Зміни морфофункціональних характеристик мезенхімальних клітин матриксу пуповини під час пасажування
Метою даного повідомлення є демонстрація морфологічних змін, що супроводжують культивовані клітини матриксу пуповини людини. У рамках масштабної роботи, головною задачею якої було отримання культури клітин матриксу пуповини, що відповідали б описаним характеристикам МСК, було відмічено деякі тенденц...
Saved in:
| Published in: | Проблемы криобиологии |
|---|---|
| Date: | 2012 |
| Main Authors: | , , , , |
| Format: | Article |
| Language: | Ukrainian |
| Published: |
Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України
2012
|
| Subjects: | |
| Online Access: | https://nasplib.isofts.kiev.ua/handle/123456789/68493 |
| Tags: |
Add Tag
No Tags, Be the first to tag this record!
|
| Journal Title: | Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine |
| Cite this: | Зміни морфофункціональних характеристик мезенхімальних клітин матриксу пуповини під час пасажування / О.О. Маслова, Н.С. Шувалова, О.М. Сухорада, О.Г. Дерябина, М.В. Макаренко // Проблемы криобиологии. — 2012. — Т. 22, № 2. — С. 153-156. — Бібліогр.: 9 назв. — укр., англ. |
Institution
Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine| _version_ | 1860078564696653824 |
|---|---|
| author | Маслова, О.О. Шувалова, Н.С. Сухорада, О.М. Дерябина, О.Г. Макаренко, М.В. |
| author_facet | Маслова, О.О. Шувалова, Н.С. Сухорада, О.М. Дерябина, О.Г. Макаренко, М.В. |
| citation_txt | Зміни морфофункціональних характеристик мезенхімальних клітин матриксу пуповини під час пасажування / О.О. Маслова, Н.С. Шувалова, О.М. Сухорада, О.Г. Дерябина, М.В. Макаренко // Проблемы криобиологии. — 2012. — Т. 22, № 2. — С. 153-156. — Бібліогр.: 9 назв. — укр., англ. |
| collection | DSpace DC |
| container_title | Проблемы криобиологии |
| description | Метою даного повідомлення є демонстрація морфологічних змін, що супроводжують культивовані клітини матриксу пуповини людини. У рамках масштабної роботи, головною задачею якої було отримання культури клітин матриксу пуповини, що відповідали б описаним характеристикам МСК, було відмічено деякі тенденції змін культур у процесі пасажування.
|
| first_indexed | 2025-12-07T17:14:45Z |
| format | Article |
| fulltext |
153
Використання мезенхімальних (мультипотентних)
стовбурових (стромальних) клітин (МСК) – один із
методів сучасної регенеративної медицини. Основни-
ми джерелами МСК вважаються кістковий мозок,
жирова та неонатальні тканини (плацента, пуповина
тощо) [1, 3]. Матрикс пуповини містить похідні поза-
ембріональної мезенхіми, що поєднують властивості
дорослих та ембріональних стовбурових клітин [7].
Згідно з останніми дослідженнями МСК необернено
змінюються протягом пасажування [9]. Але немає
единої думки щодо кількості етапів, які не призводять
до втрати МСК властивостей мультипотентності [6].
Одні автори вказують на наявність значних морфофі-
зіологічних змін клітин вже на етапі 2–3 пасажів [6],
інші – на етапі 5–6 пасажів [4]. Аналіз одержаних
даних підтверджує відсутність уніфікованих методів
підтримання клітин у мультипотентному стані та ставить
під сумнів достатність традиційних критеріїв оцінки
характеристик цього типу клітин.
Метою даного повідомлення є демонстрація мор-
фологічних змін, що супроводжують культивовані клі-
тини матриксу пуповини людини. У рамках масштаб-
ної роботи, головною задачею якої було отримання
культури клітин матриксу пуповини, що відповідали
б описаним характеристикам МСК, було відмічено
деякі тенденції змін культур у процесі пасажування.
