Цитопротекторна дія нікотинаміду на бета-клітини підшлункової залози

Досліджено вплив нікотинаміду (NAm) на життєдіяльність ізольованих бета-клітин підшлункової залози щурів in vitro. Було виявлено захисну дію NAm на виживання бета-клітин на фоні цитотоксичних ефектів стрептозотоцину, що, імовірно, зумовлена прямою модуляторною дією NAm на PARP-залежні процеси, які з...

Ausführliche Beschreibung

Gespeichert in:
Bibliographische Detailangaben
Veröffentlicht in:Доповіді НАН України
Datum:2010
Hauptverfasser: Шиманський, І.О., Донченко, Г.В., Трофимова, І.М., Гуріна, Н.М., Супрун, С.М., Клименко, А.П., Овчіннікова, Е.В., Кучмеровська, Т.М.
Format: Artikel
Sprache:Ukrainisch
Veröffentlicht: Видавничий дім "Академперіодика" НАН України 2010
Schlagworte:
Online Zugang:https://nasplib.isofts.kiev.ua/handle/123456789/30408
Tags: Tag hinzufügen
Keine Tags, Fügen Sie den ersten Tag hinzu!
Назва журналу:Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine
Zitieren:Цитопротекторна дія нікотинаміду на бета-клітини підшлункової залози / І.О. Шиманський, Г.В. Донченко, І.М. Трофимова, Н.М. Гуріна, С.М. Супрун, А.П. Клименко, Е.В. Овчіннікова, Т.М. Кучмеровська // Доп. НАН України. — 2010. — № 9. — С. 156-161. — Бібліогр.: 15 назв. — укр.

Institution

Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine
_version_ 1860086505725231104
author Шиманський, І.О.
Донченко, Г.В.
Трофимова, І.М.
Гуріна, Н.М.
Супрун, С.М.
Клименко, А.П.
Овчіннікова, Е.В.
Кучмеровська, Т.М.
author_facet Шиманський, І.О.
Донченко, Г.В.
Трофимова, І.М.
Гуріна, Н.М.
Супрун, С.М.
Клименко, А.П.
Овчіннікова, Е.В.
Кучмеровська, Т.М.
citation_txt Цитопротекторна дія нікотинаміду на бета-клітини підшлункової залози / І.О. Шиманський, Г.В. Донченко, І.М. Трофимова, Н.М. Гуріна, С.М. Супрун, А.П. Клименко, Е.В. Овчіннікова, Т.М. Кучмеровська // Доп. НАН України. — 2010. — № 9. — С. 156-161. — Бібліогр.: 15 назв. — укр.
collection DSpace DC
container_title Доповіді НАН України
description Досліджено вплив нікотинаміду (NAm) на життєдіяльність ізольованих бета-клітин підшлункової залози щурів in vitro. Було виявлено захисну дію NAm на виживання бета-клітин на фоні цитотоксичних ефектів стрептозотоцину, що, імовірно, зумовлена прямою модуляторною дією NAm на PARP-залежні процеси, які залучені до механізму загибелі клітин, а також і опосередкованими метаболічними та антиоксидантними ефектами сполуки. We have investigated the influence of nicotinamide (NAm) on the survival of isolated rat pancreatic beta-cells in vitro. It was found that the exposure of beta-cells to various concentrations of nicotinamide strongly protects them against cytotoxic effects of streptozotocin that results in their better time-dependent survival. Most likely, these effects can be associated with the direct modulatory action of NAm on important effector mechanisms involved in cell death, including PARP-dependent processes, or/and indirectly, through metabolic and antioxidant effects of the compound.
