Лиофилизация споровой культуры Streptomyces aureofaciens

Разработаны этапы технологического процесса лиофилизации споровой культуры Streptomyces aureofaciens на агаровых пластинках, обеспечивающего высокую сохранность лиофилизированных микробных клеток как после сублимационного высушивания так и после их последующего хранения в условиях гипотермии в течен...

Full description

Saved in:
Bibliographic Details
Published in:Проблемы криобиологии и криомедицины
Date:2008
Main Authors: Ананьина, А.Е., Цуцаева, А.А., Балыбердина, Л.М., Гриша, И.Г., Щеглов, А.В.
Format: Article
Language:Russian
Published: Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України 2008
Subjects:
Online Access:https://nasplib.isofts.kiev.ua/handle/123456789/69053
Tags: Add Tag
No Tags, Be the first to tag this record!
Journal Title:Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine
Cite this:Лиофилизация споровой культуры Streptomyces aureofaciens / А.Е. Ананьина, А.А. Цуцаева, Л.М. Балыбердина, И.Г. Гриша, А.В. Щеглов // Проблемы криобиологии. — 2008. — Т. 18, № 4. — С. 404-406. — Бібліогр.: 15 назв. — рос.

Institution

Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine
_version_ 1859827725433307136
author Ананьина, А.Е.
Цуцаева, А.А.
Балыбердина, Л.М.
Гриша, И.Г.
Щеглов, А.В.
author_facet Ананьина, А.Е.
Цуцаева, А.А.
Балыбердина, Л.М.
Гриша, И.Г.
Щеглов, А.В.
citation_txt Лиофилизация споровой культуры Streptomyces aureofaciens / А.Е. Ананьина, А.А. Цуцаева, Л.М. Балыбердина, И.Г. Гриша, А.В. Щеглов // Проблемы криобиологии. — 2008. — Т. 18, № 4. — С. 404-406. — Бібліогр.: 15 назв. — рос.
collection DSpace DC
container_title Проблемы криобиологии и криомедицины
description Разработаны этапы технологического процесса лиофилизации споровой культуры Streptomyces aureofaciens на агаровых пластинках, обеспечивающего высокую сохранность лиофилизированных микробных клеток как после сублимационного высушивания так и после их последующего хранения в условиях гипотермии в течение 4-х лет. Розроблено етапи технологічного процесу ліофілізації спорової культури Streptomyces aureofaciens на агарових пластинках, який забезпечує високу збереженість ліофілізованих мікробних клітин як після сублімаційного висушування, так і після їх зберігання в умовах гіпотермії протягом 4-х років. The stages of technological process of lyophilization of spore cultures, Streptomyces aurefaciens on agar plates providing a high integrity of lyophilized microbe cells both after freeze-drying and after their following storage under hypothermia conditions for 4 years have been developed.
first_indexed 2025-12-07T15:30:39Z
format Article
fulltext 404 PROBLEMS OF CRYOBIOLOGY Vol. 18, 2008, №4 ПРОБЛЕМЫ КРИОБИОЛОГИИ Т. 18, 2008, №4 УДК 57.086.132;246.4 А.Е. АНАНЬИНА*, А.А. ЦУЦАЕВА , Л.М. БАЛЫБЕРДИНА, И.Г. ГРИША, А.В. ЩЕГЛОВ Лиофилизация споровой культуры Streptomyces aureofaciens UDC 57.086.132;246.4 A.YE. ANANYINA*, A.A. TSUTSAYEVA , L.M. BALYBERDINA, I.G. GRISHA, A.V. SHCHEGLOV Freeze-Drying of Streptomyces aureofaciens Endospore Culture Разработаны этапы технологического процесса лиофилизации споровой культуры Streptomyces aureofaciens на агаровых пластинках, обеспечивающего высокую сохранность лиофилизированных микробных клеток как после сублимационного высушивания так и после их последующего хранения в условиях гипотермии в течение 4-х лет. Ключевые слова: стрептомицеты, лиофилизация, агаровые пластинки, жизнеспособность. Розроблено етапи технологічного процесу ліофілізації спорової культури Streptomyces aureofaciens на агарових пластинках, який забезпечує високу збереженість ліофілізованих мікробних клітин як після сублімаційного висушування, так