Воздействие консервирования на белки внеклеточного матрикса сосудистых протезов

Gespeichert in:
Bibliographische Detailangaben
Veröffentlicht in:Проблемы криобиологии и криомедицины
Datum:2014
Hauptverfasser: Шевченко, Е.В., Тыныныка, Л.Н., Михайлова, И.П., Сандомирский, Б.П., Наумова О.В.
Format: Artikel
Sprache:Russisch
Veröffentlicht: Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України 2014
Schlagworte:
Online Zugang:https://nasplib.isofts.kiev.ua/handle/123456789/68841
Tags: Tag hinzufügen
Keine Tags, Fügen Sie den ersten Tag hinzu!
Назва журналу:Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine
Zitieren:Воздействие консервирования на белки внеклеточного матрикса сосудистых протезов / Е.В. Шевченко, Л.Н. Тыныныка, И.П. Михайлова, Б.П. Сандомирский, О.В. Наумова // Проблемы криобиологии и криомедицины. — 2014. — Т. 24, № 3. — С. 262-267. — Бібліогр.: 11 назв. — рос., англ.

Institution

Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine
_version_ 1860174709751021568
author Шевченко, Е.В.
Тыныныка, Л.Н.
Михайлова, И.П.
Сандомирский, Б.П.
Наумова О.В.
author_facet Шевченко, Е.В.
Тыныныка, Л.Н.
Михайлова, И.П.
Сандомирский, Б.П.
Наумова О.В.
citation_txt Воздействие консервирования на белки внеклеточного матрикса сосудистых протезов / Е.В. Шевченко, Л.Н. Тыныныка, И.П. Михайлова, Б.П. Сандомирский, О.В. Наумова // Проблемы криобиологии и криомедицины. — 2014. — Т. 24, № 3. — С. 262-267. — Бібліогр.: 11 назв. — рос., англ.
collection DSpace DC
container_title Проблемы криобиологии и криомедицины
first_indexed 2025-12-07T17:59:27Z
format Article
fulltext УДК 612.014.481+612.59]611.13.068 Е.В. Шевченко1, Л.Н. Тыныныка1*, И.П. Михайлова1, Б.П. Сандомирский1, О.В. Наумова2 Воздействие консервирования на белки внеклеточного матрикса сосудистых протезов UDC 612.014.481+612.59]611.13.068 E.V. Shevchenko1, L.N. Tynynyka1*, I.P. Mikhaylova1, B.P. Sandomirsky1, O.V. Naumova2 Effect of Cryopreservation on Extracellular Matrix Proteins of Vascular Prostheses Ключевые слова: ионизирующее излучение, замораживание, оптическая плотность, коллаген, эластин, моноклональные антитела. Ключові слова: іонізуюче випромінювання, заморожування, оптична щільність, колаген, еластин, моноклональні антитіла. Key words: ionizing radiation, freezing, optical density, collagen, elastin, monoclonal antibodies. *Автор, которому необходимо направлять корреспонденцию: ул. Переяславская, 23, г. Харьков, Украина 61015; тел.: (+38 057) 372-74-35, факс: (+38 057) 373-30-84, электронная почта: alvia7@mail.ru *To whom correspondence should be addressed: 23, Pereyaslavskaya str., Kharkov, Ukraine 61015; tel.:+380 57 372 7435, fax: +380 57 373 3084, e-mail: alvia7@mail.ru 1Department of Experimental Cryomedicine, Institute for Problems of Cryobiology and Cryomedicine of the National Academy of Sci- ences of Ukraine, Kharkov, Ukraine 2Kharkov Medical University, Kharkov, Ukraine 1Отдел экспериментальной криомедицины, Институт проблем криобиологии и криомедицины НАН Украины, г. Харьков 2 Харьковский национальный медицинский университет Поступила 08.04.2014 Принята в печать 29.04.2014 Проблемы криобиологии и криомедицины. – 2014. – Т. 24, №3. – С. 262–267. © 2014 Институт проблем криобиологии и криомедицины НАН Украины Received April, 08, 2014 Accepted April, 29, 2014 Probl. Cryobiol. Cryomed. 2014. 24(3): 262–267. © 2014 Institute for Problems of Cryobiology and Cryomedicine краткое сообщение short communication При протезировании сосудов малого диаметра актуальным остается вопрос о наличии адекватного сосудистого заменителя – скаффолда. Современные методы девитализации ксеноартерий, как правило, ос- нованы на продолжительной обработке ткани разными химическими агентами. Принцип их действия состоит в разрушении клеточных и соединительно-тканных элементов биообъекта, что является причиной сниже- ния механической прочности и пролонгированной цитотоксичности. Эти свойства ухудшают качество биопротезов