first_indexed 2025-12-07T17:20:12Z
format Article
fulltext УДК 577.164.3:612.349.7 © 2010 I.О. Шиманський, член-кореспондент НАН України Г. В. Донченко, I.М. Трофимова, Н. М. Гурiна, С. М. Супрун, А. П. Клименко, Е.В. Овчiннiкова, Т. М. Кучмеровська Цитопротекторна дiя нiкотинамiду на бета-клiтини пiдшлункової залози Дослiджено вплив нiкотинамiду (NAm) на життєдiяльнiсть iзольованих бета-клiтин пiдшлункової залози щурiв in vitro. Було виявлено захисну дiю NAm на виживання бе- та-клiтин на фонi цитотоксичних ефектiв стрептозотоцину, що, iмовiрно, зумовлена прямою модуляторною дiєю NAm на PARP-залежнi процеси, якi залученi до механiзму загибелi клiтин, а також i опосередкованими метаболiчними та антиоксидантними ефектами сполуки. Вiдомо, що нiкотинамiд (NAm, одна iз форм вiтамiну В3) є важливою природною сполу- кою з широким спектром бiологiчної дiї [1]. Серед численних функцiй NAm слiд вiдзначи- ти, зокрема, його здатнiсть як самостiйно, так i за участю бiологiчно активних похiдних модулювати шляхи обмiну та клiтинної сигналiзацiї, якi тiсно пов’язанi iз забезпеченням нормальної життєдiяльностi клiтин та з їхньою загибеллю. Демонструючи тiсну взаємо- дiю коферментних та некоферментних функцiй в реалiзацiї механiзмiв своєї бiологiчної дiї, NAm здатен гальмувати оксидативний стрес, блокувати запальнi процеси в тканинах, деградацiю ДНК та вiдiгравати цитопротекторну роль при рiзних захворюваннях. Один з основних аспектiв реалiзацiї захисних ефектiв Nam полягає у пригнiченнi ензиматичного NAD+-залежного ADP-рибозилювання функцiонально важливих протеїнiв, тобто процесу, що активується в результатi вiльнорадикального та окиснювального пошкодження ДНК [2]. Вiтамiн В3 та його бiоактивнi похiднi можуть знайти потенцiйне застосування в корек- цiї дефiциту iнсулiну, iнсулiнорезистентностi та пов’язаних з нею метаболiчних порушень, а також з метою лiкування дiабетичних ускладнень. Зокрема, нами показано, що NАm та похiднi вiтамiну В3 проявляють нейротропну дiю при дiабетичнiй невропатiї [2]. Як вiдомо [1, 3], цукровий дiабет 1 типу характеризується прогресуючою автоiмунною деструкцiєю бета-клiтин пiдшлункової залози, яка призводить до дефiциту iнсулiну. З iншо- го боку, порушення секрецiї iнсулiну бета-клiтинами у вiдповiдь на дiю глюкози, зниження тканинної чутливостi до гормону або одночасне поєднання цих процесiв є патогенетичною основою дiабету 2 типу [1, 5]. При цьому слiд вiдзначити, що дисфункцiя iнсулярного апара- ту, розвиток iнсулiнорезистентностi та ускладнень цукрового дiабету можуть бути результа- том окисидативного стресу в клiтинах [6]. У свою чергу, гiперглiкемiя сприяє iнтенсифiкацiї утворення активних кисневих метаболiтiв — супероксид анiон-радикали, гiдроген пероксид, синглетний кисень, оксид азоту, пероксинiтрит [1, 4] — у багатьох типах клiтин, у тому числi i в продуктующих iнсулiн [1, 6]. Їх надмiрне утворення може призводити до пошкодження та загибелi клiтин внаслiдок розвитку оксидативного стресу [7, 8]. У зв’язку з зазначеним вище, дослiдження функцiональної активностi бета-клiтин на експериментальних моделях, якi вiдображають умови їхньої життєдiяльностi при цукрово- му дiабетi, а також пошук сполук, якi здатнi нормалiзувати функцiї цих клiтин, є акту- альною проблемою. 