Базуючись на даних, отриманих протягом трьох
років роботи з культурами МСК з матриксу пуповини,
ми припускаємо, що розбіжності у стані клітин на
різних пасажах можуть бути пов’язані з індивідуаль-
ними характеристиками донорів клітин.
The application of mesenchymal (multipotent) stem
(stromal) cells (MSCs) is one of the methods in current
regenerative medicine. The main sources of MSCs are
bone marrow, adipose and neonatal (placenta, umbilical
cord etc.) tissues [1, 3]. Matrix of umbilical cord contains
derivatives of post-embryonic mesenchyma combining
peculiarities of mature and embryonic stem cells [7].
According to the recent investigations the MSCs are ir-
reversibly changed during passaging [9]. However, there
is no generally accepted point of view on the number of
steps, which do not result in the loss of multipotency
by MSCs [6]. Some authors report the presence of signi-
ficant morphophysiological changes of cells at the stage
of 2–3 passages [6], others do at the stage of 5–6 passa-
ges [4]. Analysis of the obtained data confirms the ab-
sence of the unified methods of cell maintenance in mul-
tipotent state and puts in doubt the sufficiency of
traditional criteria for assessment of characteristics of
this type of cells.
The research aim was to reveal the morphological
changes, accompanying cultured cells of matrix of
human umbilical cord. Within frames of wide research
a main task was derivation of cell culture of umbilical
cord matrix that would be corresponded to the described
characteristics of MSCs there were revealed some chan-
ges of cultures during passaging.
Based on the data obtained during 3 years of the re-
search in cultures of MSCs from umbilical cord matrix
we suppose that differences in cell state at various pas-
sages may be associated with individual characteristics
of donor cells.
УДК 576; 57.04; 602.9
О.О. МАСЛОВА1,2*, Н.С. ШУВАЛОВА1,3, О.М. СУХОРАДА1, О.Г. ДЕРЯБИНА1,3, М.В. МАКАРЕНКО4
Зміни морфофункціональних характеристик мезенхімальних
клітин матриксу пуповини під час пасажування#
UDC 576; 57.04; 602.9
O.O. MASLOVA1,2*, N.S. SHUVALOVA 1,3, O.M. SUKHORADA1, O.G. DERYABINA1,3, M.V. MAKARENKO4
Changes in Morphofunctional Characteristics of Umbilical
Cord Matrix Mesenchymal Cells During Passaging#
* Автор, якому необхідно надсилати кореспонденцію: вул.
Вишгородська, 67; Київ, Україна 04114; електронна
пошта: rotiferko@gmail.com
* To whom correspondence should be addressed: 67, Vyshgorodska
str., Kyiv, Ukraine 04414; e-mail: rotiferko@gmail.com
1Institute of Genetic and Regenerative Medicine of the National
Academy of Medical Sciences of Ukraine, Kyiv, Ukraine
2Institute of Biology at the Taras Shevchenko National University,
Kiev, Ukraine
3Institute of Molecular Biology and Genetics of the National
Academy of Sciences of Ukraine, Kyiv, Ukraine
4Kiev Maternity Clinic N5
1ДУ «Iнститут генетичної та регенеративної медицини» НАМН
України, м. Київ
2ННЦ «Інститут біології» КНУ імені Тараса Шевченка, м. Київ
3Інститут молекулярної біології і генетики НАН України,
м. Київ
4Міський пологовий будинок №5, просп. Червонозоряний, 2,
м. Київ
# This reseach was presented at minisimposium Stem Cell Day,
held in Kharkov, Ukraine, on the 22th of May, 2012.
#Дослідження було представлене на міні-сімпозіумі «День
стовбурової клітини», що відбувся 22 травня 2012 року в
місті Харкові.
problems
of cryobiology
Vol. 22, 2012, №2
проблемы
криобиологии
Т. 22, 2012, №2
154
More than 300 samples of umbilical cord were ana-
lyzed. The cells were isolated by combined mechanic-
enzymatic method (modified according C.K. Tong [8]).
