Изменение свойств водно-солевых экстрактов плаценты человека в процессе низкотемпературного хранения
Збережено в:
| Опубліковано в: : | Проблемы криобиологии и криомедицины |
|---|---|
| Дата: | 2008 |
| Автори: | , , |
| Формат: | Стаття |
| Мова: | Russian |
| Опубліковано: |
Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України
2008
|
| Теми: | |
| Онлайн доступ: | https://nasplib.isofts.kiev.ua/handle/123456789/68853 |
| Теги: |
Додати тег
Немає тегів, Будьте першим, хто поставить тег для цього запису!
|
| Назва журналу: | Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine |
| Цитувати: | Изменение свойств водно-солевых экстрактов плаценты человека в процессе низкотемпературного хранения / Д.Н. Погожих, Е.Д. Розанова, О.А. Нардид // Проблемы криобиологии. — 2008. — Т. 18, № 1. — С. 22-26. — Бібліогр.: 4 назв. — рос., англ. |
Репозитарії
Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine| id |
nasplib_isofts_kiev_ua-123456789-68853 |
|---|---|
| record_format |
dspace |
| spelling |
Погожих, Д.Н. Розанова, Е.Д. Нардид, О.А. 2014-09-30T18:50:24Z 2014-09-30T18:50:24Z 2008 Изменение свойств водно-солевых экстрактов плаценты человека в процессе низкотемпературного хранения / Д.Н. Погожих, Е.Д. Розанова, О.А. Нардид // Проблемы криобиологии. — 2008. — Т. 18, № 1. — С. 22-26. — Бібліогр.: 4 назв. — рос., англ. 0233-7673 https://nasplib.isofts.kiev.ua/handle/123456789/68853 57.043:611.013.85+615.451.16 ru Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України Проблемы криобиологии и криомедицины Краткие сообщения Изменение свойств водно-солевых экстрактов плаценты человека в процессе низкотемпературного хранения Changes of Propertiesof Human Placenta Aqueous-Saline Extracts Under Influence of Low Temperature Storage Article published earlier |
| institution |
Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine |
| collection |
DSpace DC |
| title |
Изменение свойств водно-солевых экстрактов плаценты человека в процессе низкотемпературного хранения |
| spellingShingle |
Изменение свойств водно-солевых экстрактов плаценты человека в процессе низкотемпературного хранения Погожих, Д.Н. Розанова, Е.Д. Нардид, О.А. Краткие сообщения |
| title_short |
Изменение свойств водно-солевых экстрактов плаценты человека в процессе низкотемпературного хранения |
| title_full |
Изменение свойств водно-солевых экстрактов плаценты человека в процессе низкотемпературного хранения |
| title_fullStr |
Изменение свойств водно-солевых экстрактов плаценты человека в процессе низкотемпературного хранения |
| title_full_unstemmed |
Изменение свойств водно-солевых экстрактов плаценты человека в процессе низкотемпературного хранения |
| title_sort |
изменение свойств водно-солевых экстрактов плаценты человека в процессе низкотемпературного хранения |
| author |
Погожих, Д.Н. Розанова, Е.Д. Нардид, О.А. |
| author_facet |
Погожих, Д.Н. Розанова, Е.Д. Нардид, О.А. |
| topic |
Краткие сообщения |
| topic_facet |
Краткие сообщения |
| publishDate |
2008 |
| language |
Russian |
| container_title |
Проблемы криобиологии и криомедицины |
| publisher |
Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України |
| format |
Article |
| title_alt |
Changes of Propertiesof Human Placenta Aqueous-Saline Extracts Under Influence of Low Temperature Storage |
| issn |
0233-7673 |
| url |
https://nasplib.isofts.kiev.ua/handle/123456789/68853 |
| citation_txt |
Изменение свойств водно-солевых экстрактов плаценты человека в процессе низкотемпературного хранения / Д.Н. Погожих, Е.Д. Розанова, О.А. Нардид // Проблемы криобиологии. — 2008. — Т. 18, № 1. — С. 22-26. — Бібліогр.: 4 назв. — рос., англ. |
| work_keys_str_mv |
AT pogožihdn izmeneniesvoistvvodnosolevyhékstraktovplacentyčelovekavprocessenizkotemperaturnogohraneniâ AT rozanovaed izmeneniesvoistvvodnosolevyhékstraktovplacentyčelovekavprocessenizkotemperaturnogohraneniâ AT nardidoa izmeneniesvoistvvodnosolevyhékstraktovplacentyčelovekavprocessenizkotemperaturnogohraneniâ AT pogožihdn changesofpropertiesofhumanplacentaaqueoussalineextractsunderinfluenceoflowtemperaturestorage AT rozanovaed changesofpropertiesofhumanplacentaaqueoussalineextractsunderinfluenceoflowtemperaturestorage AT nardidoa changesofpropertiesofhumanplacentaaqueoussalineextractsunderinfluenceoflowtemperaturestorage |