156 ISSN 1025-6415 Reports of the National Academy of Sciences of Ukraine, 2010, №9 У зв’язку з цим, метою роботи було оцiнити життєздатнiсть iзольованих бета-клiтин при рiзних концентрацiях глюкози in vitro та схарактеризувати можливiсть протекторної дiї NAm на iндуковану стрептозотоцином (СТЗ) загибель цих клiтин. Дослiдження проводили на щурах-самцях лiнiї Вiстар масою 140–170 г. Пiсля декапiта- цiї тварин було швидко вилучено пiдшлункову залозу, з якої з використанням колагенази видiляли бета-клiтини острiвцiв Лангерганса, модифiкуючи методику [9]. Залозу помiща- ли в буферний розчин Кребс–Рiнгера pH 7,3, що мiстив HEPES (КРХ). Пiсля промивки та вiдокремлення вiд жирової тканини її подрiбнювали скальпелем до частинок розмiром при- близно 2 мм3 та додавали розчин колагенази. В наших експериментах оптимальнi були такi умови: концентрацiя колагенази — 2 мг/мл, температура — 37 ◦С, кiлькiсть струшувань — 2/с, час — 20 хв. Пiсля вiдмивання вiд ферменту острiвцi Лангерганса ресуспендували в iн- кубацiйному середовищi без колагенази, потiм пiсля двох центрифугувань двiчi осаджували звичайним вiдстоюванням упродовж 4–5 хв. Отриманий осад ресуспендували у свiжоприго- товленому КРХ розчинi та переносили в малi чашки. Пiд мiкроскопом (зб. 100) вiдбирали острiвцi Лангерганса за допомогою мiкропiпетки. Для видiлення бета-клiтин певну кiль- кiсть острiвцiв переносили в полiетиленовi мiкропробiрки, якi мiстили 200 мкл КРХ, та струшували на мiкрострушувачi Beckman (Model 154) протягом 10 хв. Отриманi бета-клi- тини iнкубували у середовищi RPMI-1640 з додаванням 0,1%-го БСА, антибiотикiв та вiдпо- вiдних концентрацiй дослiджуваних сполук. Iнкубування проводили у планшетах при 37 ◦С у СО2-iнкубаторi з 5%-м вмiстом СО2 та при 100%-й вологостi. Життєздатнiсть бета-клiтин оцiнювали за допомогою фарбування трипановим синiм вiдразу пiсля отримання клiтин, через 1 та 5 дiб. Нежиттєздатнi клiтини впродовж 3–5 хв нагромаджували трипановий си- нiй пiсля додавання 0,5%-го розчину цього барвника. Кiлькiсть живих та мертвих клiтин пiдраховували в камерi Горяєва. Статистичну обробку цих даних здiйснювали комп’ютер- ною програмою Microsoft Excel 2007, використовуючи стандартний критерiй t-Стьюдента для некорильованих вибiрок. Порушення метаболiзму глюкози є одним з основних факторiв, залучених до розвитку цукрового дiабету, тому важливо було оцiнити вплив глюкози на виживання бета-клiтин пiдшлункової залози в широкому дiапазонi концентрацiй (2,8; 5; 10 та 20 ммоль/л). За даними табл. 1, глюкоза при концентрацiї 10 ммоль/л найефективнiше впливала на вижи- вання клiтин. При вивченнi сумiсної дiї глюкози та NAm на життєздатнiсть клiтин встановлено, що їхня дiя найбiльш виражена за таких умов: концентрацiя глюкози 10 ммоль/л (див. табл. 1); Таблиця 1. Вплив нiкотинамiду на виживання бета-клiтин пiдшлункової залози щурiв при рiзних концен- трацiях глюкози in vitro (% живих клiтин, M ±m, n = 5) Дiючий фактор, ммоль/л Перiод iнкубування, год 24 120 Контроль (глюкоза, 5,0) 85,0± 5,2 77,4± 6,3 Глюкоза, 2,8 (73,4± 5,0)∗ (69,7± 4,8)∗ Глюкоза, 10,0 90,7± 8,3 (84,0± 9,1)∗ Глюкоза, 20,0 88,1± 6,5 (85,2± 5,8)∗ Глюкоза, 5,0 + NAm, 5,0 87,0± 6,2 (83,1± 7,6)∗ Глюкоза, 10,0 + NAm, 5,0 89,6± 7,0 (84,6± 7,2)∗ Глюкоза, 20,0 + NАm, 5,0 86,5± 5,7 (81,9± 6,9)∗ ∗Вiрогiднiсть рiзниць у порiвняннi з контролем, p < 0,05. ISSN 1025-6415 Доповiдi Нацiональної академiї наук України, 2010, №9 157 NAm 5 ммоль/л (табл. 2). Також доцiльним було з’ясувати, яким є вплив глюкози при рiз- них концентрацiях на фонi оптимальної концентрацiї NAm, однак жодного модулювального ефекту NAm при цiй концентрацiї на життєздатнiсть дослiджуваних клiтин нами не вияв- лено (див. табл. 1). Дiя NAm в обраних концентрацiях залежно вiд термiну культивування була рiзною. Так, упродовж першої доби кiлькiсть живих клiтин практично не зменшувалася (див. табл. 2). Через добу пiсля додавання NAm (5 ммоль/л) кiлькiсть живих клiтин становила 92% та зменшувалася при культивуваннi впродовж 5 дiб до 15%. Виявлено, що NАm не проявляв цитотоксичну дiю протягом доби навiть при концентрацiї 20 ммоль/л. Проте через 5 дiб його цитопротекторна дiя не зберiгалась, а при концентрацiї 15 й 20 ммоль/л, взагалi була вiдсутня, крiм того, при концентрацiї понад 20 ммоль/л зростала цитотоксичнiсть NАm (не наведено). Iнкубування бета-клiтин з такою дiабетогенною сполукою, як СТЗ при концентрацiї 5 ммоль/л, викликає їхню загибель. Нами оцiнена здатнiсть NАm проявляти цитопротек- торну дiю на життєздатнiсть бета-клiтин пiсля впливу СТЗ. Пiсля преiнкубування клiтин iз СТЗ їх вiдмивали, в середовище додавали NАm, кiнцева концентрацiя якого дорiвню- вала, ммоль/л: 0,2; 1; 2; 5; 15; 20. Термiн iнкубування — одна та п’ять дiб. Контрольнi алiквоти клiтин не мiстили NАm й СТЗ. За таких умов нами було виявлено настiльки виражену цитотоксичну дiю СТЗ, що вже через добу спостерiгали загибель близько 90% клiтин (див. табл. 2). Показано, що вплив NАm на клiтини, якi зазнали дiї СТЗ, є дозо- залежним. Як видно з представлених у табл. 2 даних, цитопротекторний вплив NАm був найефективнiшим при концентрацiї 5 ммоль/л, хоча i при концентрацiї 2 ммоль/л вiн був достатньо ефективним, про що свiдчить зменшення кiлькостi загиблих клiтин. Подiбну кар- тину ми спостерiгали при дiї 3-амiнобензамiду (данi не наведено). Однак слiд зазначити, що цитопротекторна дiя NАm на життєздатнiсть бета-клiтин зберiгалась лише протягом однiєї доби, оскiльки при подальшiй iнкубацiї з NАm його вплив був частковим, а через 5 дiб — взагалi вiдсутнiм. Таблиця 2. Концентрацiйнозалежний ефект нiкотинамiду на виживання бета-клiтин пiдшлункової залози щурiв пiсля дiї на них стрептозотоцину in vitro (% живих клiтин; M ±m, n = 5) Дiючий фактор, ммоль/л Перiод iнкубування, год 24 120 Контроль (без СТЗ та NAm) 85,0± 5,2 77,4± 6,3 NAm, 0,2 85,3± 8,1 (21,0± 1,2)∗ NAm, 1,0 87,2± 9,0 NAm, 2,0 89,6± 8,4 NAm, 5,0 92,5± 8,7 (15,4± 0,8)∗ NAm, 15,0 86,3± 7,4 NАm, 20,0 84,4± 6,8 СТЗ, 5,0 16,5± 1,0 (9,1± 0,7)∗ СТЗ, 5,0 + NAm, 0,2 (20,2± 1,3)∗ СТЗ, 5,0 + NAm, 1,0 (60,8± 4,0)∗ СТЗ, 5,0 + NAm, 2,0 (69,3± 4,8)∗ СТЗ, 5,0 + NAm, 5,0 (71,5± 5,9)∗ (17,5± 0,9)∗ СТЗ, 5,0 + NAm, 15,0 (63,7± 5,6)∗ СТЗ, 5,0 + NAm, 20,0 (59,3± 6,2)∗ ∗Вiрогiднiсть рiзниць у порiвняннi з контролем, p < 0,05. 