из-за кальциноза, тромбоза и фибрози- рования, что может приводить к потере функциональ- ных свойств протезов и необходимости повторных операций [8–10]. Эти эффекты значительно ограничи- вают внедрение «химических» методик в практику предварительной обработки сосудов при импланта- ции. В нашей работе был предложен принципиально новый подход к созданию девитализированных со- судистых ксенопротезов малого диаметра, вклю- чающий предварительную обработку биоматериала с использованием физических факторов (заморажи- вание-отогрев, ионизирующее облучение) [2, 3, 7]. Цель работы – изучение влияния низких темпе- ратур и ионизирующего облучения на структуру бел- ков внеклеточного матрикса (коллагена и эластина) при создании бесклеточных ксеногенных сосудистых скаффолдов. Внутригрудные артерии выделяли у беспородных половозрелых свиней с соблюдением правил биоэти- ки, утвержденных в ИПКиК, и в соответствии с When prosthetic repairing the small diameter vessels a question on the presence of adequate vascular sub- stitute, scaffolds has still remained actual. Current me- thods of xenoartery devitalization are usually based on a continuous treatment of tissue with chemical agents. Principally, their action consists in destruction of cellular and connective elements of a biological specimen, that results in a decreased mechanical strength and a long- term cytotoxicity. These properties worsen the quality of bioprostheses due to appeared calcinosis, thrombosis, and fibrosis, that may lead to a loss of functional pro- perties of prostheses and a need in further repeated sur- geries [2, 5, 9]. These obstacles significantly limit the implementation of chemical-based techniques into the practice of pre-treatment of vessels for implantation. In our previous investigations we suggested a novel ap- proach to procure devitalized vascular small diameter xenoprostheses, which involved the pre-treatment of bio- logical specimen with physical factors (freeze-thawing, ionizing radiation) [3, 4, 8]. This research was aimed to study the effect of low temperature and ionizing radiation exposures on the structure of extracellular matrix proteins (collagen and elastin) when procuring cell-free xenogenic vascular scaffolds. Intrathoracic arteries were isolated in breedless mature pigs with meeting bioethical rules approved at the Institute for Problems of Cryobiology and Cryo- medicine of the National Academy of Sciences of Uk- raine in accordance with the General Principles of проблемы криобиологии и криомедицины problems of cryobiology and cryomedicine том/volume 24, №/issue 3, 2014 263 «Общими этическими принципами экспериментов на животных», одобренными III Национальным конгрес- сом по биоэтике (г. Киев, 2007) и согласованными с положениями «Европейской конвенции о защите позвоночных животных, используемых для экспери- ментальных и других научных целей» (г. Страсбург, 1986). Промытые артерии помещали в криоконтей- неры («Eurotubo», «Deltalab», Испания) и хранили в жидком азоте (–196°С) до момента использования [7]. Максимальный срок хранения достигал 9 меся- цев. Образцы артерий отогревали на водяной бане при 37°С и подвергали ионизирующему облучению не позднее 90 мин от момента отогрева. Артерии были разделены на 4 группы: I – (контроль) нативные артерии (n = 10); II – внутригрудные артерии после воздействия низких температур (n = 10); III – нативные облученные артерии (n = 10); IV – внутри- грудные артерии после воздействия низких темпера- тур и облучения (n = 10). Облучение образцов артерий было проведено на базе Национального научного центра «Харьковский физико-технический институт» Национальной академии наук Украины (ННЦ ХФТИ) с помощью линейного ускорителя электронов ЛУЭ- 2000 (ХФТИ, Украина) в дозе 25 кГр, при этом энергия облучения составляла до 10 МэВ, средний ток – 1 мА [1]. Доза 25 кГр была выбрана как минимально необходимая для обеспечения стериль- ности медицинских материалов [11]. Иммуногисто- химические