Клональная мультипотентность стволовых/прогениторных клеток – производных нервного гребня из бульбарного региона волосяного фолликула взрослых млекопитающих

Gespeichert in:
Bibliographische Detailangaben
Veröffentlicht in:Проблемы криобиологии и криомедицины
Datum:2013
1. Verfasser: Васильев, Р.Г.
Format: Artikel
Sprache:Russisch
Veröffentlicht: Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України 2013
Schlagworte:
Online Zugang:https://nasplib.isofts.kiev.ua/handle/123456789/68735
Tags: Tag hinzufügen
Keine Tags, Fügen Sie den ersten Tag hinzu!
Назва журналу:Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine
Zitieren:Клональная мультипотентность стволовых/прогениторных клеток – производных нервного гребня из бульбарного региона волосяного фолликула взрослых млекопитающих / Р.Г. Васильев // Проблемы криобиологии и криомедицины. — 2013. — Т. 23, № 3. — С. 279-282. — Бібліогр.: 9 назв. — рос., англ.

Institution

Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine
_version_ 1860135566245363712
author Васильев, Р.Г.
author_facet Васильев, Р.Г.
citation_txt Клональная мультипотентность стволовых/прогениторных клеток – производных нервного гребня из бульбарного региона волосяного фолликула взрослых млекопитающих / Р.Г. Васильев // Проблемы криобиологии и криомедицины. — 2013. — Т. 23, № 3. — С. 279-282. — Бібліогр.: 9 назв. — рос., англ.
collection DSpace DC
container_title Проблемы криобиологии и криомедицины
first_indexed 2025-12-07T17:46:51Z
format Article
fulltext УДК 576.3+612.014.2/3 Р.Г. Васильев1,2* Клональная мультипотентность стволовых/прогениторных клеток – производных нервного гребня из бульбарного региона волосяного фолликула взрослых млекопитающих# UDC 576.3+612.014.2/3 R.G. Vasyliev1,2* Clonal Multipotency of Neural Crest-Derived Stem/Progenitor Cells from Bulge Region of Adult Mammal Hair Follicle# Ключевые слова: нервный гребень, мультипотентные стволовые/прогениторные клетки, мультилинейная дифференцировка. Ключові слова: нервовий гребінь, мультипотентні стовбурові/прогеніторні клітини, мультилінійне диференціювання. Key words: neural crest, multipotent stem/progenitor cells, multilineage differentiation. *Адрес для корреспонденции: ул. Вышгородская, 67, г. Киев, Украина 04114; электронная почта: rvasiliev@ukr.net *Address for correspondence: 67, Vyshgorodskaya str., Kiev, Ukraine 04414 e-mail: rvasiliev@ukr.net 1Institute of Genetic and Regenerative Medicine of the National Academy of Medical Sciences of Ukraine, Kiev, Ukraine 2Biotechnological Laboratory ilaya regeneration, Medical Com- pany ilaya, Kiev, Ukraine 1ГУ «Институт генетической и регенеративной медицины НАМН Украины», г. Киев, Украина 2Биотехнологическая лаборатория ilaya regeneration, Медицинская компания ilaya, г. Киев, Украина Поступила 15.06.2013 Принята в печать 30.08.2013 Проблемы криобиологии и криомедицины. – 2013. – Т. 23, №3. – С. 279–282. © 2013 Институт проблем криобиологии и криомедицины НАН Украины Received June, 15, 2013 Accepted August, 30, 2013 Problems of Cryobiology and Cryomedicine. – 2013. – Vol. 23, Nr. 3. – P. 279–282. © 2013 Institute for Problems of Cryobiology and Cryomedicine В последнее десятилетие из различных источников взрослого организма млекопитающих (тканей и ор- ганов) выделены мультипотентные стволовые клетки – производные нервного гребня (МСК-ПНГ) [4–6, 8, 9], их характерной особенностью является способ- ность к направленной дифференцировке в меланоци- ты, «нейральные» (нейроны и глия) и «мезенхималь- ные» клеточные типы. Для МСК-ПНГ из большинства источников спо- собность к «мезенхимальной» дифференцировке по- казана только в направлении миофибробластов и/или гладкомышечных клеток. Наиболее широкий диффе- ренцировочный потенциал был определен у постна- тальных МСК-ПНГ из бульбарного региона волося- ного фолликула: нейроны, Шванновские клетки, ме- ланоциты, гладкомышечные клетки и хондроциты [8]. В работах других авторов была показана их способ- ность к дифференцировке в адипоциты и остеобласты [1, 3], однако способность к дифференцировке в «ме- зенхимальные» и «нейрональные» клеточные