Генетический контроль аллозимов у можжевельника колючего (Juniperus oxycedrus l.) в Крыму
Изучен генетический контроль 9 ферментных систем у можжевельника колючего (Juniperus oxycedrus l.) из природных популяций Горного Крыма. В результате электрофоретического разделения изоферментов, экстрагируемых из гаплоидных эндоспермов семян, идентифицированы 18 локусов, из которых 13 (Gdh, Mdh-2,...
Saved in:
| Published in: | Промышленная ботаника |
|---|---|
| Date: | 2011 |
| Main Authors: | , , , , |
| Format: | Article |
| Language: | Russian |
| Published: |
Донецький ботанічний сад НАН України
2011
|
| Subjects: | |
| Online Access: | https://nasplib.isofts.kiev.ua/handle/123456789/67405 |
| Tags: |
Add Tag
No Tags, Be the first to tag this record!
|
| Journal Title: | Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine |
| Cite this: | Генетический контроль аллозимов у можжевельника колючего (Juniperus oxycedrus l.) в Крыму / И.И. Коршиков, А.В. Николаева, Л.А., Калафат, А.В. Егорова, Т.А. Иваничко // Промышленная ботаника. — 2011. — Вип. 11. — С. 168-173. — Бібліогр.: 18 назв. — рос. |
Institution
Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine| _version_ | 1859668263511785472 |
|---|---|
| author | Коршиков, И.И. Николаева, А.В. Калафат, Л.А. Егорова, А.В. Иваничко, Т.А. |
| author_facet | Коршиков, И.И. Николаева, А.В. Калафат, Л.А. Егорова, А.В. Иваничко, Т.А. |
| citation_txt | Генетический контроль аллозимов у можжевельника колючего (Juniperus oxycedrus l.) в Крыму / И.И. Коршиков, А.В. Николаева, Л.А., Калафат, А.В. Егорова, Т.А. Иваничко // Промышленная ботаника. — 2011. — Вип. 11. — С. 168-173. — Бібліогр.: 18 назв. — рос. |
| collection | DSpace DC |
| container_title | Промышленная ботаника |
| description | Изучен генетический контроль 9 ферментных систем у можжевельника колючего (Juniperus oxycedrus l.) из природных популяций Горного Крыма. В результате электрофоретического разделения изоферментов, экстрагируемых из гаплоидных эндоспермов семян, идентифицированы 18 локусов, из которых 13 (Gdh, Mdh-2, Mdh-3, Acp-2, Acp-3, Acp-4, Lap-1, Dia-1, Sod-1, Sod-2, Sod-3, Est-1, Est-2) полиморфные. Анализ сегрегации аллелей подтверждает их моногенное наследование у гетерозигот.
Genetic control of 9 enzyme systems of the juniper prickly (Juniperus oxycedrus l.) from natural populations of the Crimean Mountains has been studied. After electrophoretic separation of isoenzymes extracted from haploid endosperms of seeds 18 loci have been identified. Thirteen of them (Gdh, Mdh-2, Mdh-3, Acp-2, Acp-3, Acp-4, Lap-1, Dia-1, Sod-1, Sod-2, Sod-3, Est-1, Est-2) are polymorphic. The analysis of the allele segregation confirms their monogenic inheritance in heterozygotes.
|
| first_indexed | 2025-11-30T12:01:46Z |
| format | Article |
| fulltext |
ISSN 1728-6204 Промышленная ботаника. 2011, вып. 11168
УДК 575.113:582.477.6(477.75)
И.И. Коршиков, А.В. Николаева, Л.А., Калафат, А.В. Егорова, Т.А. Иваничко
ГЕНЕТИЧЕСКИЙ КОНТРОЛЬ АЛЛОЗИМОВ У МОЖЖЕВЕЛЬНИКА
КОЛЮЧЕГО (JUNIPERUS OxyCEDRUS l.) В КРЫМУ
Juniperus oxycedrus, изоферменты, генетический контроль, Крым
Введение
Уникальные лесные сообщества Горного Крыма – можжевеловые редколесья в последние
четверть века подвергаются возрастающей прямой и опосредованной антропогенной нагрузке.
