Действие низкоинтенсивного лазерного излучения на мембраны эритроцитов крови человека
The effect of low-intensity laser irradiation (LI) on human erythrocyte membranes was studied, by using densities of 0.5, 1.2, 3.5, and 10 J/cm2. The obtained data, concerning the deformation ability of erythrocytes, _-potential, and a number of erythrocyte structures able to adsorb dye АB, show tha...
Збережено в:
| Дата: | 2008 |
|---|---|
| Автори: | , , , , , , , , , |
| Формат: | Стаття |
| Мова: | Російська |
| Опубліковано: |
Видавничий дім "Академперіодика" НАН України
2008
|
| Теми: | |
| Онлайн доступ: | https://nasplib.isofts.kiev.ua/handle/123456789/5666 |
| Теги: |
Додати тег
Немає тегів, Будьте першим, хто поставить тег для цього запису!
|
| Назва журналу: | Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine |
| Цитувати: | Действие низкоинтенсивного лазерного излучения на мембраны эритроцитов крови человека / М.И. Корпан, Н.П. Галаган, И.С. Чекман, П.М. Бабич, В.В. Чащина, В.Л. Осауленко, Н.М. Мошковская, И.В. Гриценко, И.Л. Орел, В. Фиалка-Мозер // Доп. НАН України. — 2008. — № 7. — С. 184-190. — Бібліогр.: 12 назв. — рос. |
Репозитарії
Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine| _version_ | 1860253761441628160 |
|---|---|
| author | Корпан, М.И. Галаган, Н.П. Чекман, И.С. Бабич, П.М. Чащина, В.В. Осауленко, В.Л. Мошковская, Н.М. Гриценко, И.В. Орел, И.Л. Фиалка-Мозер, В. |
| author_facet | Корпан, М.И. Галаган, Н.П. Чекман, И.С. Бабич, П.М. Чащина, В.В. Осауленко, В.Л. Мошковская, Н.М. Гриценко, И.В. Орел, И.Л. Фиалка-Мозер, В. |
| citation_txt | Действие низкоинтенсивного лазерного излучения на мембраны эритроцитов крови человека / М.И. Корпан, Н.П. Галаган, И.С. Чекман, П.М. Бабич, В.В. Чащина, В.Л. Осауленко, Н.М. Мошковская, И.В. Гриценко, И.Л. Орел, В. Фиалка-Мозер // Доп. НАН України. — 2008. — № 7. — С. 184-190. — Бібліогр.: 12 назв. — рос. |
| collection | DSpace DC |
| description | The effect of low-intensity laser irradiation (LI) on human erythrocyte membranes was studied, by using densities of 0.5, 1.2, 3.5, and 10 J/cm2. The obtained data, concerning the deformation ability of erythrocytes, _-potential, and a number of erythrocyte structures able to adsorb dye АB, show that the critical dose of LI in the present experiments was about 3 J/cm2. At higher doses of LI, changes of the erythrocyte surface are observed, testifying in favor of changes in membrane structures and their physico-chemical properties.
|
| first_indexed | 2025-12-07T18:46:35Z |
| format | Article |
| fulltext |
оповiдi
НАЦIОНАЛЬНОЇ
АКАДЕМIЇ НАУК
УКРАЇНИ
7 • 2008
МЕДИЦИНА
УДК 544.032.65:576.52:57.018.2:577.35.2.5
© 2008
М. И. Корпан, Н. П. Галаган, член-корреспондент НАН
Украины И.С. Чекман, П.М. Бабич, В. В. Чащина,
В.Л. Осауленко, Н.М. Мошковская, И. В. Гриценко, И. Л. Орел,
В. Фиалка-Мозер
Действие низкоинтенсивного лазерного излучения
на мембраны эритроцитов крови человека
The effect of low-intensity laser irradiation (LI) on human erythrocyte membranes was studied,
by using densities of 0.5, 1.2, 3.5, and 10 J/cm2. The obtained data, concerning the deformation
ability of erythrocytes, ζ-potential, and a number of erythrocyte structures able to adsorb dye
АB, show that the critical dose of LI in the present experiments was about 3 J/cm2. At higher
doses of LI, changes of the erythrocyte surface are observed, testifying in favor of changes in
membrane structures and their physico-chemical properties.