типы не была показана на клональном уровне. Цель данной работы заключалась в исследовании способности клональных культур МСК-ПНГ к диф- ференцировке в «мезенхимальные» и «нейрональные» клеточные типы. During the recent decade a variety of adult mammal sources (tissues and organs) were used to procure neural crest-derived multipotent stem cells (NCD-MSCs) [4– 6, 8, 9], which feature was the ability to directed diffe- rentiation into melanocytes, ‘neural’ (neurons and glia) and ‘mesenchymal’ cell types . The ‘mesenchymal‘ differentiation of NCD-MSCs from most sources was found to yield only myofibro- blasts and/or smooth muscle cells. The widest differen- tiation potential has been revealed in the postnatal NCD- MSCs from the hair follicle bulge region: i.e. neurons, Schwann cells, melanocytes, smooth muscle cells and chondrocytes [8]. Their ability to differentiate into adi- pocytes and osteoblasts was also reported [1, 3], but the ability to differentiate into ‘mesenchymal’ and ‘neu- ronal’ cell types was not shown at the clonal level so far. The aim of this study was to estimate the ability of NCD-MSC clonal cultures to differentiate into ‘mesen- chymal’ and ‘neuronal’ cell types. The experiments were performed in cell cultures derived from 4 month-old male FVB mice in compliance with the bioethical principles and biosafety regulations, as confirmed by the Bioethics committee of the Institute день стволовой клетки. краткое сообщение stem cell day. short communication #This reseach was presented at minisymposium Stem Cell Day, held in Kiev, Ukraine, on the 24th of May, 2013. #Данное исследование было представлено на минисимпозиуме «День стволовой клетки», проходившем 24 мая 2013 года в г. Киеве. Эксперименты были выполнены на клеточных культурах, полученных от самцов мышей линии FVB 4-месячного возраста, с соблюдением принципов био- этики и норм биологической безопасности, что под- тверждено заключением комиссии по биоэтике ГУ «Институт генетической и регенеративной меди- цины НАМН Украины». Культуру МСК-ПНГ получали из эксплантатов бульбарного региона (БР) волосяного фолликула (ВФ) вибрисс по методу M. Sieber-Blum [8] в нашей модификации [2]. Всего в работе было исследовано 3 культуры от различных доноров. Для получения первичных и клональных культур, а также направлен- ной дифференцировки использовали культуральную посуду, предварительно покрытую коллагеном I типа (за исключением дифференцировки в нейрональном направлении, при которой в качестве субстрата при- меняли поли-L-лизин). Получение клональных культур МСК-ПНГ. По 100 клеток из культуры первого пассажа МСК-ПНГ за- севали в чашки Петри 100 мм и культивировали 14 су- ток в среде следующего состава: DMEM/F12 с 20% ЭТС, 1% витаминов MEM, 2% питательной добавки «Neuronal Stem Cell Supplement» («PAA», Австрия), 2% питательной добавки ITS («Becton Dickinson», США) 10 нг/мл bFGF и 2 мМ глутамина. Для полу- чения клональных культур отбирали колонии, содер- жащие более 100 клеток (в среднем ~500–1000 кле- ток), и пересевали при помощи клонирующих ци- линдров («Sigma», США) в культуральный флакон Т-25 (по 3 клона от каждого донора). Направленную дифференцировку в адипогенном и остеогенном направлениях осуществляли по обще- принятым протоколам [7] с последующей оценкой цитохимическим методом (окрашивание Oil Red O и Alizarin Red S соответственно). Направленную дифференцировку в нейрональном направлении осуществляли в среде следующего сос- тава: «Neuronal Base Medium P» («РАА»), 10% экс- тракта мышиного головного мозга, 1% «Neuronal Stem Cell Supplement», 2% питательной добавки «NeuroMix» («РАА»), 2 мкМ ретиноевой кислоты («Sigma»), 5 нг/мл bFGF и 20 нг/мл EGF («Sigma»). Длительность дифференцировки – 11 дней. Направленную дифференцировку в глиальном на- правлении (Шванновские клетки) осуществляли в среде следующего состава: «Neuronal Base Medi- um P», 10% экстракта мышиного головного мозга, 1% «Neuronal Stem Cell Supplement», 2 мкМ ретиное- вой кислоты, 100 нМ изопротеренола («Sigma») 5 нг/мл bFGF и 40 нг/мл EGF. Длительность диффе- ренцировки – 11 