Площади этих редколесий постоянно сокращаются, а в связи с аномальными летними засухами
существенно снижаются и темпы естественного возобновления природных популяций, в частно-
сти, можжевельника колючего (Juniperus oxycedrus L.). Этот вид в Крыму находится на северном
пределе своего естественного распространения. Неблагоприятные условия в период цветения
растений, а также их удаленность друг от друга в редколесьях могут способствовать развитию
процессов инбридинга. Сохранение генетического разнообразия популяционных систем можже-
веловых в Крыму становится реальной проблемой, так как именно популяционное разнообразие
определяет потенциал адаптации и эволюции вида. Изучение популяционно-генетического раз-
нообразия J. oxycedrus в пределах естественного ареала в Крыму интересно в двух аспектах:
выяснения особенностей генетической структуры маргинальных слабо возобновляемых популя-
ций и в связи с проблемами искусственного воспроизводства или восстановления тех популяций,
структура которых уже нарушена.
Без особых затруднений популяционно-генетическое разнообразие хвойных видов можно
определить, если в качестве молекулярных маркеров генотипа использовать изоферменты. Имен-
но изоферменты широко применяют для определения генетической структуры, подразделенно-
сти и дифференциации популяций многих видов хвойных в пределах их естественных ареалов,
а также для мониторинга генетических процессов [1, 2, 5]. Первый этап таких исследований
предусматривает установление генетического контроля изоферментов у анализируемого вида.
Для хвойных по причине особенностей репродуктивного цикла эта задача решается успешно
и без каких-либо предварительных скрещиваний. Наличие гаплоидного эндосперма в их семе-
нах, произошедшего путем митоза из одной гаплоидной мегаспоры, позволяет анализировать
у материнского дерева сегрегационные отношения аллелей одного локуса непосредственно по
эндоспермам, гаплотипы которых соответствуют гаплотипам яйцеклетки [5].
Цель работы – установление генетического контроля изоферментов 9 ферментных систем
J. oxycedrus из природных популяций Горного Крыма.
Объекты и методика
Материалом для исследования послужили семена, собранные нами в 2008–2009 гг. с 30 де-
ревьев J. oxycedrus в популяциях «Агармыш» (район Старого Крыма) и «Байдарская долина».
Для электрофореза использовали экстракты ферментов из эндоспермов семян. Одной из особен-
ностей семян представителей семейства Cupressaceae Rich. ex Bartl. является то, что зародыш
в покоящихся семенах плохо определяется визуально, что усложняет процесс его изъятия из се-
мени и приводит к вероятности попадания белков диплоидной ткани зародыша в анализируемый
экстракт. Решением данной проблемы для J. oxycedrus является предварительное замачивание
надрезанных семян в дистиллированной воде, при их набухании зародыши легко отделяются
от эндоспермов.
© И.И. Коршиков, А.В. Николаева, Л.А., Калафат, А.В. Егорова, Т.А. Иваничко
ISSN 1728-6204 Промышленная ботаника. 2011, вып. 11 169
Электрофоретическое разделение ферментов проводили в вертикальных пластинках
7,5%-ного полиакриламидного геля с рН разделяющего геля 8,9 и трис-глициновым электродным
буфером рН 8,3 [10]. Гистохимическое проявление зон ферментативной активности на гелевых
пластинках осуществляли по общепринятым методикам с небольшими модификациями [6].