исследования ткани аорты проводили с помощью антител к коллагену I, III типов и эластину («GeneTex», США) с использованием полимерного пероксидазного набора для иммуноокрашивания PolyVue HRP/DAB Detection Systems «Diagnostic BioSystems», («DAKO InVision», Нидерланды) [4, 5]. Проведенные эксперименты позволили установить следующее. Иммуногистохимическое окрашивание выявило экспрессию моноклональных антител (МКАт) к эластину во внутренней эластической мем- бране нативной аорты свиней, которая имеет диф- фузный интенсивный характер, а в средней оболоч- ке – умеренно диффузный (рисунок C). Экспрессия МКАт к коллагену І типа также определяется диф- фузно в стенке нативных образцов, имеет умеренно выраженный характер в медии, интенсивный – в интиме и адвентиции (рисунок А). Экспрессия МКАт к коллагену ІІІ типа очагово визуализируется во всех слоях стенки нативных образцов сосудов и носит умеренный характер (рисунок В). Показатели опти- ческой плотности эластина, коллагенов І и ІІІ типов нативных образцов сосудов представлены в таблице. При комплексном изучении образцов нативных артерий свиней гистологическая картина, степень выраженности гистохимических и иммуногистохи- мических реакций соответствуют нормальному строению нативных сосудов. Experiments in Animals (3rd National Congress in Bio- ethics, Kyiv, 2007) and the statements of European Convention for the Protection of Vertebrate Animals Used for Experimental and Other Scientific Purposes (Stras- bourg, 1986). Washed arteries were placed into cryo- containers (Eurotubo, Deltalab, Spain) and stored in liquid nitrogen (–196°C) until the use [8]. The maximal storage term reached 9 months. Artery samples were thawed in water bath at 37°C and exposed to ionizing radiation not later than 90 min after thawing. The arteries were divided in 4 groups: group 1 (control) comprised native (i.e. untreated) arteries, (n = 10); group 2 consis- ted of intrathoracic arteries after low temperature expo- sure (n = 10); group 3 was made up of native irradiated arteries (n = 10); group 4 included the arteries after low temperature and radiation exposures (n = 10). Samples were irradiated at the premises of the National Science Center Kharkov Institute of Physics and Technology of the National Academy of Sciences of Ukraine (NSC KIPT) with linear accelerator of electrons LAE-2000 (NSC KIPT) in 25 kGy dose, the radiation energy was up to 10 MeV, with 1 mA average current [1]. The dose of 25 kGy was selected as the minimum required one to ensure the sterility for medical supplies [10]. Aortic tis- sues were studied immunohistochemically using anti- bodies to collagen I, III and elastin (GeneTex, USA) using polymer peroxidase kit for immune staining PolyVue HRP/DAB Diagnostic BioSystems (DAKO EnVision, Netherlands) [6, 7]. The performed investigations allowed to reveal the following. Immunohistochemical study showed the expression of monoclonal antibodies (MAB) against elastin in internal elastic membrane of pig native aorta: that had diffuse and intensive character, middle part of membrane had moderately diffuse staining (Fig. C). Diffuse anti-collagen I MAB expression was also found in a wall of native samples: the media was stained moderately, the intima and adventitia were coloured intensively (Fig. A). MAB expression against collagen III was presented focally through the entire wall of native vascular samples and was of a moderate cha-racter (Fig. B). Indices of optical density exhibited by elastin, collagens I and III of native vessel samples are presented in the Table. Histological pattern, mani-festation rate of histochemical and immunohistochemical responses correspond to a normal structure of native vessels when the samples of native porcine arteries have been overall studied. Histochemical investigation revealed an expression of MAB against elastin in a wall of irradiated aortal samp- les, which was characterized by a moderately