дней. Иммуноцитохимия. Для детекции нейрональной дифференцировки использовали первичные мышиные anti-β-III-tubulin (TU-20) моноклональные антитела (1:500, «Abcam», Великобритания) и вторичные козьи of Genetic and Regenerative Medicine of the National Academy of Medical Sciences of Ukraine. The culture of NCD-MSCs was obtained from the bulge region (BR) explants of whisker hair follicle (HF) according to method of Sieber-Blum et al. [8] in our modification [2]. The investigation involved three cultures from different donors. Primary and clonal culturing and directed differentiation was performed in culture labware pre-coated with type I collagen (except neuronal differentiation, where the substrate was poly- L-lysine). Obtaining of NCD-MSC clonal cultures. Hundred cells from the first passage NCD-MSC culture were seeded in each 100 mm Petri dish and cultured thereafter during 14 days in DMEM/F12 medium supplemented with 20% FBS, 1% MEM vitamins, 2% Neuronal Stem Cell Supplement (PAA, Austria), 2% ITS (Becton Dickin- son, USA), 10 ng/ml bFGF, and 2 mM of glutamine. To perform cloning the colonies containing more than 100 cells were selected (in average ~500–1,000 cells) and passaged using cloning cylinders (Sigma, USA) in culture flasks T25 (3 clones from each donor). Directed differentiation into adipogenic and osteogenic lineages was carried-out according conven- tional protocols [7], and confirmed cytochemically (Oil Red O and Alizarin Red S staining, respectively). Directed differentiation into neuronal lineage was performed in Neuronal Base Medium P (PAA) supple- mented with 10% of murine brain extract, 1% Neuronal Stem Cell Supplement, 2% NeuroMix (PAA), 2 µM reti- noic acid (Sigma), 5 ng/ml bFGF, and 20 ng/ml EGF (Sigma). The differentiation lasted 11 days. Directed glial differentiation (Schwann cells) was carried-out in Neuronal Base Medium P supplemented with 10% murine brain extract, 1% Neuronal Stem Cell Supplement, 2 µM retinoic acid, 100 nM isoproterenol (Sigma), 5 ng/ml bFGF, and 40 ng/ml EGF. The differen- tiation lasted 11 days. Immunocytochemistry. Neuronal differentiation was revealed using primary mouse anti-β-III-tubulin (TU- 20) monoclonal antibodies (1:500, Abcam, UK) and secondary goat anti-mouse FITC-conjugated antibodies (1:2000, Abcam). Differentiation into Schwann cells was found using primary mouse anti-S-100 monoclonal anti- bodies (1:500, Abcam) and secondary goat anti-mouse FITC-conjugated antibodies (1:2000, Abcam). The antibodies were kindly provided by Dr. Galina Bozhok from the Institute for Problems of Cryobiology and Cryo- medicine (Kharkiv). The cell nuclei were stained with propidium iodide (2 µg/ml). Intravital microscopy and cytological study of speci- mens were performed using inverted fluorescent micros- cope Axio Observer A1, equipped with a digital camera AxioCam ERc 5s, ZEN 2012 and AxioVision 4.8 software as well as fluorescence filter set 77 (FITC and PI) (all by Carl Zeiss, Germany). 280 проблемы криобиологии и криомедицины problems of cryobiology and cryomedicine том/volume 23, №/issue 3, 2013 anti-mouse FITC-конъюгированные антитела (1:2000, «Abcam»). Для обна- ружения дифференцировки в Шван- новские клетки использовали первич- ные мышиные anti-S-100 монокло- нальные антитела (1:500, «Abcam») и вторичные козьи anti-mouse FITC- конъюгированные антитела (1:2000, «Abcam»). Антитела были любезно предоставлены ст.н.с. Института проб- лем криобиологии и криомедицины НАН Украины (г. Харьков) Г.