://nasplib.isofts.kiev.ua/handle/123456789/29895
Теги: Додати тег
Немає тегів, Будьте першим, хто поставить тег для цього запису!
Назва журналу:Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine
Цитувати:Изменения гидратации при образовании комплексов ДНК-лиганд по данным диэлектрометрии / В.А. Кашпур, О.В. Хорунжая, В.Я. Малеев // Доп. НАН України. — 2010. — № 7. — С. 170-175. — Бібліогр.: 15 назв. — рос.

Репозитарії

Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine
_version_ 1860239391388073984
author Кашпур, В.А.
Хорунжая, О.В.
Малеев, В.Я.
author_facet Кашпур, В.А.
Хорунжая, О.В.
Малеев, В.Я.
citation_txt Изменения гидратации при образовании комплексов ДНК-лиганд по данным диэлектрометрии / В.А. Кашпур, О.В. Хорунжая, В.Я. Малеев // Доп. НАН України. — 2010. — № 7. — С. 170-175. — Бібліогр.: 15 назв. — рос.
collection DSpace DC
container_title Доповіді НАН України
description Для вивчення взаємодiї ДНК з лiгандами пропонується використовувати дiелектричнi вимiрювання в мм дiапазонi. Проведено вимiрювання комплексної дiелектричної проникностi розчинiв ДНК та розчинiв комплексiв ДНК з кофеїном, путресцином i профлавiном. Показано, що утворення комплексiв супроводжується змiною дiелектричних параметрiв та гiдратацiї. The dielectric method in the millimeter range is proposed to study the interaction of nucleic acids with ligands. The measurements of complex dielectric permittivity for solutions of DNA and complexes of DNA with caffeine, putrescine, and proflavine have been carried out. It is shown that the process of complex formation is accompanied by changes of dielectric parameters, as well as by changes of a hydration level.
first_indexed 2025-12-07T18:28:23Z
format Article
fulltext оповiдi НАЦIОНАЛЬНОЇ АКАДЕМIЇ НАУК УКРАЇНИ 7 • 2010 БIОФIЗИКА УДК 577.323 © 2010 В.А. Кашпур, О. В. Хорунжая, В.Я. Малеев Изменения гидратации при образовании комплексов ДНК-лиганд по данным диэлектрометрии (Представлено членом-корреспондентом НАН Украины Д. Н. Говоруном) Для вивчення взаємодiї ДНК з лiгандами пропонується використовувати дiелектричнi вимiрювання в мм дiапазонi. Проведено вимiрювання комплексної дiелектричної проник- ностi розчинiв ДНК та розчинiв комплексiв ДНК з кофеїном, путресцином i профлавi- ном. Показано, що утворення комплексiв супроводжується змiною дiелектричних пара- метрiв та гiдратацiї. В связи с разработкой новых лекарственных препаратов и стремлением к их направленному синтезу представляет интерес изучение молекулярных механизмов действия биологически активных соединений (БАВ). Действие многих БАВ вызвано их связыванием с ДНК. Ва- жнейшим и в то же время малоизученным фактором, влияющим на формирование комп- лексов ДНК — БАВ, является гидратация. Известно, что термодинамика комплексообра- зования зависит от состояния воды столь же значительно, как и от ионной силы, pH и тем- пературы [1]. Гидратация ДНК и комплексов ДНК-лиганд изучалась во многих работах. Тем не менее, пока нет достаточно полного понимания этого явления. Так, с помощью рентгеноструктур- ного анализа подробно описано состояние воды в кристаллах ДНК, но гидратные структуры в кристалле и в растворе могут заметно отличаться. Для оценки изменений гидратации при комплексообразовании применялись также методы волюмометрии и осмотического стресса, однако эти методы часто дают противоречивые результаты [2]. Очень сложным явлением оказывается гидратация и для молекулярного моделирования, вследствие чего результаты компьютерных расчетов зависят от методологии и используемого силового поля. В связи с этим для выявления изменений гидратации, сопровождающих образование комплексов ДНК — БАВ, мы предлагаем использовать измерения комплексной диэле- ктрической проницаемости ε∗ = ε′ + iε′′ (КДП) в области крайне высоких частот (КВЧ): 30–100 ГГц (диапазон миллиметровых длин волн). Хотя микроволновые измерения в био- физике проводятся уже довольно давно, с такой целью они ранее не применялись. 