distributed locuses in internal elastic membrane, and only slightly manifested reaction in the intermediate and external membranes (Fig. F). The MAB expression against col- lagen I was diffuse in aortic wall of irradiated samples, 264 проблемы криобиологии и криомедицины problems of cryobiology and cryomedicine том/volume 24, №/issue 3, 2014 На основании иммуногистохимического исследо- вания в стенке облученных образцов аорты была определена экспрессия МКАт к эластину, во внутрен- ней эластической мембране, которая имеет умеренную интенсивность распределения визуализируемых локусов, а в средней и наружной оболочке – слабо moderate in the media and more manifested in the intima and adventitia (Fig. D). The MAB expression against collagen III was focal in all the layers of vascular wall of irradiated samples and had a moderate intensity (Fig. E). The performed immunohistochemical study in the samples of irradiated native arteries allowed finding a Экспрессия МКАт в стенке свиных артерий: A, B, C – нативных; D, E, F – после воздействия ионизирующего облучения; G, H, I – после замораживания-отогрева; J, K, L – после облучения и замораживания-отогрева; A, D, G, J – к коллагену І типа; B, E, H, K – к коллагену ІІІ типа; C, F, I, L – к эластину; ×200. MAB expression in porcine arterial wall: A, B, C – native (untreated); D, E, F – following ionizing irradiation; G, H, I – post freeze-thawing; J, K, L – post freeze-thawing and irradiation; A, D, G, J – against collagen I; B, E, H, K – against collagen III; C, F, I, L – against elastin; ×200. BA ED F HG I KJ L C Нативные артерии Native arteries Облучение Irradiation Замораживание- отогрев Freeze-thawing Замораживание- отогрев и облучение Freeze-thawing and irradiation Коллаген І типа Collagen I Коллаген IIІ типа Collagen III Эластин Elastin проблемы криобиологии и криомедицины problems of cryobiology and cryomedicine том/volume 24, №/issue 3, 2014 265 выраженная (рисунок F). Экспрессия МКАт к колла- гену І типа определяется диффузно в стенке аорты облученных образцов и имеет умеренно выраженный характер в медии и более выраженный – в интиме и адвентиции (рисунок D). Экспрессия МКАт к колла- гену ІІІ типа очагово визуализируется во всех слоях стенки сосуда облученных образцов и носит умерен- ный характер (рисунок E). Результаты проведенного иммуногистохимичес- кого исследования образцов облученных нативных артерий свидетельствуют об умеренно выраженной деформации и очаговых деструктивных изменениях эластических и коллагеновых волокон, которые со- провождаются значимым снижением оптической плотности эластина и повышением оптической плот- ности коллагена ІІІ типа по сравнению с соответст- вующими показателями в группе нативных образцов (таблица), при этом целостность соединительноткан- ных волокон сохранена. При иммуногистохимическом исследовании в стенке сосудов после криовоздействия диффузно ви- зуализируется интенсивно выраженная экспрессия МКАт к эластину во внутренней эластической мем- бране, а в средней и наружной оболочках – умеренно выраженная (рисунок I). Экспрессия МКАт к колла- гену І типа определяется диффузно в стенке артерии и имеет умеренно выраженный характер в медии и более интенсивный – в интиме и адвентиции (рису- нок G). Экспрессия МКАт к коллагену ІІІ типа очаго- во визуализируется во всех слоях стенки сосуда после криовоздействия и носит умеренный характер в медии и более интенсивный – во внутренней и на- ружной оболочках (рисунок H). Полученные данные свидетельствуют о том, что при действии низких температур в клеточных элементах всех слоев стенки сосудов развиваются преимущественно деструктивные изменения в виде некробиоза и некроза гладких мышечных клеток, фибробластов, эндотелиоцитов [2, 3, 6, 7]. Для колла- геновых волокон характерно очаговое набухание, которое сопровождается значимым снижением опти- ческой плотности коллагена І типа (рисунок G). Пока- затели оптической плотности эластина и коллагена ІІІ типа имеют