158 ISSN 1025-6415 Reports of the National Academy of Sciences of Ukraine, 2010, №9 Таким чином, нами встановлено, що NАm може дозозалежно захищати бета-клiтини вiд цитотоксичної дiї СТЗ. За лiтературними джерелами, механiзм iндукованої СТЗ некроти- чної загибелi бета-клiтин пiдшлункової залози, а також порушення функцiонування клiтин ендотелiю, мiокардiоцитiв, реноцитiв, клiтин Шванна у вiдповiдь на високi концентрацiї глюкози та розвиток оксидативного стресу при цукровому дiабетi асоцiйованi з надактива- цiєю полi(АDP-рибозо)полiмерази (PARP) та iстотним зниженням внутрiшньоклiтинного вмiсту NAD+ та АТР. Не виключено, що механiзм цитопротекторної дiї вiтамiну РР може реалiзовуватись через регуляцiю процесiв полi-АDP-рибозилювання бiлкiв, адже, з одно- го боку, NAm є конкурентним iнгiбiтором РARP, а з iншого, як попередник бiосинтезу NAD+, — сприяє субстратному забезпеченню реакцiй за участю PARP. Саме той факт, що найкраща цитопротекторна дiя NAm реалiзується при концентрацiї 5 ммоль/л, за якої вiн є ефективним iнгiбiтором PARP, може пiдтвердити наше припущення [10]. Схожiсть захисної дiї NAm у порiвняннi з 3-амiнобензамiдом (бiльш специфiчний iнгiбiтор PARP, нiж NAm) є ще одним пiдтвердженням того, що вказаний ефект NАm здiйснюється переважно че- рез iнгiбування цього ензиму; останнiй вiдiграє iстотну роль при реалiзацiї рiзних програм загибелi клiтин. Ранiше нами було продемонстровано, що iнтенсифiкацiя пошкодження ядерної ДНК го- ловного мозку щурiв при цукровому дiабетi спричиняла активацiю PARP, що посилювало клiтинну утилiзацiю NAD+, зниження рiвня якого, у свою чергу, викликало падiння рiвня АТР [2]. Це могло супроводжуватись значним порушенням АТР-залежних процесiв та iнду- кувати загибель нервових клiтин. Виявлене нами коригування нiкотинамiдом функцiональ- но-бiохiмiчних показникiв головного мозку при цукровому дiабетi тiсно корелювало з вiд- новленням внутрiшньоклiтинного пулу NAD+, i тому не виключено, що цитопротекторна дiя NАm на бета-клiтини пiдшлункової залози значною мiрою також може реалiзовуватися через iнтенсифiкацiю бiосинтезу пiридинових динуклеотидiв, нормалiзацiю енергетичного обмiну, а також посилення антиоксидантного захисту. Той факт, що NАm здатен запобiга- ти загибелi бета-клiтин при концентрацiях значно вищих вiд тих, якi є оптимальними для бiосинтезу NAD+ (понад 5 ммоль/л), та ефективного iнгiбування процесiв полi-ADP-ри- бозилювання функцiонально важливих протеїнiв, може свiдчити про iснування й iнших додаткових механiзмiв його цитопротекторної дiї. Вiдомо, що у вiдповiдь на дiю рiзних шкiдливих чинникiв, у багатьох типах клiтин вiд- бувається iндукцiя синтезу ряду сигнальних молекул, зокрема цитокiнiв, молекул адгезiї, оксиду азоту тощо. Утворення даних медiаторiв пошкодження знаходиться пiд контролем ядерного фактора κВ (NF-κB). Було доведено: саме PARP-1, що є найбiльш поширеним ен- зимом PARP у клiтинних ядрах, дiє як спiвактиватор в опосередкованiй NF-κB транскрипцiї генiв. З огляду на це, достатньо логiчними є повiдомлення про те, що NАm володiє здатнi- стю регулювати запальнi процеси у тканинах, дiючи найбiльш iмовiрно як iнгiбiтор