Для обозначения ферментов, локусов, аллелей использовали систему С. Пракаша [16]. У боль-
шинства растений анализировали ферменты из эндоспермов не менее чем 7 семян, а у деревьев
с высокой пустосемянностью – все имеющиеся полнозернистые семена. Аллельный характер
обнаруженных в процессе электрофореза вариантов ферментов устанавливали на основании
изучения их сегрегации среди гаплоидных эндоспермов семян деревьев. В соответствии с мен-
делевскими закономерностями при моногенном наследовании у деревьев, гетерозиготных по
какому-либо локусу, аллельные варианты ферментов (аллозимы) должны сегрегировать в соот-
ношении 1:1 [1]. Полученные сегрегационные отношения аллозимов гаплоидных эндоспермов
суммировали для каждой гетерозиготы и проверяли на соответствие ожидаемому соотношению
1:1 стандартным критерием χ2.
Результаты исследований и их обсуждение
В ходе электрофоретического анализа 9 ген-ферментных систем в эндоспермах семян
J. oxycedrus было выявлено 18 локусов. Схема расположения локусов приведена на рисунке.
Глутаматоксалоацетаттрансаминаза (GOT, 2.6.1.1). При гистохимическом окрашива-
нии гелевых пластинок обнаружено две зоны активности фермента, два локуса – Got-1 и Got-2.
Оба локуса оказались мономорфными. Один локус и два аллеля (Got-11.04 и Got-11.00) обнаружены
у J. excelsa в популяциях Крыма. Также идентифицирован один локус GOT в эндоспермах се-
мян Juniperus phoenicea L. [13] и Austrocedrus chilensis (D. Don) двух популяций в Патогонии
(Аргентина) [14]. В другой работе, где в анализе применяли зародышевые корешки A. сhilensis,
описано три зоны активности GOT, кодируемые тремя мономорфными локусами [11]. В хвое
Metasequoia glyptostroboides из центральных районов Китая выявлен один локус GOT, который
оказался мономорфным [12].
Глутаматдегидрогеназа (GDH, 1.4.1.2). На гелях проявляется одна изменчивая зона актив-
ности фермента, контролируемая одним локусом – Gdh. Было обнаружено два его аллельных
варианта Gdh0.94 и Gdh1.00 в популяции Агармыш, а в популяции Байдарская долина этот фер-
мент мономорфен..Один локус и два аллеля этого локуса обнаружены у J. excelsa [9] и у другого
вида – J. phoenicea [13]. Один локус Gdh–А с 2–4 аллелями установлен в популяциях Cupressus
sempervirens L. в Турции [17].
Формиатдегидрогеназа (FDH, 1.4.1.2). На электрофореграммах эндоспермов семян
J. oxycedrus фермент проявляется в виде одной мономорфной зоны активности Fdh. У J. excelsa
в популяциях на территории м. Мартьян (пгт Никита, Крым) также обнаружен один локус Fdh и
два его аллельных варианта [9]. Однако, у J. excelsa, произрастающего на м. Айя, было выявлено
три аллельных варианта: Fdh0.97, Fdh1.00 и Fdh1.10 [10].
Малатдегидрогеназа (MDH, 1.1.1.37). На электрофореграммах отмечено много зон актив-
ности фермента. Идентифицировано три локуса – Mdh-1, Mdh-2 и Mdh-3. Локус Mdh-1 про-
являлся не стабильно, поэтому в дальнейших исследованиях не использовали. Локус Mdh-2
представлен двумя аллелями (Mdh-21.00, Mdh-21.13), а локус Mdh-3 – тремя (Mdh-30.90, Mdh-31.00,
Mdh-31.10). Три локуса обнаружено при исследовании эндоспермов J. excelsa [9] с 2–3 аллелями
и у Austrocedrus chilensis, однако все они были мономорфными [14]. По два локуса данного
фермента описаны для других представителей семейства Cupressaceae – Juniperus phoenicea,
Metasequoia glyptostroboides, Cupressus sempervirens [12, 13, 17]. При этом у C. sempervirens оба
локуса MDH были полиморфны и представлены двумя аллелями [17].