| first_indexed |
2025-11-27T02:54:19Z |
| last_indexed |
2025-11-27T02:54:19Z |
| _version_ |
1850792830937595904 |
| fulltext |
22 PROBLEMS
OF CRYOBIOLOGY
Vol. 18, 2008, №1
ПРОБЛЕМЫ
КРИОБИОЛОГИИ
Т. 18, 2008, №1
УДК 57.043:611.013.85+615.451.16
ПОГОЖИХ Д.Н., РОЗАНОВА Е.Д., НАРДИД О.А.*
Изменение свойств водно-солевых экстрактов плаценты человека в
процессе низкотемпературного хранения
UDC 57.043:611.013.85+615.451.16
POGOZHIKH D.N., ROZANOVA E.D., NARDID O.A.*
Change of Properties of Human Placenta Aqueous-Saline
Extracts During Low Temperature Storage
* Автор, которому необходимо направлять корреспонденцию:
ул. Переяславская, 23, г. Харьков, Украина 61015; тел.:+38
(057) 373-31-41, факс: +38 (057) 373-30-84, электронная почта:
cryo@online.kharkov.ua
* To whom correspondence should be addressed: 23, Pereyaslavskaya
str., Kharkov, Ukraine 61015; tel.:+380 57 373 3141, fax: +380 57
373 3084, e-mail: cryo@online.kharkov.ua
Institute for Problems of Cryobiology and Cryomedicine of the Na-
tional Academy of Sciences of Ukraine, Kharkov, Ukraine
Институт проблем криобиологии и криомедицины
НАН Украины, г. Харьков
High content of biological active substances in
aqueous-saline extracts of human placenta (HPEs)
enables to use it in different branches of medicine.
Extracts composition significantly depends on initial
material. HPEs were divided on compositions into
three types, which corresponded to distribution of
proteins according to molecular masses and correlated
with the extracts’ biological activity to erythrocytes.
On the basis of this fact there was supposed about
dominating role of proteins in extracts interaction with
erythrocytes [1]. For storage of extracts low
temperatures or freeze-drying are used. However,
practically there are no investigations dedicated to
comparative study of HPEs properties after storage.
For protein solutions freezing is more mild storage
method [2]. The research aim was to study the effect
of storage at different temperatures on some properties
of extracts.
Materials and methods
Aqueous-saline extracts were isolated from human
placenta tissue, which was tested for virus infection
presence. For extracts deriving the washed-out
fragments were homogenized, adding NaCl 0.15 M in
1:1 ratio. After 12 hrs of equilibration they were
centrifuged and supernatant was taken for the
researches. The extracts were stored for 6 months at -
20 and –80°C in freezing chambers with corresponding
temperature and at –196°C in Dewar with liquid
nitrogen. The extracts were frozen-thawed on water
bath at 22°C. Gel-chromatography of extracts was
carried out on 21×2 cm column with G-200 sephadex.
Protein concentration was determined by spectropho-
tometry, concentration of peroxidation products was
done with thiobarbituric acid reaction. Erythrocytes
were derived from donor’s blood. Erythrocyte exposu-
re with placenta extracts and isolated fractions,
obtained by gel-chromatography, made 2 hrs. With this
aim erythromass was diluted in 1:1 ratio with
Высокое содержание биологически активных
веществ в водно-солевых экстрактах плаценты
человека (ЭПЧ) позволяет использовать их в
разных областях медицины. Состав экстрактов в
значительной степени зависит от исходного ма-
териала. По составу ЭПЧ были разделены на три
типа, которые соответствовали распределению
белков по молекулярным массам и коррелировали
с биологической активностью экстрактов по отно-
шению к эритроцитам. На основании данного фак-
та было высказано предположение о ведущей роли
белков во взаимодействии экстрактов с эритроци-
тами [1]. Для хранения экстрактов используют
низкие температуры или лиофильное высушива-
ние. Однако практически отсутствуют исследова-
ния, посвященные сравнительному изучению
свойств ЭПЧ после их хранения. Для растворов
белков замораживание является более щадящим
способом хранения [2]. Поэтому целью настоящего
исследования было изучить влияние хранения при
различных температурах на некоторые свойства
экстрактов.