ензи- матичного ADP-рибозилювання функцiонально важливих протеїнiв. Було встановлено, що нiкотинамiд у терапевтичних дозах знижує утворення в острiвцях пiдшлункової залози та- ких прозапальних цитокiнiв, як iнтерлейкiн 1β, iнтерлейкiн-6, iнтерлейкiн-8, TNF-α [11, 12]. В активованих трансформуючим фактором росту β1 (TGF-β1) зiрчастих клiтинах печiнки NAm здатен гальмувати експресiю прозапальних та профiбротичних цитокiнiв (TGF-β2, IL-1β, TNF-α та хемотактичного протеїну-1 макрофагiв) [13]. Показано також його здат- нiсть знижувати ступiнь демiєлiнiзацiї нервових волокон при експериментальному алергiй- ному енцефаломiєлiтi, у патогенезi якого iстотну роль вiдiграють прозапальнi цитокiни [14]. Позитивний ефект NАm на життєздатнiсть бета-клiтин, якi зазнають впливiв патогенних ISSN 1025-6415 Доповiдi Нацiональної академiї наук України, 2010, №9 159 чинникiв, крiм того, може здiйснюватись i через безпосереднi змiни експресiї такого стре- сорного бiлка, як р53, iстотно гальмуючи її або ж запобiгаючи NAD+-залежному деацети- люванню р53, викликаному sir2α [15]. Однак конкретний механiзм, за яким реалiзується цитопротекторна дiя NАm потребує бiльш глибокого подальшого вивчення. 1. Maiese K., Morhan S.D., Chong Z. Z. Oxidative stress biology and cell injury during type 1 and type 2 diabetes mellitus // Curr. Neurovasc. Res. – 2007. – 4. – P. 63–71. 2. Kuchmerovska T., Shymanskyy I., Donchenko G. et al. Poly-ADP-ribosylation enhancement in brain cells nuclei is associated with diabetic neuropathy // J. Diabetes and Its Complicat. – 2004. – 18, No 4. – P. 198–204. 3. Akirav E., Kushner J. A., Herold K. C. Beta-cell mass and type 1 diabetes: going, going, gone? // Di- abetes. – 2008. – 57, No 11. – P. 2883–2888. 4. Purrello F., Vetri M., Gatta C. et al. Effects of high glucose on insulin secretion by isolated rat islets and purified beta-cells and possibl role of glycosylation // Ibid. – 1989. – 38. – P. 1417–1422. 5. Polonsky K. S., Sturis J., Bell G. Non-insulin-dependent diabetes mellitus: a genetically programmed failure of the beta cell to compensate for insulin resistance // N. Engl. J. Med. – 1996. – 334. – P. 777–783. 6. Kahn S. E. The relative contributions of insulin resistance and beta-cell dysfunction to the pathophysiology of Type 2 diabetes // Diabetologia. – 2003. – 46, No 1. – P. 3–19. 7. Chong Z. Z., Li F., Maiese K. Attempted Cell Cycle Induction in Post-Mitotic Neurons Occurs in Early and Late Apoptotic Programs Through Rb, E2F1, and Caspase 3 // Curr. Neurovasc. Res. – 2006. – 3. – P. 25–39. 8. De Felice F.G., Velasco P.T., Lambert M.P. et al. Abeta oligomers induce neuronal oxidative stress through an N-methyl-D-aspartate receptor-dependent mechanism that is blocked by the Alzheimer drug memantine // J. Biol. Chem. – 2007. – 282. – P. 11590–11601. 9. Wang C., Ling Z., Pipeleers D. Comparison of cellular and medium insulin and GABA content as markers for living beta-cells // Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab. – 2005. – 288, No 2. – P. E307–313. 