Супероксиддисмутаза (SOD, 1.15.1.1). Электрофоретический спектр этого фермента пред-
ставлен тремя зонами активности, которые кодируются локусами Sod-1, Sod-2 и Sod-3. Локусы
представлены следующими аллелями: Sod-11.00, Sod-11.32, Sod-20.95, Sod-21.00, Sod-21.05, Sod-30.95,
Sod-31.00 и Sod-31.05. Три диалельных локуса обнаружено J. excelsa [9].
ISSN 1728-6204 Промышленная ботаника. 2011, вып. 11170
Ри
с.
С
хе
ма
ти
че
ск
ое
и
зо
бр
аж
ен
ие
и
о
бо
зн
ач
ен
ие
э
ле
кт
ро
фо
ре
ти
че
ск
их
а
лл
ел
ьн
ы
х
ва
ри
ан
то
в
18
л
ок
ус
ов
м
ож
ж
ев
ел
ьн
ик
а
ко
лю
че
го
(J
un
ip
er
us
o
xy
ce
dr
us
L
.)
ISSN 1728-6204 Промышленная ботаника. 2011, вып. 11 171
Эстераза (EST, 3.1.1.1). При окрашивании гелевых пластин наблюдали проявление четырех
зон активности. Однако стабильное окрашивание давали только две зоны. В связи с этим в даль-
нейшем их и использовали в анализе. Локус Est-1 представлен тремя аллелями (Est-11.15, Est-11.00,
Est-10.95), а локус Est-2 – двумя (Est-21.15, Est-21.00). У J. excelsa обнаружен один локус Est, который
оказался мономорфным [9]. При анализе зародышевых корешков у Austrocedrus chilensis наблю-
дали до трех зон активности фермента, при этом в локусе Est-1 отмечены два аллеля, а локус
Est-2, кодировался тремя аллелями. Инвариантным у данного вида был локус Est-3 [11].
Диафораза (DIA, 1.6.4.3). Спектр DIA эндоспермов семян представлен тремя зонами актив-
ности, которые кодируются тремя локусами: Dia-1, Dia-2 и Dia-3. Но локус Dia-2 проявлялся
нечетко и нерегулярно, поэтому в дальнейшем его не анализировали. У J. oxycedrus для локуса
Dia-1 описано три аллельных варианта – Dia-10.95, Dia-11.00 и Dia-11.06, локус Dia-3 оказался моно-
морфным. Такое же количество локусов и аллелй отмечено и у J. excelsa [9].
Лейцинаминопептидаза (LAP, 3.4.11.1). При окрашивании наблюдали проявление трех зон
активности. Обнаружено три локуса: Lap-1, Lap-2 и Lap-3. Локус Lap-2 проявлялся довольно
слабо и в дальнейшем его не использовали в анализе. Локус Lap-1 оказался полиморфным и имел
три аллельных варианта Lap-10.98, Lap-11.00, Lap-11.02, локус Lap-3 был мономорфным, также как и
у J. excelsa [9]. У двух видов рода Cupressus L: C. sempervirens [17] и C. dupreziana A. Camus [15]
идентифицирован один локус LAP, представленный пятью и четырьмя аллельными вариантами
соответственно.