170 ISSN 1025-6415 Reports of the National Academy of Sciences of Ukraine, 2010, №7 Рис. 1. Структурная формула молекул: кофеина (а); путресцина (б ); профлавина гидрохлорида (в) Диэлектрический метод основан на том факте, что вследствие взаимодействия с ДНК подвижность молекул воды в гидратной оболочке макромолекулы значительно меньше, чем подвижность молекул обычной (свободной) воды. Поэтому диполи связанной воды не мо- гут поворачиваться в КВЧ поле — для них время релаксации τ составляет ∼ 10−9 с (пик поглощения при ∼ 100 МГц). Но молекулы свободной воды еще в состоянии вращаться — для них τ ∼ 10−11с (пик поглощения при ∼ 17 ГГц) [3]. Поэтому в мм диапазоне КДП свя- занной воды обусловлена только малыми величинами электронной и атомной поляризации, в то время как в КДП свободной воды дополнительный — гораздо больший — вклад вносит ориентационная составляющая. Тогда, определяя “связанную воду” как такую, у которой частоты дипольной релаксации значительно меньше аналогичных частот свободной воды, мы можем с помощью измерений в мм диапазоне разницы между КДП воды и раствора δε∗ охарактеризовать степень гидратации биомолекул [4]. Отметим, что оценка гидратации на основе измерений в более низкочастотной области затруднительна, поскольку в ней (но не в области КВЧ) находятся также зоны релаксации различных видов поляризации в био- молекулах. В настоящей работе мы приводим результаты КВЧ диэлектрометрии комплексов ДНК из тимуса теленка с тремя БАВ: кофеином, путресцином (дигидрохлорид) и профлавином (гидрохлорид) (рис. 1, а, б, в). Все препараты получены от фирмы “Sigma”. Комплексообра- зование с требуемым соотношением молей фосфатных групп ДНК к молям лиганда (P/D) осуществляли многократным добавлением к раствору ДНК небольших объемов растворов лиганда. Концентрации k комплексов составляли ∼ 0,6–0,8 %. При таких концентрациях отличие между КДП воды и раствора или, тем более, между проницаемостями раствора комплекса и растворов его компонентов составляет менее 1% от значения ε∗ воды, так что δε∗ является малой разницей двух больших величин. Поэто- му нами используется оригинальный дифференциальный метод [4], позволяющий в области КВЧ определять даже небольшие отличия между проницаемостями двух жидких образцов. Непосредственно находятся разности ∆α и ∆β между известными коэффициентами зату- хания α и фазовой постоянной β эталона (воды) и аналогичными параметрами образцов. Из них вычисляются соответствующие разности ∆ε′ и ∆ε′′. Вклад в ε′′ (в мм диапазоне небольшой) компоненты δε′′, обусловленной наличием в образцах ионов, учитывается с по- мощью измерения электропроводности σ: δε′′ = σλ/c, где c — скорость света. Рабочая длина волны λ составляет 7,6 мм (частота 39,5 ГГц), температура — 23 ◦С. Необходимые значе- ния α, β, ε′ и ε′′ воды при этих условиях рассчитаны на основании известных опытных данных и интерполяционной схемы [5]: α = 2,75; β = 5,13; ε′ = 18,8; ε′′ = 28,2. Измерения проводятся многократно, полученные данные усредняются. Так как в области КВЧ ε′ и ε′′ воды зависят от частоты, то целесообразно описывать диэлектрические свойства образцов с помощью параметров теории полярных жидкостей ISSN 1025-6415 Доповiдi