The obtained mesenchymal cells were cultured in
DMEM (PAA, Austria) with low content of glucose and
supplemented with antibiotics (penicillin and 1%
streptomycin) and antimycotic agent (0.1% amphotery-
cin B), 10% fetal bovine serum (PAA), 2 mM of L-glu-
tamine and 10 nM FGF (Interfarm Biotec). The culturing
was performed in CO2 incubator (37°C, 5% CO2). Cultu-
re flasks (PAA) of 75 and 25 cm2 were used. The cells
were passaged using trypsin and Versen’s solutions mix-
ture when culture achieved 70% confluence. The cells
were inoculated in the amount of 104 per cm2. To assess
the state of culture we used the inverted microscope
Leica DMIL (Germany) and Canon PowerShot 640A
(Japan). FACS-analysis of MSC markers expression
(CD105, CD90, CD73 – BD, USA) was performed with
BD FACSAria cell sorter and BD FACSDiva software at
the Department of Cell and Tissue Technologies of the
Institute of Genetic and Regenerative Medicine of the
National Academy of Medical Sciences of Ukraine by
V.M. Kyryk. Statistical processing of the results was
performed with Excel and x7 ver. 2009 software.
The performed investigations gave the following
results. At the stage of 0–2 passages 10% of samples
were excluded from the experiments due to fungal and
bacterial combination. We did not manage to obtain the
cell culture from 15% of the samples for unclear reasons.
From 75% of umbilical cords we have obtained the cells
of fibroblast-like shape with 20–100 µm length (Fig. 1),
which were inclined to elongation, thinning and forming
dense monolayer when reaching confluent culture. In
the bulk of the studied culture samples the 1st and the
Проаналізовано більше 300 зразків пуповини.
Клітини виділяли за комбінованою механічно-ензима-
тичною методикою (модифікованою за C.K. Tong [8]).
Отримані мезенхімальні клітини культивувались у
середовищі DMEM («РАА», Австрія) з низьким вміс-
том глюкози та додаванням антибіотиків (пеніцилін та
стрептоміцин 1%) та антимікотику (амфотеріцин В
0,1%), 10% ембріональної телячої сироватки («РАА»),
2 мМ L-глютаміну та 10 нM FGF («Інтерфарм Біотек»,
Україна). Культивування проводилось у СО2-інкуба-
торі (37°С, 5% СО2). Використовували культуральні
флакони («PAA») 75 та 25 см2. Клітини пересівали за
допомогою суміші трипсин-версен при досягненні
культурою 70% конфлюентності. Клітини висівали із
розрахунку 104 на см2. Для оцінки стану культур
використовували інвертований мікроскоп «Leica
DMIL» (Німеччина) та фотоапарат «Canon PowerShot
640А» (Японія). FACS-аналіз експресії маркерів МСК
(CD105, CD90, CD73 – «BD», США) виконано на сор-
тері «BD FACSAria» із застосуванням програмного
забезпечення «BD FACSDiva» у відділі клітинних та
тканинних технологій Інституту генетичної та регене-
ративної медицини НАМН України В.М. Кириком.
Статистичну обробку результатів проводили у «MS
Excel» та програмі для статистичної обробки «х7
2009».
В результаті проведених досліджень отримано
наступне. З експериментів були виключені 10% зраз-
ків на етапі 0–2 пасажів у зв’язку з грибковою або
бактеріальною контамінацією. З 15% зразків пуповин
не вдалось отримати культуру клітин без виявлення
конкретної причини. З 75% пуповин було отримано
клітини фібробластоподібної форми довжиною 20–
100 мкм (рис. 1), які при підвищенні конфлюентнос-
ті культури схильні до подовження, стоншення та на-
буття щільного моношару. У більшій частині проана-
лізованих зразків культур достатньо гомогенними за
морфологічними ознаками були 1-й та 2-й пасажі.