10. Uchigata Y., Yamamoto H., Kawamura A., Okamoto H. Protection by superoxide dismutase, catalase and poly(ADP-ribose) synthetase inhibitors against alloxan – and streptozotocin-induced islet DNA strand breaks and against the inhibition of proinsulin synthesis // J. Biol. Chem. – 1982. – 257. – P. 6084–6088. 11. Moberg L., Olsson A., Berne C. et al. Nicotinamide inhibits tissue factor expression in isolated human pancreatic islets: implications for clinical islet transplantation // Transplantat. – 2003. – 76. – P. 1285–1288. 12. Ungerstedt J. S., Blomback M., Soderstrom T. Nicotinamide is a potent inhibitor of proinflammatory cytoki- nes // Clin. and Exp. Immunol. – 2003. – 131. – P. 48–52. 13. Traister A., Breitman I., Bar-Lev E. et al. Nicotinamide induces apoptosis and reduces collagen I and pro-inflammatory cytokines expression in rat hepatic stellate cells // Scand. J. Gastroenterol. – 2005. – 40. – P. 1226–1234. 14. Kaneko S., Wang J., Kaneko M. et al. Protecting axonal degeneration by increasing nicotinamide adenine dinucleotide levels in experimental autoimmune encephalomyelitis models // J. Neurosci. – 2006. – 26. – P. 9794–9804. 15. Luo J., Nikolaev A.Y., Imai S. et al. Negative control of p53 by Sir2alpha promotes cell survival under stress // Cell. – 2001. – 107. – P. 137–148. Надiйшло до редакцiї 28.01.2010Iнститут бiохiмiї iм. О.В. Палладiна НАН України, Київ Нацiональний медичний унiверситет iм. О.О. Богомольця, Київ Iнститут експериментальної патологiї, онкологiї i радiобiологiї iм. Р. Е. Кавецького НАН України, Київ 160 ISSN 1025-6415 Reports of the National Academy of Sciences of Ukraine, 2010, №9 I. О. Shymanskyy, Corresponding Member of the NAS of Ukraine G.V. Donchenko, I.М. Тrofimova, N.М. Gurina, S.М. Suprun, А.P. Klimenko, Е.V. Ovchynnikova, Т. М. Kuchmerovska Protective effect of nicotinamide on pancreatic beta-cells We have investigated the influence of nicotinamide (NAm) on the survival of isolated rat pancreatic beta-cells in vitro. It was found that the exposure of beta-cells to various concentrations of nicoti- namide strongly protects them against cytotoxic effects of streptozotocin that results in their better time-dependent survival. Most likely, these effects can be associated with the direct modulatory acti- on of NAm on important effector mechanisms involved in cell death, including PARP-dependent processes, or/and indirectly, through metabolic and antioxidant effects of the compound. ISSN 1025-6415 Доповiдi Нацiональної академiї наук України, 2010, №9 161
id nasplib_isofts_kiev_ua-123456789-30408
institution Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine
issn 1025-6415
language Ukrainian
last_indexed 2025-12-07T17:20:12Z
publishDate 2010
publisher Видавничий дім "Академперіодика" НАН України
record_format dspace
spelling Шиманський, І.О.
Донченко, Г.В.
Трофимова, І.М.
Гуріна, Н.М.
Супрун, С.М.
Клименко, А.П.
Овчіннікова, Е.В.
Кучмеровська, Т.М.
2012-02-02T19:44:13Z
2012-02-02T19:44:13Z
2010
Цитопротекторна дія нікотинаміду на бета-клітини підшлункової залози / І.О. Шиманський, Г.В. Донченко, І.М. Трофимова, Н.М. Гуріна, С.М. Супрун, А.П. Клименко, Е.В. Овчіннікова, Т.М. Кучмеровська // Доп. НАН України. — 2010. — № 9. — С. 156-161. — Бібліогр.: 15 назв. — укр.