Нацiональної академiї наук України, 2010, №7 171 Дебая: εs (низкочастотный предел ε′), ε∞ (высокочастотный предел ε′) и λs (релаксацион- ная длина, λs = 2πτ c). В этой теории, которая с высокой точностью справедлива как для воды, так и для водных растворов биомолекул [3, 5], значения εs и λs однозначно связаны с ε′ и ε′′: εs = ε′ + ε′′2/(ε′ − ε∞) и λs = λε′′/(ε′ − ε∞). В табл. 1 показаны результаты диэлектрометрии растворов ДНК, кофеина (К), путре- сцина (Путр) и профлавина (Пф), а также комплексов ДНК — кофеин (интактного и по- двергнутого гамма-облучению (Кp)), ДНК — путресцин и ДНК — профлавин. Декремен- ты ∆εs и ∆λs являются разностями параметров εs и λs воды и образцов, а величины ∆εs* — удельными декрементами: ∆ε∗ s = ∆εs/k. Для воды εs = 79,4 и λs = 16,3 (при 23 ◦C). По- грешность определения разностей ∆α, ∆β, ∆ε′′, ∆ε′′ и ∆εs составляет ±0,0005 (Нп/мм), ±0,0003 (рад/мм), ±0,005, ±0,01 и ±0,04, соответственно. В комплексах ДНК — кофеин величина P/D составляет 1,5, ионная сила — 0,08 М NaCl. Как следует из табл. 1, декремент комплекса не является аддитивной суммой декремен- тов компонентов. Действительно, при указанном P/D следует ожидать, что разность ∆ε∗ s комплекса будет равной 1,6. Однако экспериментальное значение составляет лишь 1,45, т. е. меньше на ∼ 10%. Поскольку в области КВЧ нет полос поглощения ДНК [6], то отли- чие должно объясняться увеличением диэлектрической проницаемости растворителя, что указывает на уменьшение количества связанной воды. Наблюдаемая дегидратация вызва- на, по-видимому, частичной заменой связей ДНК — вода и кофеин — вода на связь ДНК — кофеин. Соответствующее изменение энергии должно приводить к дополнительной стаби- лизации комплекса. Для количественной оценки гидратационных эффектов можно использовать тот факт, что в мм диапазоне биомолекулы вместе со своей гидратной оболочкой являются вкра- плениями с низкими проницаемостями (соответственно ε∞б и ε∞в), определяемыми только электронной и атомной поляризациями, в среде с высокой проницаемостью εs (εs ≈ 80 для воды). Проницаемость ε∞б ДНК (и лигандов) составляет 4 [7], а проницаемость ε∞в связан- ной воды — 5,7 (то же значение, что и ε∞ воды [5]). Полагая, как и ранее [4], что в случае используемых малых концентраций уменьшение ∆εs проницаемости раствора по сравне- нию с проницаемостью растворителя пропорционально удельному парциальному объему биомолекул v и объему связанной воды ω, мы можем записать ∆εs = pk[(εs − ε∞б)v + (εs − ε∞в)ω], (1) где p — коэффициент пропорциональности. Так как для воды объем и масса численно совпадают, то ω является также числом граммов связанной воды на 1 г биомолекулы. Таблица 1. Диэлектрические параметры и гидратация растворов ДНК, БАВ и комплексов ДНК — БАВ Параметр ДНК Кофеин ДНК — К ДНК — Кр Путр ДНК — Путр Профла- вин ДНК — Пф k, % 0,64 0,8 0,87 0,87 3,47 0,66 1,94 0,62 ∆α 0,014 0,021 0,019 0,021 0,016 0,015 0,043 0,0165 ∆β 0,0115 0,023 0,022 0,024 0,084 0,029 0,0505 0,0155 ∆ε ′ 0,04 0,01 0,01 0,015 0,765 0,215 0,03 0,07 ∆ε ′′ 0,29 0,03 0,04 0,04 3,44 0,4 1,3 0,35 λs, мм 16,2 16,2 16,2 16,2 15,2 16,3 15,9 16,2 ∆εs 1,1 1,05 1,25 1,30 5 0,95 3,1 1,3 ∆ε ∗ s 1,7 1,3 1,45 1,5 1,45 1,45 1,6 2 n 16 4 16 16 4–5 12–13 7–8 20 172 ISSN 1025-6415 Reports of the National Academy of Sciences of Ukraine, 2010, №7 Степень гидратации n ДНК составляет, по данным рентгеноструктурного анализа, ИК спектроскопии и калориметрии, от 11 до 20 молекул воды на нуклеотид [8]. Нами при- нята средняя величина 16 молекул, что соответствует значению 1,58 для коэффициента p (при k = 0,63% и ∆εs = 