Зазвичай 0-й пасаж є досить гетерогенним та контамі-
нованим еритроцитами, які повністю елімінуються ли-
ше після 3–4 змін середовища. У деяких зразках з
3-го пасажу у культурі починають з’являтись пооди-
нокі клітини атипової форми. З подальшим пасажу-
ванням у культурі накопичуються старіючі та гігантські
клітини. Вони вирізняються округлою або полігональ-
ною формою, гетерогенною цитоплазмою, появою
прозорих або темних вакуолей (рис. 2). Встановлено,
що найбільш однорідними є 1-й та 2-й пасажі, проте
велика кількість проаналізованих культур дозволила
спостерігати відмінності у станах культур, отриманих
з різних зразків, на одних і тих самих пасажах. У
25% спостерігалась рання деградація культури: поява
атипових клітин та зниження швидкості проліферації
Рис. 1. Жива незабарвлена культура МСК, 1-й пасаж, ×100.
Fig. 1. Viable non-stained culture of MSCs, the 1st passage,
×100.
problems
of cryobiology
Vol. 22, 2012, №2
проблемы
криобиологии
Т. 22, 2012, №2
155
ляція клітин 0-го пасажу є найбільш гетерогенною за
ступенем експресії CD90 (min 8%, max 97,8%), а
популяція клітин 3-го пасажу – за ступенем експресії
CD105 (min 5,5%, max 75%). Це може вказувати на
індивідуальні відмінності між зразками пуповини.
Найбільшою стабільністю експресії володіє маркер
CD73 (від min 70,1% на 6-му пасажі до max 99,3%
на 1-му пасажі) – його експресія найменше змінюєть-
2nd passages were rather homogenous by morphological
characteristics. Usually culture of passage 0 was rather
heterogenic and contaminated by erythrocytes which
were entirely eliminated only after 3–4 changes of the
medium. In some samples we observed single cells of
atypical shape starting to appear from the 3rd passage.
Further passaging was accompanied with accumulation
of the senescent and giant cells in the culture. They we-
re distinguished by rounded and polygonal shape, hetero-
genic cytoplasm, appearance of clear and dark vacuoles
(Fig. 2). It was established that the most homogenous
were the 1st and the 2nd passages, but a great number of
analyzed cultures enabled to observe the differences in
state of cultures obtained from different samples at the
same passages. In 25% of samples we noted early cul-
ture degradation: appearance of atypical cells and decrea-
se in proliferation rate (sometimes even at the 1st passa-
ge), in 50% the culture preserved fibroblast-like morpho-
logy till the 3rd through the 6th passage. This investigation
is the evidence for non-homogeneity of umbilical cord
samples as the material for obtaining MSCs.
Positive expression of typical markers (CD105,
CD90, CD73) is one of the main characteristics of MSCs
[5]. According to our data the expression of surface
markers by mesenchymal cells of umbilical cord matrix
had a tendency to change through passages and reached
the minimal average values at the 6th passage. An average
number of cells in population (in percents) expressed
the typical markers is shown in Fig. 3. We observed the
tendency to the lowering of expression intensity for
CD105 and CD90 markers from the 1st to the 6th passages
but these changes were not statistically significant (p >
0.05) due to the presence of essential differences in ex-
Рис. 2. Атипові клітини у культурі МСК на 2–3-му пасажах. Живі,
незабарвлені, ×200.
Fig. 2. Atypical cells in MSC culture in the 2nd and the 3rd passages.
Vital non-stained cells, ×200.
(інколи вже на 1-му пасажі), а у 50% –
культура зберігала фібробластоподібну
морфологію до 3–6-го пасажу. Це спосте-
реження є доказом неоднорідності зразків
пуповини як матеріалу для отримання МСК.
Експресія типових позитивних маркерів
(CD105, CD90, CD73) – одна з основних
характеристик МСК [5]. Згідно з нашими
даними експресія поверхневих маркерів
мезенхімальними клітинами матриксу пу-
повини має тенденцію змінюватись у паса-
жах і сягати найменших середніх значень
на етапі 6-го пасажу. Середню кількість клі-
тин у популяції (у відсотках), що експре-
сують типові маркери, показано на рис. 3.