Таблица. Сегрегация аллельных вариантов в эндоспермах гетерозиготных деревьев Juniperus
oxycedrus L. в природных популяциях Горного Крыма
Генотип дерева Число гетерозигот Соотношение аллелей χ2–тест
Gdh-10.94/1.00 8 1:7 4,5*
Sod-10.70/1.00 17 6:11 1,5
Sod-20.95/1.00 12 5:7 0,3
Sod-21.00/1.05 15 10:5 1,7
Sod-30.95/1.00 6 3:3 0
Sod-31.00/1.05 11 6:5 0,1
Mdh-20.87/1.00 105 62:43 3,4
Mdh-30.90/1.00 38 18:20 0,1
Mdh-31.00/1.05 33 17:16 0,1
Dia-10.95/1.00 56 31:25 0,6
Lap-10.98/1.00 55 24:31 0,9
Lap-11.00/1.02 7 5:2 1,3
Acp-20.90/1.00 34 20:14 1,1
Acp-20.93/1.00 20 16:4 7,2**
Acp-21.00/1.05 21 11:10 0,1
Acp-30.90/0.93 8 5:3 0,5
Acp-30.93/1.00 49 22:27 0,5
Acp-31.10/1.10 71 35:36 0,1
Est-10.95/1.00 126 83:53 6,6**
Est-11.00/1.15 21 13:8 1,2
Est-21.00/1.15 33 22:11 3,7
Примечание. Достоверное нарушение сегрегации – * при Р < 0,05; **P < 0,01
ISSN 1728-6204 Промышленная ботаника. 2011, вып. 11172
Кислая фосфатаза (ACP, 3.1.3.2). Спектр этого фермента довольно сложен и имеет несколько
полос. Для анализа нами были взяты три четкие зоны активности, кодирование которых осущест-
влялось тремя генными локусами (Acp-2, Acp-3 и Acp-4) Локусы Acp-2 и Acp-4 имели по четыре
аллельных варианта (Acp-20.90, Acp-20.93, Acp-21.00, Acp-21.05 и Acp-40.90, Acp-40.93, Acp-41.00, Acp-41.10),
а локус Acp-3 – три (Acp-30.93, Acp-31.00, Acp-31.05). У J. excelsa в локусе Acp-2 обнаружено три
аллельных варианта, а в локусе Acp-3 – два [9]. При анализе ACP экстрактов хвои Metasequoia
glyptostroboides установлено два мономорфных локуса [12].
Таким образом, для J. oxycedrus из природных популяций Горного Крыма проведен элек-
трофоретический анализ изменчивости изоферментов 9 ферментных систем и диагностировано
18 генных локусов. Из изученной совокупности локусов в исследуемой популяции пять – Got-1,
Got-2, Dia-3, Fdh, Lap-3 – оказались мономорфными. В целом аллельные варианты 15 гетерози-
готных генотипов сегрегируют в соотношении близком к 1:1, а у 3-х – с достоверным наруше-
нием (табл.). Доля этих генотипов составляла 14,3 %. Нарушение сегрегации аллелей довольно
часто встречающееся явление в природных популяциях многих видов хвойных [3, 18] и связано,
как правило, с мейотическими нарушениями, сцеплением леталей, гаметическим драйвом, хро-
мосомными перестройками, гаметическим и эмбриональным отбором [1] и может встречаться
у 25% генотипов [7]. Полученные нами данные подтверждают, что аллельные продукты 18 ло-
кусов наследуются у J. oxycedrus как моногенные признаки и их можно использовать в качестве
молекулярных маркеров для исследования генетической структуры, подразделенности и диффе-
ренциации природных популяций J. oxycedrus в Крыму.
1. Алтухов Ю.П. Генетические процессы в популяциях / Юрий Петрович Алтухов. – 3-е изд. – М.: ИКЦ
«Академкнига», 2003. – 431 с.
2. Алтухов Ю.П. Наследственное биохимическое разнообразие в процессах эволюции и индивидуального
развития / Ю.П. Алтухов, Л.И. Корочкин, Ю.Г. Рычков // Генетика. – 1996. – 32, № 11. – С. 1450–1473.
3. Генетический контроль изоферментов сосны обыкновенной (Pinus sylvestris L.) из Зауралья /
Ю.С. Белоконь, Д.В. Политов, М.М. Белоконь, К.В. Крутовский // Генетика. – 1995. – 31, № 11. –
С. 1521–1528.
4. Григоров А. Н. Семеношение и качество семян можжевельника высокого в Крыму / А.Н. Григоров //
Бюл. Гос. Никитского ботан. сада. – 1979. – Вып. 3 (40). – С. 10–13.
5. Динамика популяционных генофондов при антропогенных воздействиях / Под ред. Ю.П. Алтухова. –
М.: Наука, 2004. – 619 с.