1,09). Отметим, что с другой стороны 1,58 является средним ме- жду значениями p, которые вычислены в теории смеси диэлектриков при рассмотрении двух предельных идеализированных случаев: вкраплений в виде сферы (p = 1,50) и в виде цилиндра (p = 1,66) [9]. В табл. 1 число n выражает количество молекул связанной воды на молекулу лиган- да или на нуклеотид (для ДНК или комплекса). Точность n, вычисленная из погреш- ностей ∆α и ∆β, составляет одну молекулу. Объем v кофеина (как и других лигандов) определялся нами с помощью пикнометра. Расчет показывает, что на молекулу кофеи- на (v = 0,74) приходится ∼ 4 молекулы воды. С этим значением согласуется число во- дородных связей, которые могут образовать обе группы C=O и неметилированный атом азота. Из соотношения (1) также следует, что в системе ДНК — кофеин с каждым нуклеотидом связано ∼ 16 молекул воды. Но при аддитивном сложении чисел гидратации компонентов и с учетом того, что P/D = 1,5, следует ожидать, что для комплекса n ≈ 19. Таким образом, согласно диэлектрическим измерениям, комплексообразование сопровождается уменьше- нием степени гидратации нуклеиновой кислоты на ∼ 3 молекулы на нуклеотид, т. е. на ∼ ∼ 20%. Обнаруженный эффект коррелирует с изменениями в ИК области, указывающими на взаимодействие кофеина с такими гидратно-активными сайтами ДНК, как группы PO− 2 и атомы оснований: N7 (аденин и гуанин) и O2 (тимин) [10]. Поскольку кофеин обладает антимутагенной и антиоксидантной способностями [11], на- ми исследовано также влияние на комплекс гамма-излучения. Ранее, при изучении раствора чистой ДНК, мы обнаружили заметную послерадиационную дегидратацию [12]. Облучение раствора комплекса, а также контрольного раствора нуклеиновой кислоты проводили гам- ма-квантами 60Со; поглощенная доза составила 800 Гр. Видно (четвертая колонка табл. 1), что облучение практически не влияет на декремент. Из этого следует, что уменьшения коли- чества связанной воды, т. е. разрушения водной оболочки, также не происходит. В условиях настоящей работы отсутствуют возможности для действия механизма репарации. Поэто- му полученный результат согласуется с представлением, согласно которому протекторные свойства кофеина обусловлены его взаимодействием с послерадиационными свободными радикалами, приводящим к образованию из кофеина 1,3,7-триметилмочевой кислоты [11]. Наблюдаемая в работе слабая тенденция к послерадиационному возрастанию декремента вызвана, возможно, наличием в составе указанной кислоты дополнительной, по сравнению с кофеином, OH группы. Другим исследовавшимся лигандом являлся путресцин — один из важнейших биоло- гических полиаминов. В изучавшихся комплексах P/D = 5, ионная сила — 0,025 M NaCl. Из табл. 1 следует, что, как и в случае кофеина, декремент ∆εs комплекса путресцина не является аддитивной суммой декрементов компонентов. Так как взаимодействие с полиа- минами не влияет на основные элементы структуры ДНК [13], то уменьшение декремента является свидетельством происходящей дегидратации. При оценке гидратации нами принято во внимание, что препарат путресцина является гидрохлоридом, и кислота HCl не только обусловливает электропроводность растворов, но и понижает их проницаемость. Поэтому из измеренной разницы ∆εэксп s вычтен вклад HCl (с учетом известной КДП водных растворов кислоты). ISSN 1025-6415 Доповiдi Нацiональної академiї наук України, 2010, №7 173 Согласно расчету (v = 0,848), гидратация путресцина составляет 4–5 молекул воды, что соответствует количеству возможных водородных связей, в которых благодаря двум группам NH2 способен участвовать