тенденцию к снижению, однако значимо не изменяются по сравнению с группой нативных артерий (рисунок H, I). В целом соединительно- тканные волокна сохраняют свое пространственное расположение и структуру. При иммуногистохимическом исследовании образцов артерий после криовоздействия и облучения экспрессия МКАт к эластину во внутренней элас- тической мембране распределяется очагово и носит умеренный характер, как и в средней оболочке – соответственно (рисунок L). Экспрессия МКАт к коллагену І типа определяется диффузно в стенке артерии, имеет умеренную интен- moderate deformation and focal destructive changes in elastic and collagen fibres, accompanied with a signi- ficant decrease in optical density of elastin and increase in optical density of collagen III as compared to the corresponding indices in the group of native samples (Table), in this case the integrity of connective fibres was preserved. Following cryoexposure the vascular wall had an intensive MAB expression against elastin which was diffuse in internal elastic membrane, and moderate in the intermediate and external membranes (Fig. I). The MAB expression against collagen I was diffuse in arterial wall: moderate in the media and more intensive in the intima and adventitia (Fig. G). The MAB expression to collagen III was of focal character in all the layers of vascular wall post cryoexposure: moderate in the media and more intensive in internal and external membranes (Fig. H). Our findings testify to the development of mainly destructive changes in terms of necrobiosis and necrosis of smooth muscle cells, fibroblasts, endotheliocytes ob- served through the cells of all the layers of vascular wall following low temperature exposure [3, 4, 8, 11]. A focal swelling, accompanied with a significant decrease in optical density of collagen I was charac- teristic to collagen fibres (Fig. G). Indices of optical density of elastin and collagen III had a tendency to reduce, but no statistically significant changes as com- Показатели оптической плотности эластина и колла- гена в стенке артерии после действия замораживания и облучения (M ± m), усл. ед. опт. пл. Indices of elastin and collagen optical density in arterial wall following freezing and radiation exposures (M ± m), rel. units of optical density ыппурГ spuorG нитсалЭ nitsalE ІнегаллоK апит InegalloC ІІІнегаллоK апит IIInegalloC йынвитаН цезарбо elpmasevitaN 800,0±141,0 600,0±231,0 600,0±221,0 елсопыцзарбО яинавижаромаз retfaselpmaS gnizeerf 600,0±221,0 500,0±101,0 2 600,0±121,0 елсопыцзарбО яинавижаромаз яинечулбои retfaselpmaS dnagnizeerf noitaidar 600,0±821,0 600,0±621,0 700,0±741,0 1 ийынвитаН йыннечулбо цезарбо dnaevitaN elpmasdetaidarri 400,0±680,0 3 700,0±041,0 800,0±851,0 2 Примечание: различия статистически значимы по отноше- нию к показателям нативных артерий: 1 – р < 0,05; 2 – р < 0,01; 3 – р < 0,001. Note: the differences are significant if compared to the data of native (untreated) arteries: 1 – р < 0.05; 2 – р < 0.01; 3 – р < 0.001. 266 проблемы криобиологии и криомедицины problems of cryobiology and cryomedicine том/volume 24, №/issue 3, 2014 pared to the group of native arteries were found (Fig. H, I). In a whole the connective fibres preserved their spatial location and structural integrity. Immunohistochemical investigation of arterial samp- les after cryoexposure and radiation revealed the MAB expression against elastin in internal elastic membrane which was focally distributed and had a moderate character in a middle membrane as well (Fig. L). The MAB expression against collagen I was diffusive in arterial wall: moderate in the media, and intensive in the intima and adventitia (Fig. J). The MAB expression against collagen III was focally distributed in all the layers of vascular wall and had either moderate or intensive character (Fig. K). Microscopic view of preparations subjected to cryo- exposure and irradiation, as well as the degree of histo- chemical