6. Корочкин Л.И. Генетика изоферментов / Л.И. Корочкин, О.Л. Серов, А.И. Пудовкин и др. – М: Наука,
1977. – 275 с.
7. Коршиков И.И. Популяционно-генетические проблемы дендротехногенной интродукции (на примере
сосны крымской) / И.И. Коршиков, Н.С. Терлыга, С.А. Бычков. – Донецк: ООО «Лебедь». – 2002. –
328 с.
8. Коршиков И.И. Генетический полиморфизм можжевельника высокого (Juniperus excelsa Bieb.) в Гор-
ном Крыму / И.И. Коршиков, А.В. Николаева, Т.А. Иваничко, А.И. Репецкая // Промислова ботаніка:
стан та перспективи розвитку: Матер. V міжнар. наук. конф. – 2007. – С. 228–230.
9. Коршиков И.И. Генетический контроль аллозимов у можжевельника высокого (Juniperus excelsa Bieb.)
в Крыму / И.И. Коршиков, А.В. Николаева // Цитология и генетика. – 2007. – Т. 41, № 4. – С. 15–20.
10. Davis B.J. Disk electrophoresis. II. Methods and application to human serum proteins / B.J. Davis //
Ann. N. Y. Acad. Sci. – 1964. – V. 121. – P. 404–427.
11. Ferreyra L.L. Allozyme polymorphosm in Auastrocedrus chilensis (D. Don) florin and Boutelje from
Patagonia, Argentina / L.L. Ferreyra, A. Latino, A. Calderon, C.N. Gardenal // Silvae Genetica. –1996. –
Vol. 45, № 2–3 – P. 61–64.
12. Kuser J. E. Genetic variation in two ex situ collections of the rare Metasequoia glyptostroboides (Cupressaceae)
/ J.E. Kuser, D.L. Sheely, D.R. Hendricks // Silvae Genetica. – 1997. – Vol. 46, № 5 – P. 258–264.
13. Lewandowski A. Inheritance and linkage of allozymes in Juniperus phoenicea L. (Cupressaceae) /
A. Lewandowski, J. Samocko // Acta societatis botanicorum poloniae. – 2000. – Vol. 69, № 3 – P. 201–205.
14. Pastorino M.J. Linkage relationships as a useful tool to state interspecific gene homology: case study with
isozyme loci in Auastrocedrus chilensis (Cupressaceae) / M.J Pastorino, L.A. Gallo // Silvae Genetica – 2001.
– Vol. 50, № 5–6. – P. 233–239.
15. Pichot C. Lack of mother tree alleles in zymograms of Cupressus dupreziana A-Camus embryos / C. Pichot,
B. Fady // Annals of Forest Science. – 2000. –Vol. 57. – P. 17–22.
ISSN 1728-6204 Промышленная ботаника. 2011, вып. 11 173
16. Prakash S. A molecular approach to the study of genic variation in central, marginal and isolated populations
of Drosophila pseudoobscura / S. Prakash, R.C. Lewontin, J.L. Hubby // Genetics. – 1969. – Vol. 61. –
P. 841–858.
17. Raddi S. Genetic diversity in natural Cupressus sempervirens L. populations in Turkey / S. Raddi, S. Sumer //
Biochemical systematics and ecology. – 1999. – Vol. 27. – P. 799–814.
18. Rudin D. Linkage studies in Pinus sylvestris L. – using macro gametophyte allozymes / D. Rudin, I. Ekberg //
Silvae Genetica. – 1978. – Vol. 27. – P. 1–12.
Донецкий ботанический сад НАН Украины Получено 05.08.2011
УДК 575.113:582.477.6(477.75)
ГЕНЕТИЧЕСКИЙ КОНТРОЛЬ АЛЛОЗИМОВ У МОЖЖЕВЕЛЬНИКА КОЛЮЧЕГО
(JuNIPERuS OXYCEDRuS L.) В КРЫМУ
И.И. Коршиков, А.В. Николаева, Л.А., Калафат, А.В. Егорова, Т.А. Иваничко
Донецкий ботанический сад НАН Украины
Изучен генетический контроль 9 ферментных систем у можжевельника колючего (Juniperus oxycedrus L.)