путресцин. В комплексе ДНК – путресцин каждый нук- леотид связывает 12–13 молекул воды. Поскольку одна молекула лиганда приходится на пять нуклеотидов, то в случае аддитивности суммарная гидратация одного нуклеотида должна быть ∼ 17 молекул воды. Таким образом, при комплексообразовании ∼ 25% воды, ранее связанной с компонентами, становится свободной. В настоящее время имеются разные взгляды на характер взаимодействия ДНК с поли- аминами. Согласно одному подходу, существует лишь электростатическое взаимодействие между группами NH+ 3 лиганда и группами PO− 2 ДНК. По другому представлению, лиганд взаимодействует не только с фосфатными группами, но и с основаниями [13]. Уменьшение декремента при комплексообразовании (и аналогичное уменьшение степе- ни гидратации) говорит о том, что между ДНК и поликатионом путресцином действуют не только кулоновские силы. Действительно, катион Na+, например, при электростатиче- ском взаимодействии с фосфатными и другими сайтами ДНК притягивает и координирует молекулы воды, формируя гидратную структуру, аналогичную той, которая существует во- круг этого иона в чистой воде [14]. Более того, образуются дополнительные, мостиковые, молекулы воды. Поэтому наблюдаемая дегидратация обусловлена, по-видимому, тем, что в комплексе происходит не только электростатическое взаимодействие, но и вместо части связей путресцин — вода и ДНК — вода формируются связи ДНК — путресцин. Однако с основаниями связано не более одной-двух молекул воды. Фактором, способ- ствующим значительной величине дегидратации, может быть гидрофобное взаимодействие. Поэтому диэлектрическим измерениям более соответствуют те модели, в которых углеводо- родные группы полиаминов вытесняют растворитель из малого желобка, делая молекулы воды более подвижными [14]. Диэлектрические измерения изменения гидратации при образовании комплекса между профлавином и ДНК представляют интерес вследствие противоречивости сведений об этом эффекте. Основным способом взаимодействия профлавина с ДНК является интеркаля- ция — внедрение хромофора между парами оснований. Согласно распространенной точке зрения, интеркаляция сопровождается освобождением части молекул воды, связанных с ма- кромолекулой [15]. Однако при использовании осмометрического метода было обнаружено, что система ДНК — профлавин более гидратирована, чем ДНК и лиганд в свободном состоянии [1]. В изучавшихся нами комплексах ДНК — профлавин P/D = 8, ионная сила — 0,025 M NaCl. Из табл. 1 видно, что декремент ∆ε∗ s комплекса не является аддитивной суммой декрементов компонентов: он больше на ∼ 15% (при P/D = 8 следует ожидать, что ∆ε∗ s комплекса составляет ∼ 1,7, а не 2). Так как взаимодействие с интеркаляторами не приводит к уменьшению объема ДНК (наблюдается лишь частичное раскручивание цепей макромолекулы и удлинение цепей [15]), то обнаруженный диэлектрический эффект может указывать на образование вокруг ДНК дополнительных связанных молекул воды. Расчет (при v = 0,857) по соотношению (1) показывает, что с молекулой профлави- на связано 7–8 молекул воды. Такая величина близка к числу водородных связей, кото- рые способны образовать две NH2 группы и группу NH+ лиганда. Гидратация комплек- са ДНК — профлавин оказывается равной ∼ 20 молекулам воды на нуклеотид. Но при аддитивном сложении и учете того, что одна молекула лиганда приходится на 10 нук- леотидов, для комплекса должно быть n ≈ 17. Следовательно, можно полагать, что при 174 ISSN 1025-6415 Reports of the National Academy of Sciences of Ukraine, 2010, №7 комплексообразовании гидратация ДНК увеличивается на ∼ 3 молекулы на нуклеотид (на ∼ 15–20%). Таким образом, полученные результаты свидетельствуют о том, что формирование комп- лекса ДНК — БАВ в водной среде определяется не только взаимодействием между ком- понентами, но и взаимодействием с окружающей связанной водой. 