responses manifestation in this group of samp- les testified to the explicated destructive changes of cell elements in arterial wall with total karyopyknosis and karyorhexis [11]. Nevertheless the connective compo- nents of vascular wall (internal elastic membrane, elastic and collagen fibers) preserved their integrity, as testified by a significant increase in optical density of collagen III and a decrease of the index for elastin and collagen I as compared to the studied indices in native vessels. The results of immunohistochemical investigation conducted in the samples of irradiated arteries allowed to establish, that focal and destructive changes in elastic and collagen fibers were accompanied with a significant reduction of optical density of elastin and an increased one for collagen III as compared to the corresponding indices of the group of native (untreated) arteries. Most destructive changes in terms of necrobiosis and necrosis of smooth muscle cells, fibroblasts, endo- theliocytes were found in cells of all the layers of arterial wall from the vessels subjected to cryoexposure. Col- lagen fibers had focal swelling, resulting in a significant decrease in optical density of collagen I. Microscopic view of vascular samples following cryoexposure and irradiation testified to significant destructive changes in cells in terms of total karyo- pyknosis and karyorhexis. However, the connective components of vascular wall preserved their integrity, as testified by a significant rise in optical density of collagen III as compared to the corresponding indices in the group of native vessels. сивность распределения локусов выраженный харак- тер в медии, а также интенсивный – в интиме и адвен- тиции (рисунок J). Экспрессия МКАт к коллагену ІІІ типа визуально распределяется очагово во всех слоях стенки сосуда и носит умеренный или интенсивный характер (рисунок K). Микроскопическая картина препаратов после криовоздействия и облучения, а также степень выра- женности гистохимических реакций в этой группе образцов свидетельствуют о эксплицированных де- структивных изменениях клеточных элементов в стенке артерий с тотальным кариопикнозом и карио- рексисом [6]. Вместе с тем соединительнотканные компоненты стенки сосудов (внутренняя эластическая мембрана, эластические и коллагеновые волокна) сохраняют свою целостность, о чем свидетельствуют значимое повышение оптической плотности коллагена ІІІ типа и тенденция к уменьшению соответствую- щего показателя для эластина и коллагена І типа по сравнению с исследуемыми показателями в натив- ных сосудах. Таким образом, было установлено, что очаговые и деструктивные изменения эластических и коллаге- новых волокон облученных нативных артерий сопро- вождались значимым снижением оптической плотно- сти эластина и повышением оптической плотности коллагена ІІІ типа по сравнению с соответствующими показателями в группе нативных. После криовоздействия на сосуды в клеточных элементах всех слоев стенки сосудов развивались преимущественно деструктивные изменения в виде некробиоза и некроза гладких мышечных клеток, фибробластов, эндотелиоцитов. Коллагеновые волок- на визуализировались с очаговым набуханием, в результате чего значимо снижалась оптическая плот- ность коллагена І типа. Микроскопическая картина образцов сосудов после криовоздействия и облучения свидетельствует о выраженных деструктивных изменениях клеточных элементов с тотальным кариопикнозом и кариорек- сисом. Вместе с тем соединительнотканные компо- ненты стенки сосудов сохраняют свою целостность, о которой свидетельствует значимое повышение оп- тической плотности коллагена ІІІ типа по сравнению с соответствующими показателями в группе нативных сосудов. Литература 1. Борискин В.Н., Ванжа С.А., Верещака В.Н. и др. Развитие ра- диационных технологий и испытаний в НИК «Ускоритель» ННЦ ХФТИ // Вопросы атомной науки и техники. Серия: Ядерно- физические исследования. – 2008. – Т. 50. – №5. – С. 150–154. 