Спостерігається тенденція до зниження
інтенсивності експресії маркерів CD105 та
CD90 від 1 до 6-го пасажів, проте ці зміни
не є статистично достовірними (р > 0,05)
через наявність значних відмінностей у
експресії в межах одного пасажу. Попу-
Рис. 3. Тенденції змін експресії позитивних поверхневих
маркерів МСК у пасажах (показано середні значення та
стандартна помилка середнього): – CD90; – CD105;
– CD73.
Fig. 3. Trends of changes in the expression of MSCs positive
surface markers in passages (mean values and standard
mean error are presented): – CD90; – CD105; – CD73.
0
10
20
30
40
50
60
70
80
90
100
0 1 3 6
Пасаж Passage Nr.
Кі
ль
кіс
ть
к
лі
ти
н,
п
оз
ит
ив
ни
х
за
м
ар
ке
ро
м
,
%
N
um
be
r o
f c
el
ls
, p
os
iti
ve
b
y
su
bs
eq
ue
nt
m
ar
ke
r,
%
problems
of cryobiology
Vol. 22, 2012, №2
проблемы
криобиологии
Т. 22, 2012, №2
156
pression within one passage. Cell population of passage
0 was the most heterogenic by expression level of CD90
(min 8%, max 97.8%) and cell population of the 3rd
passage was the most heterogenic by expression level
of CD105 (min 5.5%, max 75%). This may point to
individual differences between umbilical cord samples.
Marker CD73 had the most stable expression (from min
70.1% at the 6th passage up to max 99.3% in the 1st
passage) and within one passage the range of values is
the least. It should be mentioned that the cultures
characterized by the highest homogeneity and expressed
fibroblast-like shape of cells demonstrated also higher
expression indices of positive surface markers.
Thus it could be supposed that the differences in
properties of the cultures grown in standard conditions
may be associated with individual peculiarities of each
umbilical cord sample. These samples may differ de-
pending on the health state of mother and newborn as
well as the influence of different chemical substances
(including drugs) during pregnancy and labor. The obtai-
ned data may be potentially useful to develop and optimize
the ways of cryopreservation of mesenchymal cells from
umbilical cord matrix.
Література
1. Augello A., Kurth TB., De Bari C. Mesenchymal stem cells: a
perspective from in vitro cultures to in vivo migration and ni-
che. // Eur. Cell Mater. – 2010. – Vol. 20. – P. 121–133.
2. Bieback K., Brinkmann I. Mesenchymal stromal cells from hu-
man perinatal tissues: From biology to cell therapy // World J.
Stem Cells. – 2010. – Vol. 2, №4. – P. 81–92.
3. Taghizadeh R.R., Cetrulo K.J., Cetrulo C.L. Wharton's Jelly
stem cells: Future clinical applications // Placenta. – 2011. –
Vol. 32, Suppl. 4. – P. S311–315.
4. Wagner W., Horn P., Castoldi M. et al. Replicative senescence
of mesenchymal stem cells: A сontinuous and organized
process // PLoS ONE. – 2008. – Vol. 3, №5. –P. e2213.
5. Osipova E.Y,. Shamanskaya T.V., Kurakina O.A. et al. Biological
characteristics of mesenchymal stem cells during ex vivo ex-
pansion // Br. J. Med. Med. Res. – 2011. – Vol. 1, №3. – P. 85–95.
6. Angelucci S., Marchisio M., Di Giuseppe F. et. al. Proteome ana-
lysis of human Wharton's jelly cells during in vitro expansion //
Proteome Science. – 2010. – Vol. 8: 18.
7. Chong P., Selvaratnam L., Abbas A., Kamarul T. Human peri-
pheral blood derived mesenchymal stem cells demonstrate
similar characteristics and chondrogenic differentiation poten-
tial to bone marrow derived mesenchymal stem cells //J. Orthop.
Res. – 2011. – Vol. 30, №4. – P. 634–642.
8. Tong C.K., Vellasamy S., Tan B.C. Generation of mesenchymal
stem cell from human umbilical cord tissue using a combination
enzymatic and mechanical disassociation method //Cell Biol.
Int. – 2011. – Vol. 35, №3. – P. 221–226 .