из природных популяций Горного Крыма. В результате электрофоретического разделения изоферментов,
экстрагируемых из гаплоидных эндоспермов семян, идентифицированы 18 локусов, из которых 13 (Gdh,
Mdh-2, Mdh-3, Acp-2, Acp-3, Acp-4, Lap-1, Dia-1, Sod-1, Sod-2, Sod-3, Est-1, Est-2) полиморфные. Анализ
сегрегации аллелей подтверждает их моногенное наследование у гетерозигот.
УДК 575.113:582.477.6(477.75)
GENETIC CONTROL OF ALLOZYMES OF THE JUNIPER PRICKLY
(JuNIPERuS OXYCEDRuS L.) IN THE CRIMEA
I.I. Korshikov, A.V. Nikolaeva, L.A. Kalafat, A.V. Yegorova, T.A. Ivanichko
Donetsk Botanical Garden, National Academy of Sciences of Ukraine
Genetic control of 9 enzyme systems of the juniper prickly (Juniperus oxycedrus L.) from natural populations
of the Crimean Mountains has been studied. After electrophoretic separation of isoenzymes extracted from haploid
endosperms of seeds 18 loci have been identified. Thirteen of them (Gdh, Mdh-2, Mdh-3, Acp-2, Acp-3, Acp-4,
Lap-1, Dia-1, Sod-1, Sod-2, Sod-3, Est-1, Est-2) are polymorphic. The analysis of the allele segregation confirms
their monogenic inheritance in heterozygotes.
|
| id | nasplib_isofts_kiev_ua-123456789-67405 |
| institution | Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine |
| issn | 1728-6204 |
| language | Russian |
| last_indexed | 2025-11-30T12:01:46Z |
| publishDate | 2011 |
| publisher | Донецький ботанічний сад НАН України |
| record_format | dspace |
| spelling | Коршиков, И.И. Николаева, А.В. Калафат, Л.А. Егорова, А.В. Иваничко, Т.А. 2014-09-06T08:27:09Z 2014-09-06T08:27:09Z 2011 Генетический контроль аллозимов у можжевельника колючего (Juniperus oxycedrus l.) в Крыму / И.И. Коршиков, А.В. Николаева, Л.А., Калафат, А.В. Егорова, Т.А. Иваничко // Промышленная ботаника. — 2011. — Вип. 11. — С. 168-173. — Бібліогр.: 18 назв. — рос. 1728-6204 https://nasplib.isofts.kiev.ua/handle/123456789/67405 575.113:582.477.6(477.75) Изучен генетический контроль 9 ферментных систем у можжевельника колючего (Juniperus oxycedrus l.) из природных популяций Горного Крыма. В результате электрофоретического разделения изоферментов, экстрагируемых из гаплоидных эндоспермов семян, идентифицированы 18 локусов, из которых 13 (Gdh, Mdh-2, Mdh-3, Acp-2, Acp-3, Acp-4, Lap-1, Dia-1, Sod-1, Sod-2, Sod-3, Est-1, Est-2) полиморфные. Анализ сегрегации аллелей подтверждает их моногенное наследование у гетерозигот. Genetic control of 9 enzyme systems of the juniper prickly (Juniperus oxycedrus l.) from natural populations of the Crimean Mountains has been studied. After electrophoretic separation of isoenzymes extracted from haploid endosperms of seeds 18 loci have been identified. Thirteen of them (Gdh, Mdh-2, Mdh-3, Acp-2, Acp-3, Acp-4, Lap-1, Dia-1, Sod-1, Sod-2, Sod-3, Est-1, Est-2) are polymorphic. The analysis of the allele segregation confirms their monogenic inheritance in heterozygotes. ru Донецький ботанічний сад НАН України Промышленная ботаника Популяционные и генетические исследования в антропогенно трансформированной среде Генетический контроль аллозимов у можжевельника колючего (Juniperus oxycedrus l.) в Крыму Генетичний контроль алозимів у ялівця колючого (Juniperus oxycedrus L.) у Криму Genetic control of allozymes of the juniper prickly (Juniper us oxycedr us l.) in the Crimea Article published earlier |