Материалы и методы
Водно-солевые экстракты выделяли из ткани
плаценты человека, которая тестировалась на
наличие вирусных инфекций. Для получения экс-
трактов отмытые фрагменты гомогенизировали,
добавляя 0,15 М NaCl в соотношении 1:1. Через
12 ч эквилибрации их центрифугировали и соби-
рали надосадок для исследований. Экстракты
хранили в течение 6 месяцев при –20 и –80°С в
морозильных камерах с соответствующей темпера-
турой, при –196°С – в сосуде с жидким азотом.
Экстракты размораживали в водяной бане при
22°С. Гель-хроматографию экстрактов проводили
на колонке 21×2 см с сефадексом G-200. Концен-
трацию белка определяли спектрофотометри-
ческим методом, концентрацию продуктов пере-
23 PROBLEMS
OF CRYOBIOLOGY
Vol. 18, 2008, №1
ПРОБЛЕМЫ
КРИОБИОЛОГИИ
Т. 18, 2008, №1
physiologic solution and associated with the equal
amount of extract. For the determining of hemolysis
level the hemoglobin concentration was measured with
spectrophotometry. Osmotic fragility of erythrocytes
was estimated for hemolysis level in hypotonic
solutions NaCl (0.3–0.6 M). For charac-teristics of
acid hemolysis the kinetics of change in optical density
was noted at 700 nm in citrate bufer (pH 3.8) and time
of 50% hemolysis was determined. Absorption spectra
was noted with “Pye Unicam SP 8000”
spectrophotometer, Great Britain.
Results and discussion
In researches we investigated 30 HPEs of different
types [1]. The extracts of 1st type made 50% of total
number of investigated samples, 40% for 2nd type and
10% for 3rd type. Extracts of 1st type had no hemolytic
activity, exposure with 2nd type extracts triggered low
hemolysis (under 50%) and extracts of 3rd type
exhibited a high hemolytic activity (up to 50%). For
determining the molecular mass of substances, having
hemolytic activity, the effect on erythrocyte properties
of exposure with isolated fractions obtained by gel-
chromatography has been investigated. Generally,
especially for the extracts with high hemolytic activity,
hemolysis was noted after exposure with the fractions
of 200-400 kDa molecular mass. Therewith, for some
extracts of 2nd type comparatively low hemolytic
activity was exhibited after exposure with the fractions
of molecular mass under 5 kDa.
The storage of extracts at low temperatures results
in change of protein distribution for molecular masses
in all types of HPEs. After storage at –20°C these
кисного окисления – с помощью реакции с тиобар-
битуровой кислотой. Эритроциты получали из
донорской крови. Экспозиция эритроцитов с
экстрактами плаценты или отдельными фракция-
ми, полученными методом гель-хроматографии,
составляла 2 ч. Для этого эритромассу разводили
в соотношении 1:1 физиологическим раствором и
соединяли с равным количеством экстракта. Для
определения уровня гемолиза концентрацию
гемоглобина измеряли спектрофотометрическим
методом. Осмотическую хрупкость эритроцитов
оценивали по уровню гемолиза в гипотонических
растворах NaCl (0,3–0,6 М). Для характеристики
кислотного гемолиза записывали кинетику
изменения оптической плотности при 700 нм в
цитратном буфере (рН 3,8) и определяли время
50%-го гемолиза. Спектры поглощения записыва-
ли на спектрофотометре “Pye Unicam SP 8000”
(Великобритания).
Результаты и обсуждение
В работе изучали 30 ЭПЧ различных типов [1].