А. Божок. Ядра клеток окрашивали раство- ром пропидиума йодида (2 мкг/мл). Прижизненную микроскопию и исследование цитологических препа- ратов проводили при помощи инвер- тированного флуоресцентного микро- скопа «Axio Observer A1», оснащен- ного цифровой камерой «AxioCam ERc 5s», программного обеспечения «ZEN 2012» и «AxioVision 4.8», а также набора фильтров для флуорес- ценции №77 (FITC и PI) (все – «Carl Zeiss», Германия). Проведенные исследования позво- лили обнаружить, что эмиграция и активная пролиферация фиброблас- тоидных клеток начинались на 2– 4-е сутки культивирования из всех эксплантированных БР ВФ. На 10-е сутки культивирования эксплантаты удаляли и клетки пересевали во фла- кон Т-25. При достижении культурой субконфлуентного состояния клетки Направленная дифференцировка клональных культур МСК-ПНГ: А – адипо- генная дифференцировка; окрашивание Oil Red O, контрастирование по Рома- новскому; светлопольная микроскопия в проходящем свете, масштабный отрезок – 50 мкм; B – остеогенная дифференцировка; окрашивание Alizarin Red S, светлопольная микроскопия в проходящем свете, масштабный от- резок – 50 мкм; C – дифференцировка в глиальном направлении (Шванновские клетки), экспрессия клетками специфического для глии белка S-100, флуорес- центная микроскопия, масштабный отрезок – 20 мкм; D – дифференцировка в нейрональном направлении, экспрессия клетками нейрон-специфического белка β-III-тубулина; флуоресцентная микроскопия, масштабный отрезок – 20 мкм. Directed differentiation of NCD-MSC clonal cultures: А – adipogenic differentiation; Oil Red O staining, counterstaining according Romanowsky; bright field transmitted light microscopy, bar 50 µm; B – osteogenic differentiation; Alizarin Red S staining, bright field transmitted light microscopy, bar 50 µm; C – glial differentiation (Schwann cells), expression of glial specific protein S-100, fluorescent microscopy, bar 20 µm; D – neuronal differentiation, expression of neuron specific protein β-III-tubulin; fluorescent microscopy, bar 20 µm. снимали и использовали для получения клональных культур. Из всех (n = 9) отобранных колоний удалось успешно получить клональные культуры с достаточ- ным для дальнейших экспериментов количеством клеток. При культивировании клональных культур фибро- бластоидных клеток из БР ВФ в соответствующих индуктивных дифференцировочных средах с клетка- ми происходили морфологические и функциональ- ные изменения, характерные для данного направления дифференцировки. Так, при культивировании в адипо- индуктивной среде клетки приобретали округло-поли- гональную форму, в цитоплазме появлялись мелкие липидные вакуоли, которые со временем увеличива- лись в размерах и окрашивались красителем Oil Red O (рисунок, A). При культивировании в остеоиндук- тивной среде клетки приобретали полигональную форму и начинали продуцировать кальцифициро- ванный внеклеточный матрикс, который окрашивался красителем Alizarin Red S (рисунок, B). Направленная A B C D The research revealed that the emigration and active proliferation of fibroblastoid cells started to 2–4th culture days in all explanted HF BR. To the 10th day of culture the explants were removed and the cells were passaged in T-25 flask. After the culture reached the subconfluen- cy the cells were detached and used for obtaining clonal cultures. All the selected colonies (n = 9) successfully deve- loped the clones with cell amount sufficient for further experiments. Clonal culture of fibroblastic cells derived from HF BR in appropriate differentiation media resulted in mor- phological and functional changes observed in the cells which were specific to the chosen direction of differen- tiation. In particular, the cells cultured in adipoinductive medium were of rounded polygonal shape, their cyto- plasm acquired small lipid vacuoles, their size increased eventually and staining with dye Oil Red O was positive (Figure A). The cells cultured in osteoinductive medium became polygonal and started producing calcified extra- cellular matrix, positively stained with Alizarin Red S проблемы криобиологии и криомедицины problems of cryobiology and cryomedicine том/volume 23, №/issue 3, 2013 281 Литература 1. Васильев Р.Г. Мультипотентные стволовые клетки из буль- барного региона волосяного фолликула со свойствами производных нервного гребня // Проблемы криобиологии. – 2012. – Т. 22, №2. – С. 165–168. 2. Патент №66086 Украина, МПК C 12 N 5/00. Способ культивирования мультипотентных стволовых клеток – производных нервного гребня из бульбарного региона волосяного фолликула взрослых млекопитающих / Р.Г. Васильев, А.Е. Родниченко, И.Ф. Лабунец, Г.М. Бутенко; № u 2011 06227; заявл. 18.05.2011; опубл. 