2. Бызов Д.В., Сынчикова О.П., Пушкова Е.Н. и др. Биотех- нологические аспекты создания трансплантатов арте- рий // Біотехнологія. – 2010. – Т. 3. – №3. – С. 21–30. References 1. Boriskin V.N., Vanzha S.A., Vereschaka V.N. et al. Development of radiation technologies and trials at RDC "Accelerator" of "NSC KIPT". Problems of Atomic Science and Technique. Nuclear Physics Investigations Series 2008; 50(5); 150–154. 2. Borschel G.H., Huang Y.C., Calve S., Arruda E.M. et al. Tissue engineering of recellularized small-diameter vascular grafts. Tissue Eng 2005; 11(5–6): 778–786. проблемы криобиологии и криомедицины problems of cryobiology and cryomedicine том/volume 24, №/issue 3, 2014 267 3. Byzov D.B., Synchikova O.P., Pushkova E.N. et al. Biotechno- logical aspects in designing arterial transplants. Biotekhnologiya 2010; 3(3): 21–30. 4. Byzov D.V., Chizh N.A., Mikhailova I.P. et al. Devitalized vascular prostheses, in vivo study. Vestnik Transplantologii i Iskusstven- nykh Organov 2011; 12(4): 81–90. 5. Kannan R.Y., Salacinski H.J., Butler P.E. et al. Current status of prosthetic bypass grafts: A review. J Biomed Mater Res Appl Biomater 2005; 74(1): 570–581. 6. Lilli R.D., Fullmer H.M. editors. Histopathologic technique and practical histochemistry. 4th ed. New York: McGraw-Hill; 1976. 7. Pearse A.G.E., editor. Histochemistry, theoretical and applied. 4th ed. Edinburgh: Churchill Livingstone; 1985. 8. Sandomirsky B.P., Byzov D.V., Mikhailova I.P., Synchikova O.P. et al., inventors. Way to prepare xenogenic arteries for vascular prosthesis. Patent of Ukraine N 68379 IPC A61L27/ 00, A01N1/02. 2012 March 26. 9. Schmidt C.E., Baier J.M. Acellular vascular tissues: natural biomaterials for tissue repair and tissue engineering. Bio- materials 2000; 21(2): 2215–2231. 10. Sterilization of health care products-radiation sterilization - substantiation of 25 KGray as a sterilization dose for small or infrequent production batches. TC198, ICS:11.080.01, ISO/ TS13409:2002, International Organization for Standardization, 2002. 11. Tynynyka L.N., Shevchenko E.V., Mikhailova I.P., Sandomir- sky B.P. Effect of freezing and ionizing radiation on the integrity of cell elements of arteries. Eksperimentalna i Klinichna Meditsyna 2013; (4):51–56. 3. Бызов Д.В., Чиж Н.А., Михайлова И.П. и др. Девитализи- рованные сосудистые протезы, исследование in vivo // Вестник трансплантологии и искусственных органов. – 2011. – Т. 12. – №4. – С. 81–90. 5. Гистохимия (теоретическая и прикладная) / Под ред. Э. Пирса. – М.: Иностранная литература, 1962. – 962 с. 4. Патогистологическая техника и практическая гистохимия / Под ред. Р. Лилли. – М.: Мир, 1960. – 648 с. 6. Тыныныка Л.Н., Шевченко Е.В., Михайлова И.П., Сандо- мирский Б.П. Влияния замораживания и ионизирующего излучения на целостность клеточных элементов арте- рий // Експериментальна і клінічна медицина. – 2013. – №4. – С. 51–56. 7. Пат. №68379, Україна, МПК А61L27/00, А01N1/02. Спосіб підготовки ксеногенних артерій для судинного проте- зування / Сандомирський Б.П., Бизов Д.В., Михайлова І.П., Синчикова О.П. та ін. – № u201110193; заявл. 19.08.2011; опубл. 26.03.2012, Бюл. №6. 8. Borschel G.H., Huang Y.C., Calve S., Arruda E.M. et al. Tissue engineering of recellularized small-diameter vascular grafts // Tissue Eng. – 2005. – Vol.11, №5–6. – P. 778–786. 9. Kannan R.Y., Salacinski H.J., Butler P.E. et al. Current status of prosthetic bypass grafts: A review // J. Biomed. Mater. Res. Appl. Biomater. – 2005. – Vol. 74, №1. – P. 570–581. 10. Schmidt C.E., Baier J.M. Acellular vascular tissues: natural biomaterials for tissue repair and tissue engineering // Biomaterials. – 2000. – Vol. 21, №2.– P. 2215–2231. 11. Sterilization of health care products-radiation sterilization- substantiation of 25 KGray as a sterilization dose for small or infrequent production batches. TC198, ICS:11.080.01, ISO/ TS13409:2002, International Organization for Standardization, 2002.