1. Qu X., Chaires J. B. Hydration Changes for DNA Intercalation Reactions // J. Am. Chem. Soc. – 2001. – 123. – P. 1–7. 2. Shimizu S. Estimating hydration changes upon biomolecular reactions from osmotic stress, high pressure, and preferential hydration experiments // PNAS. – 2004. – 101. – P. 1195–1199. 3. Umehara T., Kuwabara S., Mashimo S. et al. Study on Hydration of B –, A –, and Z-DNA // Biopolymers. – 1990. – 30. – P. 649–656. 4. Кашпур В.А., Малеев В.Я., Щеголева Т.Ю. Исследование гидратации глобулярных белков диффе- ренциальным диэлектрометрическим методом // Мол. биология. – 1976. – 10. – С. 568–575. 5. Ellison W. J., Lamkaouchi K., Moreau J.-M. Water: A dielectric reference // J. Mol. Liquids. – 1996. – 68. – P. 171–279. 6. Maleev V.Ya., Kashpur V.A., Glibitsky G.M. Does DNA Absorb Microwave Energy? // Biopolymers. – 1987. – 26. – P. 1965. – 1970. 7. Globus T.R., Woolard D.L., Khromova T. et al. THz-Spectroscopy of Biological Molecules // J. Biol. Physics. – 2003. – 29. – P. 89–100. 8. Зенгер В. Принципы структурной организации нуклеиновых кислот. – Москва: Мир. 1987. – 584 с. 9. Buchanan T. J., Haggis G.H., Hasted J. B. The dielectric estimation of protein hydration // Proc. Roy. Soc. – 1952. – A213. – P. 379–391. 10. Nafisi S., Manouchehri F., Tajmir-Riahi H.-A. Structural features of DNA interaction with caffeine and theophylline // J. Mol. Structure. – 2008. – 875. – P. 392–399. 11. Telo J. P., Vieira Abel J. S. C. Mechanism of free radical oxidation of caffeine in aqueous solution // J. Chem. Soc. Perkin. Trans. – 1997. – 2. – P. 1755–1757. 12. Кашпур В.А., Дубовицкая О.В., Красницкая А.А., Малеев В.Я. Влияние γ-облучения на состояние ион-гидратной оболочки ДНК // Вiсн. Харк. ун-ту. Бiофiз. вiсник. – 1998. – 1. – С. 111–115. 13. Ruiz-Chica J., Medina M. Fourier Transform Raman Study of the Structural Specificities on the Interaction between DNA and Polyamines // Bioph. J. – 2001. – 80. – P. 449–454. 14. Korolev N., Lyubartsev A. P., Laaksonen A. On the Competition between Water, Sodium Ions, and Spermi- ne in Binding to DNA // Ibid. – 2002. – 82. – P. 2860–2875. 15. Костюков В.В., Хомутова Н.М., Лантушенко А.О., Евстигнеев М.П. Гидрофобный вклад в сво- бодную энергию // Биополимеры и клетка. – 2009. – 25, № 2. – С. 133–141. Поступило в редакцию 13.11.2009Институт радиофизики и электроники им. А.Я. Усикова НАН Украины, Харьков V.A. Kashpur, O.V. Khorunzhaya, V. Ya. Maleev Hydration changes in complexation of DNA with ligands as revealed by dielectrometry The dielectric method in the millimeter range is proposed to study the interaction of nucleic acids with ligands. The measurements of complex dielectric permittivity for solutions of DNA and complexes of DNA with caffeine, putrescine, and proflavine have been carried out. It is shown that the process of complex formation is accompanied by changes of dielectric parameters, as well as by changes of a hydration level. ISSN 1025-6415 Доповiдi Нацiональної академiї наук України, 2010, №7 175
id nasplib_isofts_kiev_ua-123456789-29895
institution Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine
issn 1025-6415
language Russian
last_indexed 2025-12-07T18:28:23Z
publishDate 2010
publisher Видавничий дім "Академперіодика" НАН України
record_format dspace
spelling Кашпур, В.А.