1025-6415
https://nasplib.isofts.kiev.ua/handle/123456789/30408
577.164.3:612.349.7
Досліджено вплив нікотинаміду (NAm) на життєдіяльність ізольованих бета-клітин підшлункової залози щурів in vitro. Було виявлено захисну дію NAm на виживання бета-клітин на фоні цитотоксичних ефектів стрептозотоцину, що, імовірно, зумовлена прямою модуляторною дією NAm на PARP-залежні процеси, які залучені до механізму загибелі клітин, а також і опосередкованими метаболічними та антиоксидантними ефектами сполуки.
We have investigated the influence of nicotinamide (NAm) on the survival of isolated rat pancreatic beta-cells in vitro. It was found that the exposure of beta-cells to various concentrations of nicotinamide strongly protects them against cytotoxic effects of streptozotocin that results in their better time-dependent survival. Most likely, these effects can be associated with the direct modulatory action of NAm on important effector mechanisms involved in cell death, including PARP-dependent processes, or/and indirectly, through metabolic and antioxidant effects of the compound.
uk
Видавничий дім "Академперіодика" НАН України
Доповіді НАН України
Біохімія
Цитопротекторна дія нікотинаміду на бета-клітини підшлункової залози
Protective effect of nicotinamide on pancreatic beta-cells
Article
published earlier
spellingShingle Цитопротекторна дія нікотинаміду на бета-клітини підшлункової залози
Шиманський, І.О.
Донченко, Г.В.
Трофимова, І.М.
Гуріна, Н.М.
Супрун, С.М.
Клименко, А.П.
Овчіннікова, Е.В.
Кучмеровська, Т.М.
Біохімія
title Цитопротекторна дія нікотинаміду на бета-клітини підшлункової залози
title_alt Protective effect of nicotinamide on pancreatic beta-cells
title_full Цитопротекторна дія нікотинаміду на бета-клітини підшлункової залози
title_fullStr Цитопротекторна дія нікотинаміду на бета-клітини підшлункової залози
title_full_unstemmed Цитопротекторна дія нікотинаміду на бета-клітини підшлункової залози
title_short Цитопротекторна дія нікотинаміду на бета-клітини підшлункової залози
title_sort цитопротекторна дія нікотинаміду на бета-клітини підшлункової залози
topic Біохімія
topic_facet Біохімія
url https://nasplib.isofts.kiev.ua/handle/123456789/30408
work_keys_str_mv AT šimansʹkiiío citoprotektornadíâníkotinamídunabetaklítinipídšlunkovoízalozi
AT dončenkogv citoprotektornadíâníkotinamídunabetaklítinipídšlunkovoízalozi
AT trofimovaím citoprotektornadíâníkotinamídunabetaklítinipídšlunkovoízalozi
AT gurínanm citoprotektornadíâníkotinamídunabetaklítinipídšlunkovoízalozi
AT suprunsm citoprotektornadíâníkotinamídunabetaklítinipídšlunkovoízalozi
AT klimenkoap citoprotektornadíâníkotinamídunabetaklítinipídšlunkovoízalozi
AT ovčínníkovaev citoprotektornadíâníkotinamídunabetaklítinipídšlunkovoízalozi
AT kučmerovsʹkatm citoprotektornadíâníkotinamídunabetaklítinipídšlunkovoízalozi
AT šimansʹkiiío protectiveeffectofnicotinamideonpancreaticbetacells
AT dončenkogv protectiveeffectofnicotinamideonpancreaticbetacells
AT trofimovaím protectiveeffectofnicotinamideonpancreaticbetacells
AT gurínanm protectiveeffectofnicotinamideonpancreaticbetacells
AT suprunsm protectiveeffectofnicotinamideonpancreaticbetacells
AT klimenkoap protectiveeffectofnicotinamideonpancreaticbetacells
AT ovčínníkovaev protectiveeffectofnicotinamideonpancreaticbetacells
AT kučmerovsʹkatm protectiveeffectofnicotinamideonpancreaticbetacells