Экстракты типа 1 составляли 50% от общего числа
исследованых образцов, типа 2 – 40% и типа 3 –
10%. Экстракты типа 1 не обладали гемолити-
ческой активностью, экспозиция с экстрактами
типа 2 вызывала небольшой гемолиз (менее 5%),
а экстракты типа 3 проявляли высокую гемоли-
тическую активность (до 50%). Для определения
молекулярной массы веществ, обладающих
гемолитической активностью, было исследовано
влияние на свойства эритроцитов экспозиции с
отдельными фракциями, полученными методами
гель-хроматографии. В большинстве случаев,
особенно для экстрактов с высокой гемолитичес-
кой активностью, гемолиз отмечался после экспо-
зиции с фракциями, имеющими молекулярную
массу 200–400 кДа. Кроме того, для некоторых
экстрактов типа 2 относительно небольшая гемо-
литическая активность проявлялась после экспози-
ции с фракциями, молекулярная масса которых
менее 5 кДа.
Хранение экстрактов при низких температурах
приводит к изменению распределения белков по
молекулярным массам во всех типах ЭПЧ. После
хранения при –20°С эти изменения значительнее,
чем после хранения при –80 и –196°С. На рис.1
приведены гель-хроматограммы для ЭПЧ типа 2.
Подобные изменения в распределении белков по
молекулярным массам наблюдаются и в других
типах ЭПЧ.
После хранения ЭПЧ при всех изученных тем-
пературах отмечается увеличение относительного
содержания белков с более высокими молекуляр-
ными массами, свидетельствующее об агрегации
белков. Наиболее выражены эти изменения после
хранения при –20°С.
Рис. 1. Гель-хроматограммы ЭПЧ типа 2 после хранения
при различных температурах: – контроль; –
хранение при –80°C; –storage at –196°C; × – storage
at –20°C.
Fig. 1. HEP gel-chromatograms of 2nd type after storage
at different temperatures: – control; – storage at
–80°C; –storage at –196°C; × – storage at –20°C.
Номер фракции Fraction number
С
од
ер
жа
ни
е
бе
лк
а,
%
Pr
ot
ei
n
co
nt
en
t,
%
0
2
4
6
8
10
12
14
16
18
20
0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19
24 PROBLEMS
OF CRYOBIOLOGY
Vol. 18, 2008, №1
ПРОБЛЕМЫ
КРИОБИОЛОГИИ
Т. 18, 2008, №1
changes are more significant than after storage at –80
and –196°C. Fig. 1 shows gel-chromatograms for
HPEs of 2nd type. Similar changes in protein distri-
bution for molecular masses are observed in other
types of HPEs.
After storage of HPEs at all the investigated
temperatures the increasing of relative protein content
is noted with higher molecular masses, testifying to
protein aggregation. These changes are well expressed
after storage at –20°C.
The hemolytic activity of high-molecular fractions
is absent after storage of extracts at all the investigated
temperatures. It could be likely the result of protein
aggregation, which observed in the extracts after
freezing. It is known that protein aggregation after
freezing results of solutions from the change of mole-
cule conformation and concentrating at their crystal-
lization and is usually accompanied with the loss of
functional activity [3, 4]. It may be supposed that
hemolytical activity of highly molecular fractions is
stipulated with protein molecules. Hemolytic activity,
which low-molecular fractions is responsible for, is
preserved independently of storage temperature and,
it seemed to cause with molecules on which the
freezing and low-temperature storage have no effect.
Exposure of erythrocytes with HPEs of the 1st and
2nd types results in increase of osmotic resistance of
Гемолитическая активность высокомолекуляр-
ных фракций отсутствует после хранения экстрак-
тов при всех исследованных температурах. Воз-
можно, это результат агрегации белков, которая
наблюдается в экстрактах после замораживания.
Известно, что агрегация белков после заморажива-
ния происходит в результате изменения конформа-
ции молекул и концентрирования растворов в про-
цессе их кристаллизации и обычно сопровождает-
ся потерей функциональной активности [3, 4].
Можно предположить, что гемолитическая актив-
ность высокомолекулярных фракций обусловлена
молекулами белков. Гемолитическая активность,
за которую ответственны низкомолекулярные
фракции, сохраняется независимо от температуры
хранения и, по-видимому, обусловлена молеку-
лами, на которые процессы замораживания и низ-
котемпературного хранения не влияют.