id nasplib_isofts_kiev_ua-123456789-68841
institution Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine
issn 2307-6143
language Russian
last_indexed 2025-12-07T17:59:27Z
publishDate 2014
publisher Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України
record_format dspace
spelling Шевченко, Е.В.
Тыныныка, Л.Н.
Михайлова, И.П.
Сандомирский, Б.П.
Наумова О.В.
2014-09-30T06:36:35Z
2014-09-30T06:36:35Z
2014
Воздействие консервирования на белки внеклеточного матрикса сосудистых протезов / Е.В. Шевченко, Л.Н. Тыныныка, И.П. Михайлова, Б.П. Сандомирский, О.В. Наумова // Проблемы криобиологии и криомедицины. — 2014. — Т. 24, № 3. — С. 262-267. — Бібліогр.: 11 назв. — рос., англ.
2307-6143
https://nasplib.isofts.kiev.ua/handle/123456789/68841
612.014.481+612.59]611.13.068
ru
Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України
Проблемы криобиологии и криомедицины
Краткие сообщения
Воздействие консервирования на белки внеклеточного матрикса сосудистых протезов
Effect of Cryopreservation on Extracellular Matrix Proteins of Vascular Prostheses
Article
published earlier
spellingShingle Воздействие консервирования на белки внеклеточного матрикса сосудистых протезов
Шевченко, Е.В.
Тыныныка, Л.Н.
Михайлова, И.П.
Сандомирский, Б.П.
Наумова О.В.
Краткие сообщения
title Воздействие консервирования на белки внеклеточного матрикса сосудистых протезов
title_alt Effect of Cryopreservation on Extracellular Matrix Proteins of Vascular Prostheses
title_full Воздействие консервирования на белки внеклеточного матрикса сосудистых протезов
title_fullStr Воздействие консервирования на белки внеклеточного матрикса сосудистых протезов
title_full_unstemmed Воздействие консервирования на белки внеклеточного матрикса сосудистых протезов
title_short Воздействие консервирования на белки внеклеточного матрикса сосудистых протезов
title_sort воздействие консервирования на белки внеклеточного матрикса сосудистых протезов
topic Краткие сообщения
topic_facet Краткие сообщения
url https://nasplib.isofts.kiev.ua/handle/123456789/68841
work_keys_str_mv AT ševčenkoev vozdeistviekonservirovaniânabelkivnekletočnogomatriksasosudistyhprotezov
AT tynynykaln vozdeistviekonservirovaniânabelkivnekletočnogomatriksasosudistyhprotezov
AT mihailovaip vozdeistviekonservirovaniânabelkivnekletočnogomatriksasosudistyhprotezov
AT sandomirskiibp vozdeistviekonservirovaniânabelkivnekletočnogomatriksasosudistyhprotezov
AT naumovaov vozdeistviekonservirovaniânabelkivnekletočnogomatriksasosudistyhprotezov
AT ševčenkoev effectofcryopreservationonextracellularmatrixproteinsofvascularprostheses
AT tynynykaln effectofcryopreservationonextracellularmatrixproteinsofvascularprostheses
AT mihailovaip effectofcryopreservationonextracellularmatrixproteinsofvascularprostheses
AT sandomirskiibp effectofcryopreservationonextracellularmatrixproteinsofvascularprostheses
AT naumovaov effectofcryopreservationonextracellularmatrixproteinsofvascularprostheses