9. Dominici M., Le Blanc K., Mueller I. et. al. Minimal criteria for
defining multipotent mesenchymal stromal cells. The Interna-
tional Society for Cellular Therapy position statement //Cyto-
therapy. – 2006. – Vol. 8, №4. – P. 315–317.
Поступила 01.06.2012
ся під час пасажування, а у межах одного пасажу
розкид значень є найменшим. Варто зазначити, що
культури, які характеризувались більшою гомогенніс-
тю та вираженою фібробластоподібною формою клі-
тин, демонстрували й вищі показники експресії пози-
тивних поверхневих маркерів.
Отже, можна припустити, що відмінності у власти-
востях культур, що вирощувались у стандартних
умовах, можуть бути пов’язані з індивідуальними
особливостями кожного зі зразків пуповини, що мо-
жуть відрізнятись у залежності від стану здоров’я но-
вонародженого та матері, а також від впливу різних
хімічних речовин (у тому числі ліків) протягом ва-
гітності та пологів. Отримані дані можуть бути потен-
ційно корисними при розробці та оптимізації способів
кріоконсервування мезенхімальних клітин матриксу
пуповини.
References
1. Augello A., Kurth TB., De Bari C. Mesenchymal stem cells: a
perspective from in vitro cultures to in vivo migration and ni-
che. // Eur. Cell Mater. – 2010. – Vol. 20. – P. 121–133.
2. Bieback K., Brinkmann I. Mesenchymal stromal cells from hu-
man perinatal tissues: From biology to cell therapy. //World J.
Stem Cells. – 2010. – Vol. 2, N4. – P. 81–92.
3. Taghizadeh R.R., Cetrulo K.J., Cetrulo C.L. Wharton's Jelly
stem cells: Future clinical applications // Placenta. – 2011. –
Vol. 32, Suppl. 4. – P. S311–315.
4. Wagner W., Horn P., Castoldi M. et al. Replicative senescence
of mesenchymal stem cells: A sontinuous and organized
process // PLoS ONE. – 2008. – Vol. 3, N5. –P. e2213.
5. Osipova E.Y,. Shamanskaya T.V., Kurakina O.A. et al. Biological
characteristics of mesenchymal stem cells during ex vivo ex-
pansion // Br. J. Med. Med. Res. – 2011. – Vol. 1, N3. – P. 85–95.
6. Angelucci S., Marchisio M., Di Giuseppe F. et. al. Proteome ana-
lysis of human Wharton's jelly cells during in vitro expansion //
Proteome Science. – 2010. – Vol. 8: 18.
7. Chong P., Selvaratnam L., Abbas A., Kamarul T. Human peri-
pheral blood derived mesenchymal stem cells demonstrate
similar characteristics and chondrogenic differentiation poten-
tial to bone marrow derived mesenchymal stem cells //J. Orthop.
Res. – 2011. – Vol. 30, N4. – P. 634–642.
8. Tong C.K., Vellasamy S., Tan B.C. Generation of mesenchymal
stem cell from human umbilical cord tissue using a combination
enzymatic and mechanical disassociation method //Cell Biol.
Int. – 2011. – Vol. 35, N3. – P. 221–226 .
9. Dominici M., Le Blanc K., Mueller I. et. al. Minimal criteria for
defining multipotent mesenchymal stromal cells. The Interna-
tional Society for Cellular Therapy position statement //Cyto-
therapy. – 2006. – Vol. 8, N4. – P. 315–317.