Низкоинтенсивное лазерное излучение (ЛИ) получило широкое распространение в лечении
и реабилитации различных заболеваний [1, 2]. Молекулярные механизмы терапевтического
действия ЛИ окончательно не установлены. Высказаны предположения, что хромофорами
в красной области спектра могут быть порфирины, а также их производные, молекулы
ферментов-антиоксидантов (супероксиддисмутаза, каталаза, церулоплазмин), компоненты
дыхательной цепи (флавопротеины и цитохромы), молекулярный кислород [3, 4]. Белковый,
липидный и углеводный компоненты биомембраны имеют существенное значение в меха-
низме действия различных внешних факторов [5, 6].
Несмотря на значительное количество исследований по действию ЛИ на клетки кро-
ви, остаются недостаточно изученными вопросы, связанные с его действием на параметры
поверхности эритроцитов. Поэтому целью проведенного нами исследования было определе-
ние влияния возрастающих доз ЛИ на величину заряда эритроцитов крови доноров и воз-
можные изменения в их высокополимерных молекулярных структурах (ВПМС) и форме
клеток.
Материалы и методы. Для определения отрицательного заряда клеточной поверх-
ности используют метод микроэлектрофореза клеток [7, 8]. Электрофоретическая подвиж-
ность (ЭФП), которая прямо пропорциональна градиенту потенциала внешнего электриче-
ского поля, диэлектрической постоянной среды, электрокинетическому потенциалу и обрат-
но пропорциональна вязкости среды. Зависимость между этими величинами определяется
184 ISSN 1025-6415 Reports of the National Academy of Sciences of Ukraine, 2008, №7
уравнением Смолуховского, предложенным для определения ЭФП коллоидных частиц или
клеток:
V =
HDζ
4πη
, (1)
где V — электрофоретическая скорость частиц или клеток; H — градиент потенциала внеш-
него электрического поля (или напряженность внешнего электрического поля); D — диэ-
лектрическая постоянная среды (для воды D = 81); ζ — дзета-потенциал, или электроки-
нетический заряд клетки, или электроотрицательный заряд клеточной поверхности; η —
вязкость среды (для воды η ≈ 1 мПа · с); 4π — коэффициент.
Электрофоретическая скорость зависит от расстояния, на которое перемещается части-
ца (мкм) в сетке окуляра-микрометра в одну сторону, а также времени перемещения (с)
этого пути. При градиенте потенциала 1 В/см электрофоретическая скорость называется
электрофоретической подвижностью (ЭФП), которая имеет размерность µ · с−1
·В−1
· см−1,
где µ = 1 · 10
−4 см, и обычно обозначается U .
Напряженность электрического поля H определяется по формуле
H =
ip
hs
, (2)
где i — сила тока, А; p — удельное сопротивление буферного раствора; h — высота камеры,
см; s — глубина камеры, см.
Величина отрицательного заряда клеточной поверхности клеток крови ζ (дзета-потен-
циал) прямо пропорциональна ЭФП и рассчитывается в соответствии с приведенной ниже
формулой (3), если известны из опытных данных их ЭФП (U), вязкость (ή) и диэлектри-
ческая постоянная среды (D):
ζ = 4πη
U
HD
. (3)
Величины, входящие в уравнение (1), выражены в абсолютных электростатических едини-
цах. Для получения результатов ζ-потенциала клеток в милливольтах правая часть уравне-
ния умножается на коэффициент пересчета, равный 3002, а подвижность клеток (U) выра-
жается в µ/с, где µ = 1 · 10
−4 см.
При комнатной температуре (18 ◦С) вязкость изотонического солевого раствора рав-
на 0,01 П, диэлектрическая постоянная раствора составляет 81, уравнение (1) принимает
вид
ζ = 14 · U мВт. (4)
Изменения, происходящие на клеточной поверхности эритроцитов под действием внеш-
него фактора, можно также оценивать количественно благодаря ее возможности адсорби-
ровать некоторые красители, связывающиеся специфически с олигосахаридными структу-
рами ее рецепторов [7, 8]. Последние в значительной мере определяют физико-химичес-
кие свойства мембраны (вязкость, эластичность, упругость) [9], от которых зависит форма
эритроцитов. Их суспензия состоит из клеток разной формы, основные из которых дис-
коциты (двояковогнутые клетки), эхиноциты (клетки с выростами), сфероциты (клетки
сферической формы) [10]. Нормальный эритроцит человека в стационарных условиях име-
ет вид дискоцита. Такая форма клетки имеет площадь на 20% больше, чем у сфероцита, что
ISSN 1025-6415 Доповiдi Нацiональної академiї наук України, 2008, №7 185
является более выгодным для реологических свойств крови, а также поддержания кисло-
родного обеспечения и прооксидантно-антиоксидантного состояния организма. По переходу
дискоцита через эхиноцит в сфероцит можно судить о состоянии мембраны эритроцита под
действием влияющих на нее факторов [11].