Хорунжая, О.В.
Малеев, В.Я.
2012-01-11T16:24:07Z
2012-01-11T16:24:07Z
2010
Изменения гидратации при образовании комплексов ДНК-лиганд по данным диэлектрометрии / В.А. Кашпур, О.В. Хорунжая, В.Я. Малеев // Доп. НАН України. — 2010. — № 7. — С. 170-175. — Бібліогр.: 15 назв. — рос.
1025-6415
https://nasplib.isofts.kiev.ua/handle/123456789/29895
577.323
Для вивчення взаємодiї ДНК з лiгандами пропонується використовувати дiелектричнi вимiрювання в мм дiапазонi. Проведено вимiрювання комплексної дiелектричної проникностi розчинiв ДНК та розчинiв комплексiв ДНК з кофеїном, путресцином i профлавiном. Показано, що утворення комплексiв супроводжується змiною дiелектричних параметрiв та гiдратацiї.
The dielectric method in the millimeter range is proposed to study the interaction of nucleic acids with ligands. The measurements of complex dielectric permittivity for solutions of DNA and complexes of DNA with caffeine, putrescine, and proflavine have been carried out. It is shown that the process of complex formation is accompanied by changes of dielectric parameters, as well as by changes of a hydration level.
ru
Видавничий дім "Академперіодика" НАН України
Доповіді НАН України
Біофізика
Изменения гидратации при образовании комплексов ДНК-лиганд по данным диэлектрометрии
Hydration changes in complexation of DNA with ligands as revealed by dielectrometry
Article
published earlier
spellingShingle Изменения гидратации при образовании комплексов ДНК-лиганд по данным диэлектрометрии
Кашпур, В.А.
Хорунжая, О.В.
Малеев, В.Я.
Біофізика
title Изменения гидратации при образовании комплексов ДНК-лиганд по данным диэлектрометрии
title_alt Hydration changes in complexation of DNA with ligands as revealed by dielectrometry
title_full Изменения гидратации при образовании комплексов ДНК-лиганд по данным диэлектрометрии
title_fullStr Изменения гидратации при образовании комплексов ДНК-лиганд по данным диэлектрометрии
title_full_unstemmed Изменения гидратации при образовании комплексов ДНК-лиганд по данным диэлектрометрии
title_short Изменения гидратации при образовании комплексов ДНК-лиганд по данным диэлектрометрии
title_sort изменения гидратации при образовании комплексов днк-лиганд по данным диэлектрометрии
topic Біофізика
topic_facet Біофізика
url https://nasplib.isofts.kiev.ua/handle/123456789/29895
work_keys_str_mv AT kašpurva izmeneniâgidrataciipriobrazovaniikompleksovdnkligandpodannymdiélektrometrii
AT horunžaâov izmeneniâgidrataciipriobrazovaniikompleksovdnkligandpodannymdiélektrometrii
AT maleevvâ izmeneniâgidrataciipriobrazovaniikompleksovdnkligandpodannymdiélektrometrii
AT kašpurva hydrationchangesincomplexationofdnawithligandsasrevealedbydielectrometry
AT horunžaâov hydrationchangesincomplexationofdnawithligandsasrevealedbydielectrometry
AT maleevvâ hydrationchangesincomplexationofdnawithligandsasrevealedbydielectrometry