Accepted 01.06.2012
problems
of cryobiology
Vol. 22, 2012, №2
проблемы
криобиологии
Т. 22, 2012, №2
|
| id | nasplib_isofts_kiev_ua-123456789-68493 |
| institution | Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine |
| issn | 0233-7673 |
| language | Ukrainian |
| last_indexed | 2025-12-07T17:14:45Z |
| publishDate | 2012 |
| publisher | Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України |
| record_format | dspace |
| spelling | Маслова, О.О. Шувалова, Н.С. Сухорада, О.М. Дерябина, О.Г. Макаренко, М.В. 2014-09-25T07:23:45Z 2014-09-25T07:23:45Z 2012 Зміни морфофункціональних характеристик мезенхімальних клітин матриксу пуповини під час пасажування / О.О. Маслова, Н.С. Шувалова, О.М. Сухорада, О.Г. Дерябина, М.В. Макаренко // Проблемы криобиологии. — 2012. — Т. 22, № 2. — С. 153-156. — Бібліогр.: 9 назв. — укр., англ. 0233-7673 https://nasplib.isofts.kiev.ua/handle/123456789/68493 576; 57.04; 602.9 Метою даного повідомлення є демонстрація морфологічних змін, що супроводжують культивовані клітини матриксу пуповини людини. У рамках масштабної роботи, головною задачею якої було отримання культури клітин матриксу пуповини, що відповідали б описаним характеристикам МСК, було відмічено деякі тенденції змін культур у процесі пасажування. Дослідження було представлене на міні-сімпозіумі «День стовбурової клітини», що відбувся 22 травня 2012 року в місті Харкові. uk Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України Проблемы криобиологии Краткие сообщения Зміни морфофункціональних характеристик мезенхімальних клітин матриксу пуповини під час пасажування Changes in Morphofunctional Characteristics of Umbilical Cord Matrix Mesenchymal Cells During Passaging Article published earlier |
| spellingShingle | Зміни морфофункціональних характеристик мезенхімальних клітин матриксу пуповини під час пасажування Маслова, О.О. Шувалова, Н.С. Сухорада, О.М. Дерябина, О.Г. Макаренко, М.В. Краткие сообщения |
| title | Зміни морфофункціональних характеристик мезенхімальних клітин матриксу пуповини під час пасажування |
| title_alt | Changes in Morphofunctional Characteristics of Umbilical Cord Matrix Mesenchymal Cells During Passaging |
| title_full | Зміни морфофункціональних характеристик мезенхімальних клітин матриксу пуповини під час пасажування |
| title_fullStr | Зміни морфофункціональних характеристик мезенхімальних клітин матриксу пуповини під час пасажування |
| title_full_unstemmed | Зміни морфофункціональних характеристик мезенхімальних клітин матриксу пуповини під час пасажування |
| title_short | Зміни морфофункціональних характеристик мезенхімальних клітин матриксу пуповини під час пасажування |
| title_sort | зміни морфофункціональних характеристик мезенхімальних клітин матриксу пуповини під час пасажування |
| topic | Краткие сообщения |
| topic_facet | Краткие сообщения |
| url | https://nasplib.isofts.kiev.ua/handle/123456789/68493 |
| work_keys_str_mv | AT maslovaoo zmínimorfofunkcíonalʹnihharakteristikmezenhímalʹnihklítinmatriksupupovinipídčaspasažuvannâ AT šuvalovans zmínimorfofunkcíonalʹnihharakteristikmezenhímalʹnihklítinmatriksupupovinipídčaspasažuvannâ AT suhoradaom zmínimorfofunkcíonalʹnihharakteristikmezenhímalʹnihklítinmatriksupupovinipídčaspasažuvannâ AT derâbinaog zmínimorfofunkcíonalʹnihharakteristikmezenhímalʹnihklítinmatriksupupovinipídčaspasažuvannâ AT makarenkomv zmínimorfofunkcíonalʹnihharakteristikmezenhímalʹnihklítinmatriksupupovinipídčaspasažuvannâ AT maslovaoo changesinmorphofunctionalcharacteristicsofumbilicalcordmatrixmesenchymalcellsduringpassaging AT šuvalovans changesinmorphofunctionalcharacteristicsofumbilicalcordmatrixmesenchymalcellsduringpassaging AT suhoradaom changesinmorphofunctionalcharacteristicsofumbilicalcordmatrixmesenchymalcellsduringpassaging AT derâbinaog changesinmorphofunctionalcharacteristicsofumbilicalcordmatrixmesenchymalcellsduringpassaging AT makarenkomv changesinmorphofunctionalcharacteristicsofumbilicalcordmatrixmesenchymalcellsduringpassaging |