Исследования выполнены с суспензиями эритроцитов, стабилизированных раствором
“Глюгицир”, крови доноров, которые были получены из Киевского городского центра пе-
реливания крови МЗО Украины. В состав “Глюгицира” входили следующие компоненты
(дано на объем 50 мл): натрий гидроцитрат (двухзамещенный) для инъекций — 1 г, глюко-
за (в пересчете на безводную) — 1,5 г, вода для инъекций — до 50 мл. Для консервирования
донорской крови соотношение препарата и крови составляло 1 : 4. В процессе экспери-
ментов использовали также суспензии эритроцитов, отмытых от консерванта, 0,14 М NaCl
или 3,8% цитратом натрия. В этих случаях применяли 3-кратное центрифугирование в те-
чение 10 мин при 3000 об./мин.
Количество клеток в 1 мл рассчитывали с использованием камеры Горяева и микроско-
па “ Биолам” (ЛОМО). Воздействие лазером SV 1417–04N с длиной волны 0,695 мкм на
суспензию эритроцитов осуществляли с интенсивностью 0,5, 1, 2, 3, 5 и 10 Дж/см2 соот-
ветственно в течение 28 с, 56 с, 1 мин 51 с, 2 мин 47 с, 4 мин 38 с, 9 мин 16 с. Мощность
излучения лазером равнялась 50 мВт. Доза D рассчитывалась по формуле D = Pt, где P —
мощность лазера, мВт; t — время излучения.
Для определения заряда клеточной поверхности использовали метод микроэлектрофо-
реза клеток [8]. Эксперименты проводили в растворе 0,19% цитрата натрия с 0,28 М глю-
козы.
В исследовании использовали прибор для определения электрофоретической скорости
клеток в специально сконструированной ячейке, где с помощью секундомера и окулярной
сетки измеряется под микроскопом скорость перемещения каждой клетки в электрическом
поле. В состав установки входили микроскоп, электрофоретическая ячейка, система пода-
чи суспензии клеток в растворе, прибор для проведения электрофоретических исследова-
ний, видеокамера и персональная ЭВМ. В качестве микроскопа использовали микроскоп
МБИ-3 с объективом 20× с фокусным расстоянием 1,6 мм, окуляром 10×, общим оптичес-
ким увеличением 300×.
Для удобства работы изображение клеток при помощи видеокамеры Mustek G-Smart
Mini, установленной на окуляре микроскопа с помощью специального переходного устройст-
ва, передавалось в ПЭВМ, на экране дисплея которой возможна индикация изображения
движения клеток под действием электрического поля, а также запоминание этого видео-
изображения на жестком диске.
Суспензию клеток в обозначенном выше растворе вводили в ячейку, куда подавалось
напряжение 10 В/см2. Путь, пройденный клеткой, как правило, составлял 16 мкм, что
прослеживалось с помощью сетки, вмонтированной в микроскоп. Длительность пробега
составляла 4–5 с. Измерения проводили, периодически изменяя направленность движения
клеток, что достигалось сменой направления поля. Вычисляли среднее из 40–60 измерений,
сделанных в равном количестве в одну и другую сторону.
Величину электрокинетического заряда клеток (ζ-потенциал) рассчитывали из ЭФП
клеток в соответствии с формулами, приведенными выше.
Для оценки изменений в ВПМС использовали метод [9] с применением 0,005%-го раст-
вора красителя альцианового синего (АС) (“Sigma-Aldrich Chemie GmbH”, Германия), при-
готовленного на 0,9%-м растворе NaCl. Метод состоит в определении концентрации АС
186 ISSN 1025-6415 Reports of the National Academy of Sciences of Ukraine, 2008, №7
в растворе до и после окрашивания клеток и расчете количества, адсорбированного их по-
верхностными структурами красителя. Количество АС в растворе до и после окрашивания
клеток (соответственно С0 и С) определяли по его оптической плотности при λ = 617 нм
на спектрофотометре “ Specord М-40”. Концентрацию АС рассчитывали по калибровочным
кривым. Расчет количества АС, сорбированного суспензией эритроцитов (Q1), проводили
согласно [7] по формуле
Q1 = C0 − C, (5)
где Q1 рассчитывалось в граммах или в процентах АС в исходном растворе. Величину
адсорбции АС в расчете на одну клетку (Q2) суспензии эритроцитов до и после воздействия
на них лазера с определенной интенсивностью рассчитывали по формуле
Q2 =
C0 − C
nV
, (6)
где n — количество клеток в 1 мл; V — объем окрашиваемой суспензии (мл), который
определяется емкостью кювет спектрофотометра.