Экспозиция эритроцитов с ЭПЧ типов 1 и 2 при-
водит к повышению осмотической устойчивости
мембран клеток. Это свойство экстрактов полнос-
тью сохраняется после хранения ЭПЧ при –80 и
–196°С, а при –20°С теряется (рис. 2). Отмеченное
повышение осмотической устойчивости эритро-
цитов в средах, содержащих ЭПЧ, не наблюдается
при экспозиции клеток с отдельными фракциями
экстрактов, полученных методом гель-хромато-
графии.
Экспозиция эритроцитов с ЭПЧ типа 3, которые
обладают гемолитической активностью, приводит
к снижению кислотной устойчивости эритроцитов.
Остальные экстракты повышают кислотную
устойчивость клеток. Установлено, что снижение
кислотной устойчивости эритроцитов наблюдается
после экспозиции с фракциями молекулярной
массой 200–400 кДа, которые вызывают гемолиз
после экспозиции с ними, как было отмечено
ранее. Максимальное стабилизирующее влияние
на кислотную устойчивость проявляется во фрак-
циях с молекулярной массой 30–60 кДа. После экс-
позиции с экстрактами, хранившимися при –80 и
–196°С, кроме тех, в которых наблюдается неболь-
шая гемолитическая активность за счет низкомоле-
кулярной фракции, кислотная устойчивость
эритроцитов повышается. Кислотная устойчивость
эритроцитов после экспозиции со всеми экстрак-
тами, которые хранились при –20°С, снижается. В
то же время наблюдается повышение содержания
малонового альдегида (МДА) в хранящихся при
–20°С экстрактах (рис. 3), это позволяет объяснить
увеличение гемолиза и снижение кислотной
устойчивости эритроцитов после экспозиции с
такими ЭПЧ.
Выводы
Хранение ЭПЧ при –80 и –196°С, несмотря на
частичную агрегацию белков, позволяет не только
Концентрация NaCl, %
NaCl concentration, %
Ге
м
ол
из
,%
H
em
ol
ys
is
, %
Рис. 2. Осмотическая устойчивость эритроцитов после
экспозиции с ЭПЧ, хранившихся при различных
температурах 6 месяцев: – контроль; – после
экспозиции с ЭПЧ; – после экспозиции с ЭПЧ,
хранившимся при –196°C; × – после экспозиции с ЭПЧ,
хранившимся при –20°C.
Fig. 2. Osmotic resistance of erythrocytes after exposure
with HPEs, stored at different temperatures for 6 months:
– control; – after exposure with HPEs; –after
exposure with HPEs, stored at –196°C; × – after exposure
with HPEs, stored at –20°C.
0
20
40
60
80
100
0 0,2 0,4 0,6 0,8 1
25 PROBLEMS
OF CRYOBIOLOGY
Vol. 18, 2008, №1
ПРОБЛЕМЫ
КРИОБИОЛОГИИ
Т. 18, 2008, №1
сохранить стабилизирующее действие на мем-
браны эритроцитов, но и предотвратить дестабили-
зирующее влияние, обусловленное высокомоле-
кулярными фракциями. При хранении экстракта
плаценты при –20°С в нем увеличивается содер-
жание продуктов перекисного окисления, что при-
водит к повышению уровня гемолиза и умень-
шению кислотной устойчивости эритроцитов пос-
ле экспозиции с такими экстрактами.
cell membranes. This property of extracts is preserved
completely after storage of HPEs at –80°C and
–196°C, and at –20°C is lost (Fig. 2). Noted increase
of osmotic resistance of erythrocytes in the media,
containing HPEs, is not observed during cell exposure
with isolated fractions of extracts, obtained by gel-
chromatography.
Exposure of erythrocytes with HPEs of 3rd type,
having hemolytic activity, results in decrease of acid
resistance of erythrocytes. Other extracts increase the
acid resistance of cells. It has been established that
the decrease of acid resistance of erythrocytes is obser-
ved after exposure with the fractions of 200–400 kDa
molecular mass, triggering hemolysis after exposure
with them, as it has been noted previously. The maxi-
mum stability effect on acid resistance is exhibited in
fractions with 30-60 kDa molecular mass. After expo-
sure with the extracts, stored at –80°C and –196°C,
except those, where low hemolytic activity is observed
due to low-molecular fraction, acid resistance of eryth-
rocytes increases. The acid resistance of erythrocytes
after exposure with all the extracts, stored at –20°C,
decreases. At the same time the increase of malonic
aldehyde content (MDA) is obser-ved in stored
extracts at –20°C (Fig. 3), that enables to explain the
hemolysis increase and reduction of acid resistance
of erythrocytes after exposure with these HPEs.