26.12.2011, Бюл. № 24. 3. Clewes O., Narytnyk A., Gillender K. et al. Human epidermal neural crest stem cells (hEPI-NCSC) – characterization and directed differentiation into osteocytes and melanocytes // Stem Cell Rev. – 2011. – Vol. 7, №4. – P. 799–814. 4. Hunt D., Sajic M., Phillips H. et al. Origins of gliogenic stem cell populations within adult skin and bone marrow // Stem Cells Dev. – 2010. – Vol. 19, №7. – P. 1055–1065. 5. Janebodin K., Horst O.V., Ieronimakis N. et al. Isolation and characterization of neural crest-derived stem cells from dental pulp of neonatal mice // PLoS One. – 2011. – Vol. 6, №11. – e27526. 6. Kruger G.M., Mosher J.T., Bixby S. et al. Neural crest stem cells persist in the adult gut but undergo changes in self-renewal, neuronal subtype potential, and factor responsiveness // Neuron. – 2002. – Vol. 35, №4. – P. 657–669. 7. Prockop D.J., Phinney D.G., Bunnell B.A. Mesenchymal stem cells: methods and protocols. – Totowa, NJ: Humana Press, 2008. – 192 p. 8. Sieber-Blum M., Grim M., Hu Y. et al. Pluripotent neural crest stem cells in the adult hair follicle // Dev. Dyn. – 2004. – Vol. 231, №2. – P. 258–269. 9. Tomita Y., Matsumura K., Wakamatsu Y. et al. Cardiac neural crest cells contribute to the dormant multipotent stem cell in the mammalian heart // J. Cell Biol. – 2005. – Vol. 170, №7. – P. 1135–1146. References 1. Vasyliev R.G. Multipotent stem cells of bulbar region of hair follicle with properties of neural crest derivatives // Problems of Cryobiology. – 2012. – Vol. 22, N2. – P. 165–168. 2. Patent N66086 Ukraine, IPC C 12 N 5/00. Method of cultivation of neural crest-derived mesenchymal stem cells from bulbar region of adult mammal hair follicle / R.G. Vasyliev, A.Ye. Rod- nichenko, I.F. Labunets, G.M. Butenko; Nr. U 2011 06227; Filed 18.05.2011; Published 26.12.2011, Bulletin N24. 3. Clewes O., Narytnyk A., Gillender K. et al. Human epidermal neural crest stem cells (hEPI-NCSC) – characterization and directed differentiation into osteocytes and melanocytes // Stem Cell Rev. – 2011. – Vol. 7, N4. – P. 799–814. 4. Hunt D., Sajic M., Phillips H. et al. Origins of gliogenic stem cell populations within adult skin and bone marrow // Stem Cells Dev. – 2010. – Vol. 19, N7. – P. 1055–1065. 5. Janebodin K., Horst O.V., Ieronimakis N. et al. Isolation and characterization of neural crest-derived stem cells from dental pulp of neonatal mice // PLoS One. – 2011. – Vol. 6, N11. – e27526. 6. Kruger G.M., Mosher J.T., Bixby S. et al. Neural crest stem cells persist in the adult gut but undergo changes in self-renewal, neuronal subtype potential, and factor responsiveness // Neuron. – 2002. – Vol. 35, N4. – P. 657–669. 7. Prockop D.J., Phinney D.G., Bunnell B.A. Mesenchymal stem cells: methods and protocols. – Totowa, NJ: Humana Press, 2008. – 192 p. 8. Sieber-Blum M., Grim M., Hu Y. et al. Pluripotent neural crest stem cells in the adult hair follicle // Dev. Dyn. – 2004. – Vol. 231, N2. – P. 258–269. 9. Tomita Y., Matsumura K., Wakamatsu Y. et al. Cardiac neural crest cells contribute to the dormant multipotent stem cell in the mammalian heart // J. Cell Biol. – 2005. – Vol. 170, N7. – P. 1135–1146. дифференцировка в «нейральные» клеточные типы также приводила к характерным морфологическим изменениям и экспрессии специфических для нейро- нов и глиальных (Шванновских) клеток белков. Так, при направленной дифференцировке в нейроны фиб- робластоидные клетки трансформировались в клетки с округлой фазо-яркой сомой и длинными отрост- ками, которые позитивно окрашивались на β-III-тубу- лин (рисунок, C). Культивируемые в индуктивной для глиальной дифференцировки среде клетки приобре- тали характерную для Шванновских клеток морфоло- гию и экспрессировали специфический для глии бе- лок S-100 (рисунок, D). Таким образом, в данной работе на клональных культурах показано существование в бульбарном регионе волосяного фолликула взрослых животных мультипотентных стволовых/прогениторных клеток – производных нервного гребня, обладающих способ- ностью к дифференцировке как в «мезенхимальные», так и в «нейрональные» клеточные