Форму эритроцитов оценивали с применением той же системы визуализации, что и
в экспериментах с микроэлектрофорезом клеток с той лишь разницей, что в данном слу-
чае использовали инвертированный микроскоп МБИ-12, позволивший применить метод
фазового контраста. Исследовали форму эритроцитов без (контрольные пробы) и после
(опытные пробы) облучения лазером различной интенсивности. Суспензию, содержащую
не более 108 кл/мл, отмывали от консерванта, как указывалось выше, с использованием
0,14 М NaCl. Подсчитывали под микроскопом количество следующих форм клеток: диско-
цитов, эхиноцитов и сфероцитов. Рассчитывали также соотношение количества дискоцитов
к количеству сфероцитов.
Результаты экспериментов обрабатывали методами описательной статистики, диспер-
сионного и регрессионного анализа [12].
Результаты исследования и их обсуждение. В результате определения электро-
форетического потенциала установлено, что с увеличением интенсивности ЛИ существует
определенная тенденция к уменьшению значений стандартного отклонения электрокинети-
ческого потенциала от его контрольного значения. Данные регрессионного анализа подтвер-
ждают вывод об уменьшении электрофоретического потенциала при увеличении дозы ЛИ.
Наибольшая разница в значениях потенциала между средними значениями контрольных
и опытных суспензий эритроцитов наблюдается при интенсивности ЛИ 5 Дж/см2 (табл. 1).
Не исключено, что под действием ЛИ происходила фотохимическая диссоциация различ-
ных молекулярных комплексов на поверхности эритроцитов и частичное разрушение гли-
копротеинов ВПМС, аналогично тому, как это наблюдается при действии УФ облучения
на эритроциты [6]. Первоначальное снижение электрофоретического потенциала на поверх-
ности и дальнейшее его увеличение при увеличении дозы ЛИ до 10 Дж/cм2, возможно,
зависит от перераспределения количества различных форм эритроцитов, что подтверди-
лось дальнейшими экспериментами (см. ниже). Однако вопрос требует дополнительного
изучения, поскольку эффект лежит на грани чувствительности эксперимента.
В табл. 1 представлены также данные по действию ЛИ на сорбционную способность кра-
сителя АС эритроцитами. С помощью дисперсионного анализа установлено, что разнород-
ность экспериментального материала значительно существеннее влияет на показатель Q2,
ISSN 1025-6415 Доповiдi Нацiональної академiї наук України, 2008, №7 187
чем интенсивность ЛИ. Однако следует отметить, что интенсивность ЛИ существенно вли-
яет на дисперсию результатов: при увеличении ЛИ от 0,5 до 5 Дж/cм2. При дальнейшем
увеличении интенсивности ЛИ наблюдается стабилизация дисперсии. Следует отметить тот
факт, что именно начиная с дозы ЛИ 3 Дж/cм2, наблюдаем значения Q, отличающиеся от
контроля. Хотя здесь не выявлены статистически значимые различия, имеется некоторая
тенденция в снижении сорбционной способности красителя поверхностными структурами
клетки, что согласуется с предположениями, высказанными при анализе величин ζ-потен-
циала.
Как следует из табл. 1, в зависимости от интенсивности ЛИ изменяется соотношение
различных форм эритроцитов. Об этом свидетельствуют также средние значения коли-
чества клеток, приведенные в табл. 2.
На основании анализа проведенных исследований можно сделать заключение, что ко-
личество дискоцитов сначала уменьшается в сравнении с контролем, а затем возрастает
и при увеличении интенсивности излучения до 10 Дж/cм2 превышает контрольные значе-
ния. Об этом свидетельствуют также и соотношение количества дискоцитов и сфероцитов
(см. табл. 2), и результаты попарного сравнения части дискоцитов при разных значениях
интенсивности ЛИ со значениями контроля (табл. 3). Таким образом, при интенсивности
ЛИ 0,5, 1 и 2 Дж/см2 количество дискоцитов заметно уменьшается в сравнении с контро-
лем, а при интенсивности 10 Дж/см2 — существенно увеличивается.