Conclusions
HPEs storage at –80 and –196°C, in spite of frac-
tional protein aggregation, enables not only to preserve
Срок хранения, мес
Storage duration, months
Ко
нц
ен
тр
ац
ия
М
Д
А,
м
кг
/м
л
M
D
A
co
nc
et
ra
tio
n,
µ
g/
m
l
Рис. 3. Содержание МДА в ЭПЧ, хранившимся при –20°С.
Fig. 3. MDA content in HPEs, stored at –20ºC.
Вр
ем
я
50
%
ге
м
ол
из
а,
с
Ti
m
e
of
5
0%
h
em
ol
ys
is
, s
ec
Рис. 4. Влияние на кислотную устойчивость эритроци-
тов экспозиции с ЭПЧ: 1 – свежий ЭПЧ, 2 – ЭПЧ, хра-
нившийся при –20°С; 3 – ЭПЧ, хранившийся при –80°С;
4 – ЭПЧ, хранившийся при –196°С; –контроль; –
ЭПЧ без гемолитической активности; – ЭПЧ с
гемолитической активностью.
Fig. 4. Effect of erythrocytes’ exposure with HPEs on acid
resistance: 1 – fresh HPEs; 2 – HPEs, stored at –20°C; 3 –
HPEs, stored at –80°C; 4 – HPEs, stored at –196°C; –
control; –HPEs without hemolytic activity; – HPEs
with hemolytic activity.
0
1
2
3
4
5
6
7
0 2 4 6
0
100
200
300
400
500
600
1 2 3 4
Литература
Погожих Д.Н., Розанова Е.Д., Нардид О.А. Влияние
экстракта плаценты человека на эритроциты донорской
крови // Проблеми медичної науки та освіти.– 2007.– №1.–
С. 54–57.
Bank D.M. Characterization of the glycation of albumin in
freeze-dried and frozen human serum // Anal. Chem.– 1997.–
Vol. 69, N13.– P. 2457–2463.
Cao E., Chen Y., Cui Z., Forster P.R. Effect of freezing and
thawing rates on denaturation of proteins in aqueous solu-
tions // Biotechnol. Bioenerg.– 2003.– Vol. 82, N6.– P. 684–
690.
Yan Y.-B., Wang O., He H.-W., Zhou H.-M. Protein thermal
aggregation involves distinct regions: sequential events in the
heat-induced unfolding and aggregation of hemoglobin //
Biophys. J.– 2004. – Vol. 86, N3.– P. 1682–1690.
Поступила 15.05.2008
1.
2.
3.
4.
26 PROBLEMS
OF CRYOBIOLOGY
Vol. 18, 2008, №1
ПРОБЛЕМЫ
КРИОБИОЛОГИИ
Т. 18, 2008, №1
References
Pogozhikh D.N., Rozanova E.D., Nardid O.A. Effect of human
placenta extract on erythrocytes of donor blood // Problems
of Medical Science and Education.– 2007.– N1.– P. 54-57.
Bank D.M. Characterization of the glycation of albumin in
freeze-dried and frozen human serum // Anal. Chem.– 1997.–
Vol. 69, N13.– P. 2457–2463.
Cao E., Chen Y., Cui Z., Forster P.R. Effect of freezing and
thawing rates on denaturation of proteins in aqueous solu-
tions // Biotechnol. Bioenerg.– 2003.– Vol. 82, N6.– P. 684–
690.
Yan Y.-B., Wang O., He H.-W., Zhou H.-M. Protein thermal
aggregation involves distinct regions: sequential events in the
heat-induced unfolding and aggregation of hemoglobin //
Biophys. J.– 2004.– Vol. 86, N3.– P. 1682–1690.
Accepted in 15.05.2008
1.
2.
3.
4.
a stabilizing activity on membranes of erythrocytes,
but also inhibit the destabilizing effect, caused with
high-molecular fractions. When storing the placenta
extracts at –20°C the content of peroxidation products
in it increases, that result in increase of hemolysis level
and decrease of acid resistance of erythrocytes after
exposure with those extracts.
|