типы. (Figure B). Directed differentiation into ‘neural’ cell types also led to appearance of characteristic morphological changes and expression of proteins specific for neuronal and glial (Schwann) cells. Specifically, during directed differentiation into neurons the fibroblastoids transfor- med into cells with a rounded phase-bright soma and long processes positively stained for β-III-tubulin (Figu- re C). The cells cultured in the glial inductive medium acquired the morphology characteristic for Schwann cells and expressed glial-specific protein S-100 (Figu- re D). Collectively, the studies performed in clonal culture allowed to reveal the existence of neural crest-derived multipotent stem/progenitor cells in the bulbar region of the adult animals hair follicle, which possessed the ability to differentiate into ‘mesenchymal’ and ‘neuronal’ cell types. 282 проблемы криобиологии и криомедицины problems of cryobiology and cryomedicine том/volume 23, №/issue 3, 2013
id nasplib_isofts_kiev_ua-123456789-68735
institution Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine
issn 2307-6143
language Russian
last_indexed 2025-12-07T17:46:51Z
publishDate 2013
publisher Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України
record_format dspace
spelling Васильев, Р.Г.
2014-09-27T16:34:49Z
2014-09-27T16:34:49Z
2013
Клональная мультипотентность стволовых/прогениторных клеток – производных нервного гребня из бульбарного региона волосяного фолликула взрослых млекопитающих / Р.Г. Васильев // Проблемы криобиологии и криомедицины. — 2013. — Т. 23, № 3. — С. 279-282. — Бібліогр.: 9 назв. — рос., англ.
2307-6143
https://nasplib.isofts.kiev.ua/handle/123456789/68735
576.3+612.014.2/3
Данное исследование было представлено на минисимпозиуме «День стволовой клетки», проходившем 24 мая 2013 года в г. Киеве.
ru
Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України
Проблемы криобиологии и криомедицины
День стволовой клетки. краткие сообщения
Клональная мультипотентность стволовых/прогениторных клеток – производных нервного гребня из бульбарного региона волосяного фолликула взрослых млекопитающих
Clonal Multipotency of Neural Crest-Derived Stem/Progenitor Cells from Bulge Region of Adult Mammal Hair Follicle
Article
published earlier
spellingShingle Клональная мультипотентность стволовых/прогениторных клеток – производных нервного гребня из бульбарного региона волосяного фолликула взрослых млекопитающих
Васильев, Р.Г.
День стволовой клетки. краткие сообщения
title Клональная мультипотентность стволовых/прогениторных клеток – производных нервного гребня из бульбарного региона волосяного фолликула взрослых млекопитающих
title_alt Clonal Multipotency of Neural Crest-Derived Stem/Progenitor Cells from Bulge Region of Adult Mammal Hair Follicle
title_full Клональная мультипотентность стволовых/прогениторных клеток – производных нервного гребня из бульбарного региона волосяного фолликула взрослых млекопитающих
title_fullStr Клональная мультипотентность стволовых/прогениторных клеток – производных нервного гребня из бульбарного региона волосяного фолликула взрослых млекопитающих
title_full_unstemmed Клональная мультипотентность стволовых/прогениторных клеток – производных нервного гребня из бульбарного региона волосяного фолликула взрослых млекопитающих
title_short Клональная мультипотентность стволовых/прогениторных клеток – производных нервного гребня из бульбарного региона волосяного фолликула взрослых млекопитающих
title_sort клональная мультипотентность стволовых/прогениторных клеток – производных нервного гребня из бульбарного региона волосяного фолликула взрослых млекопитающих
topic День стволовой клетки. краткие сообщения
topic_facet День стволовой клетки. краткие сообщения
url https://nasplib.isofts.kiev.ua/handle/123456789/68735
work_keys_str_mv AT vasilʹevrg klonalʹnaâmulʹtipotentnostʹstvolovyhprogenitornyhkletokproizvodnyhnervnogogrebnâizbulʹbarnogoregionavolosânogofollikulavzroslyhmlekopitaûŝih
AT vasilʹevrg clonalmultipotencyofneuralcrestderivedstemprogenitorcellsfrombulgeregionofadultmammalhairfollicle