Начиная с дозы ЛИ 3 Дж/см2 отмечается увеличение количества дискоцитов и сокра-
щение количества сфероцитов. Известно [11], что трансформация эритроцита от дискоци-
та в сфероцит через промежуточные формы (эхиноциты) свидетельствует о нарушениях
Таблица 1. Значения биофизических параметров поверхности эритроцитов крови доноров человека (эле-
ктрофоретический потенциал, параметр Q2, Д/C — отношение числа дискоцитов и сфероцитов) при дейст-
вии на них ЛИ различной интенсивности
Интенсивность ЛИ,
Дж/см2 ζ-потенциал, мВ Q · 10
−10, г Д/C
Контроль 29,03 ± 2,06 0,30 ± 0,078 1,07
0,5 28,15 ± 1,83 0,30 ± 0,078 0,67
1 28,08 ± 1,49 0,27 ± 0,083 0,44
2 28,02 ± 1,95 0,30 ± 0,094 0,73
3 28,01 ± 1,76 0,27 ± 0,110 1,22
5 27,51 ± 1,41 0,25 ± 0,118 1,32
10 28,16 ± 1,29 0,29 ± 0,117 1,70
Таблица 2. Средние значения разных типов эритроцитов (количество и %) в зависимости от интенсив-
ности ЛИ
Типы
эритроцитов
Интенсивность ЛИ, Дж/см2
Контроль 0,5 1 2 3 5 10
Шт. % Шт. % Шт. % Шт. % Шт. % Шт. % Шт. %
Дискоциты 134 38,67 86 29,90 58 22,44 77 31,73 131 39,76 134 41,50 114 44,64
Эхиноциты 66 18,82 59 20,25 43 18,18 48 18,35 68 19,22 58 17,52 37 16,64
Сфероциты 121 35,89 138 44,32 125 50,26 132 43,32 109 32,61 101 31,46 52 26,23
Деформованные 22 6,15 20 5,42 17 6,67 18 6,60 33 7,89 26 7,25 20 8,87
эритроциты
Тени 2 0,47 0 0,11 4 2,46 3 0,92 1 0,52 10 2,27 9 3,62
эритроцитов
188 ISSN 1025-6415 Reports of the National Academy of Sciences of Ukraine, 2008, №7
Таблица 3. Попарное сравнение вклада дискоцитов в контрольной и опытной суспензии эритроцитов при
действии различных доз ЛИ
Пара, которая
сравнивается
Разница, %
Стандартная
ошибка
разницы, %
Критерий χ
2
Достигнутый
уровень
значимости (p)
Контроль — опыт, 0,5 Дж/см2
10,46
∗ 3,69 7,408 0,0065
Контроль – опыт, 1 Дж/см2
15,36
∗ 3,76 14,802 0,0001
Контроль — опыт, 2 Дж/см2
11,14
∗ 3,75 8,044 0,0046
Контроль — опыт, 3 Дж/см2
0,54 3,71 0,004 0,9473
Контроль — опыт, 5 Дж/см2
−1,89 3,77 0,178 0,6729
Контроль — опыт, 10 Дж/см2
−10,30
∗ 4,20 5,589 0,0181
∗Разница является статистически достоверной при уровне значимости 0,05.
в мембране, в частности изменении ее эластичности, которое способствует разрыву клет-
ки и наступлению гемолиза. В нашем исследовании увеличение количества теней эритро-
цитов, которое наблюдается при сокращении числа сфероцитов при более высоких дозах
ЛИ, сопровождалось ростом количества дискоцитов, которые являются физиологически бо-
лее полноценными клетками, способными обеспечить нормальное функционирование всей
ткани. Возможно, что наблюдаемый нами рост количества дискоцитов при дозах выше
3 Дж/см2 происходит за счет гемолиза определенного числа сфероцитов. Изменение отно-
шения числа дискоцитов к числу сфероцитов (см. табл. 2) свидетельствует о том, что с уве-
личением интенсивности ЛИ с эритроцитами крови доноров происходят такие изменения,
когда деформированные клетки разрушаются, а за счет этого увеличивается количество
дискоцитов. Этим можно объяснить и увеличение ζ-потенциала при самой высокой дозе
ЛИ, а также некоторое повышение сорбционной способности АС структурами клеточной
поверхности эритроцита.