| spellingShingle | Генетический контроль аллозимов у можжевельника колючего (Juniperus oxycedrus l.) в Крыму Коршиков, И.И. Николаева, А.В. Калафат, Л.А. Егорова, А.В. Иваничко, Т.А. Популяционные и генетические исследования в антропогенно трансформированной среде |
| title | Генетический контроль аллозимов у можжевельника колючего (Juniperus oxycedrus l.) в Крыму |
| title_alt | Генетичний контроль алозимів у ялівця колючого (Juniperus oxycedrus L.) у Криму Genetic control of allozymes of the juniper prickly (Juniper us oxycedr us l.) in the Crimea |
| title_full | Генетический контроль аллозимов у можжевельника колючего (Juniperus oxycedrus l.) в Крыму |
| title_fullStr | Генетический контроль аллозимов у можжевельника колючего (Juniperus oxycedrus l.) в Крыму |
| title_full_unstemmed | Генетический контроль аллозимов у можжевельника колючего (Juniperus oxycedrus l.) в Крыму |
| title_short | Генетический контроль аллозимов у можжевельника колючего (Juniperus oxycedrus l.) в Крыму |
| title_sort | генетический контроль аллозимов у можжевельника колючего (juniperus oxycedrus l.) в крыму |
| topic | Популяционные и генетические исследования в антропогенно трансформированной среде |
| topic_facet | Популяционные и генетические исследования в антропогенно трансформированной среде |
| url | https://nasplib.isofts.kiev.ua/handle/123456789/67405 |
| work_keys_str_mv | AT koršikovii genetičeskiikontrolʹallozimovumožževelʹnikakolûčegojuniperusoxycedruslvkrymu AT nikolaevaav genetičeskiikontrolʹallozimovumožževelʹnikakolûčegojuniperusoxycedruslvkrymu AT kalafatla genetičeskiikontrolʹallozimovumožževelʹnikakolûčegojuniperusoxycedruslvkrymu AT egorovaav genetičeskiikontrolʹallozimovumožževelʹnikakolûčegojuniperusoxycedruslvkrymu AT ivaničkota genetičeskiikontrolʹallozimovumožževelʹnikakolûčegojuniperusoxycedruslvkrymu AT koršikovii genetičniikontrolʹalozimívuâlívcâkolûčogojuniperusoxycedruslukrimu AT nikolaevaav genetičniikontrolʹalozimívuâlívcâkolûčogojuniperusoxycedruslukrimu AT kalafatla genetičniikontrolʹalozimívuâlívcâkolûčogojuniperusoxycedruslukrimu AT egorovaav genetičniikontrolʹalozimívuâlívcâkolûčogojuniperusoxycedruslukrimu AT ivaničkota genetičniikontrolʹalozimívuâlívcâkolûčogojuniperusoxycedruslukrimu AT koršikovii geneticcontrolofallozymesofthejuniperpricklyjuniperusoxycedruslinthecrimea AT nikolaevaav geneticcontrolofallozymesofthejuniperpricklyjuniperusoxycedruslinthecrimea AT kalafatla geneticcontrolofallozymesofthejuniperpricklyjuniperusoxycedruslinthecrimea AT egorovaav geneticcontrolofallozymesofthejuniperpricklyjuniperusoxycedruslinthecrimea AT ivaničkota geneticcontrolofallozymesofthejuniperpricklyjuniperusoxycedruslinthecrimea |