От деформируемости эритроцитов зависит кислородтранспортная функция крови и
обеспечение достижения полезного приспособительного результата системы транспорта кис-
лорода, что важно для улучшения функциональных показателей организма. Ухудшение
этого показателя свидетельствует о тенденции к снижению количества кислорода, кото-
рое может диффундировать от капилляров в окружающую ткань. Проведенные исследова-
ния показали, что наибольшая деформируемость эритроцитов происходит в пределах доз
ЛИ 0,5–3 Дж/см2, что в организме может сопровождаться активацией системы транспор-
та кислорода. При дальнейшем повышении дозы ЛИ фактор деформируемости эритроци-
тов снижается, что приводит к увеличению числа дискоцитов, так называемых “эритро-
цитов в покое”. Количественное их повышение, наблюдаемое при более высоких дозах ЛИ
(5–10 Дж/см2) будет приводить к затруднениям проникновения эритроцитов в капилляры,
из-за чего будет ухудшаться и поступление кислорода в ткани, поскольку для проникнове-
ния в капилляры предпочтительны деформированные формы эритроцитов. В проведенных
исследованиях имело место увеличение числа дискоцитов за счет более чувствительных
к внешним воздействиям других форм эритроцитов.
Таким образом, данные по деформируемости эритроцитов, а также величине ζ-потенци-
ала и количеству структур поверхности эритроцитов, способных адсорбировать краситель
АС, показывают, что пороговая доза ЛИ составляет около 3 Дж/см2. При более высоких
дозах ЛИ наблюдаются изменения поверхности эритроцитов, свидетельствующие об изме-
нениях структур мембран и их физико-химических свойств.
ISSN 1025-6415 Доповiдi Нацiональної академiї наук України, 2008, №7 189
1. Козлов В.И., Буйлин В.Н. Лазеротерапия. – Москва: Медицина, 1993. – 149 с.
2. Fialka-Moser V., Crevena R., Korpan M. et al. Cancer rehabilitation. Particularly with aspects on physical
impairment // J. Rehabil. Med. – 2003. – 35, No 4. – P. 221–230.
3. Клебанов Г.И. Мембранные механизмы фотобиологического действия низкоинтенсивного лазерного
излучения // Мембраны. – 2005. – № 6. – С. 87–97.
4. Владимиров Ю.А. Лазерная терапия: настоящее и будущее // Соросовский образовательный журн. –
1999. – № 12. – С. 2–8.
5. Геннис Р. Биомембраны. Молекулярная структура и функции. – Москва: Мир, 1997. – 622 с.
6. Арцишевская Р.А., Самойлова К.А. Функциональные и структурные изменения поверхности эри-
троцитов человека после облучения УФ лучами разной длины волны // Цитология. – 1983. – 25,
№ 12. – С. 1387–1392.
7. Козинец Г.И. Интерпретация анализов крови и мочи. Клиническое значение анализов. – С.-Петер-
бург: Саммит, 1997. – 123 с.
8. Харамоненко С.С., Ракитянская А.А. Электрофорез клеток крови в норме и патологии. – Минск:
Беларусь, 1974. – 143 с.
9. Bellary S. S., Arden W.W., Schwarz R.W. et al. Effect of lipopopysaccharide, leukocytes, and monoclonal
antilipid A antibodies on erythrocyte membrane elastance // Shock. – 1995. – 3, No 2. – P. 778–783.
10. Bessis M. Red cell shapes: An illustrated classification and its rationale // Nouv. rev. franç. hématol. –
1972. – No 12(6). – P. 721–745.
11. Гриценко I. В., Осауленко В.Л., Ройтман Є.М., Ляшенко Т. I., Галаган Н.П. Мiкроскопiчнi дослiд-
ження дiї сорбенту “Силiкс” на еритроцити кровi людини // Клiнiч. та експерим. патологiя. – 2004. –
3, № 2, ч. 2. – С. 526–528.
12. Гайдышев И. Анализ и обработка данных: Специальный справочник. – С.-Петербург: Питер, 2001. –
752 с.
Поступило в редакцию 28.01.2008Венский медицинский университет, Австрия
Институт химии поверхности им. А.А. Чуйко
НАН Украины, Киев
Национальный медицинский университет
им. А.А. Богомольца, Киев
190 ISSN 1025-6415 Reports of the National Academy of Sciences of Ukraine, 2008, №7
|
| id | nasplib_isofts_kiev_ua-123456789-5666 |
| institution | Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine |
| issn | 1025-6415 |
| language | Russian |
| last_indexed | 2025-12-07T18:46:35Z |
| publishDate | 2008 |
| publisher | Видавничий дім "Академперіодика" НАН України |
| record_format | dspace |
| spelling | Корпан, М.И. Галаган, Н.П. Чекман, И.С. Бабич, П.М. Чащина, В.В. Осауленко, В.Л. Мошковская, Н.М. Гриценко, И.В. Орел, И.Л. Фиалка-Мозер, В. 2010-02-02T09:54:49Z 2010-02-02T09:54:49Z 2008 Действие низкоинтенсивного лазерного излучения на мембраны эритроцитов крови человека / М.И. Корпан, Н.П. Галаган, И.С. Чекман, П.М. Бабич, В.В. Чащина, В.Л. Осауленко, Н.М. Мошковская, И.В. Гриценко, И.Л. Орел, В. Фиалка-Мозер // Доп. НАН України. — 2008. — № 7. — С. 184-190. — Бібліогр.: 12 назв. — рос. 1025-6415 https://nasplib.isofts.kiev.ua/handle/123456789/5666 544.032.65:576.52:57.018.2:577.35.2.5 The effect of low-intensity laser irradiation (LI) on human erythrocyte membranes was studied, by using densities of 0.5, 1.2, 3.5, and 10 J/cm2. The obtained data, concerning the deformation ability of erythrocytes, _-potential, and a number of erythrocyte structures able to adsorb dye АB, show that the critical dose of LI in the present experiments was about 3 J/cm2. At higher doses of LI, changes of the erythrocyte surface are observed, testifying in favor of changes in membrane structures and their physico-chemical properties. ru Видавничий дім "Академперіодика" НАН України Медицина Действие низкоинтенсивного лазерного излучения на мембраны эритроцитов крови человека Article published earlier |
| spellingShingle | Действие низкоинтенсивного лазерного излучения на мембраны эритроцитов крови человека Корпан, М.И. Галаган, Н.П. Чекман, И.С. Бабич, П.М. Чащина, В.В. Осауленко, В.Л. Мошковская, Н.М. Гриценко, И.В. Орел, И.Л. Фиалка-Мозер, В. Медицина |
| title | Действие низкоинтенсивного лазерного излучения на мембраны эритроцитов крови человека |
| title_full | Действие низкоинтенсивного лазерного излучения на мембраны эритроцитов крови человека |
| title_fullStr | Действие низкоинтенсивного лазерного излучения на мембраны эритроцитов крови человека |
| title_full_unstemmed | Действие низкоинтенсивного лазерного излучения на мембраны эритроцитов крови человека |
| title_short | Действие низкоинтенсивного лазерного излучения на мембраны эритроцитов крови человека |
| title_sort | действие низкоинтенсивного лазерного излучения на мембраны эритроцитов крови человека |
| topic | Медицина |
| topic_facet | Медицина |
| url | https://nasplib.isofts.kiev.ua/handle/123456789/5666 |
| work_keys_str_mv | AT korpanmi deistvienizkointensivnogolazernogoizlučeniânamembranyéritrocitovkrovičeloveka AT galagannp deistvienizkointensivnogolazernogoizlučeniânamembranyéritrocitovkrovičeloveka AT čekmanis deistvienizkointensivnogolazernogoizlučeniânamembranyéritrocitovkrovičeloveka AT babičpm deistvienizkointensivnogolazernogoizlučeniânamembranyéritrocitovkrovičeloveka AT čaŝinavv deistvienizkointensivnogolazernogoizlučeniânamembranyéritrocitovkrovičeloveka AT osaulenkovl deistvienizkointensivnogolazernogoizlučeniânamembranyéritrocitovkrovičeloveka AT moškovskaânm deistvienizkointensivnogolazernogoizlučeniânamembranyéritrocitovkrovičeloveka AT gricenkoiv deistvienizkointensivnogolazernogoizlučeniânamembranyéritrocitovkrovičeloveka AT orelil deistvienizkointensivnogolazernogoizlučeniânamembranyéritrocitovkrovičeloveka AT fialkamozerv deistvienizkointensivnogolazernogoizlučeniânamembranyéritrocitovkrovičeloveka |