і після їх зберігання в умовах гіпотермії протягом 4-х років. Ключові слова: стрептоміцети, ліофілізація, агарові пластинки, життєздатність. The stages of technological process of lyophilization of spore cultures, Streptomyces aurefaciens on agar plates providing a high integrity of lyophilized microbe cells both after freeze-drying and after their following storage under hypothermia conditions for 4 years have been developed. Key-words: streptomyces, lyophilization, agar plates, viability. В последнее время отмечается повышенный интерес к проблеме консервирования и долгосроч- ного хранения микроорганизмов, используемых на этапах производства биологически активных ве- ществ, которые находят применение в сельском хозяйстве, ветеринарии и медицине [2, 6, 10, 13]. Одной из важных задач биотехнологии является разработка эффективных методов долгосрочного хранения промышленных штаммов микроорганиз- мов без изменения их исходных свойств. Эти методы служат основой для обеспечения работы коллекций и банков микроорганизмов [13, 15]. Наиболее перспективным методом консервиро- вания и долгосрочного хранения является лиофи- лизация. Метод удобен для транспортировки био- логических объектов [1, 2, 6]. Эффективность лио- филизации зависит от ряда факторов, в результате чего могут индуцироваться повреждения, приводя- щие к потере жизнеспособности и продуктивной активности микроорганизмов [8, 11, 12]. Цель исследования – разработка этапов техно- логического процесса лиофилизации споровой куль- туры Streptomyces aureofaciens, обеспечивающих максимальную сохранность этого микроорганизма. Материалы и методы Объектом исследования был производственный штамм Streptomyces aureofaciens − продуцент антибиотика хлортетрациклина, полученный из центральной лаборатории завода антибиотиков (г. Новоград-Волынский). Споровую культуру выращивали в течение 14 суток при температуре 28°С на скошенной агаризо- ванной регламентной среде следующего состава: экстракт кукурузный − 10,0; крахмал картофель- ный − 20,0; KH2PO4 − 0,2; (NH4)2HPO4−0,4; MgSO4− 0,025; CaCO3−0,1; агар-агар; вода дистиллирован- ная до 1 л. При подготовке образцов споровой культуры к лиофилизации агаровые пластинки с микробными клетками толщиной 0,5; 1,0; 1,5; 2,0 и 2,5 мм снимали со скошенной агаризованной регламентной питательной среды острым шпате- лем, затем их помещали на дно пенициллиновых флаконов. Флаконы с агаровыми пластинками ставили в металлические кассеты, которые разме- щали на полках установки замораживания-высу- шивания УЗВ-2 (производство СКТБ с ОП ИПКиК НАН Украины, Харьков). Образцы замораживали со скоростью 1; 2 и 3°С/мин до начальной температуры высушивания –10; –15 и –20°С и сублимировали при остаточном давлении в камере установки замораживания-высушивания 1,33 Па. После окончания высушивания флаконы с лиофилизированными микроорганизмами закупо- ривали резиновыми пробками в атмосфере сухого азота, завальцовывали металлическими колпач- ками, заливали парафином и хранили в условиях гипотермии (4°С). Остаточную влажность образ- * Автор, которому необходимо направлять корреспонденцию: ул. Переяславская, 23, г. Харьков, Украина 61015; тел.:+38 (057) 373-31-26, факс: +38 (057) 373-30-84, электронная почта: cryo@online.kharkov.ua Институт проблем криобиологии и криомедицины НАН Украины, г. Харьков * To whom correspondence should be addressed: 23, Pereyaslavskaya str., Kharkov, Ukraine 61015; tel.:+380 57 373 3126, fax: +380 57 373 3084, e-mail:cryo@online.kharkov.ua Institute for Problems of Cryobiology and Cryomedicine of the Na- tional Academy of Sciences of Ukraine, Kharkov, Ukraine 405 PROBLEMS OF CRYOBIOLOGY Vol. 18, 2008, №4 ПРОБЛЕМЫ КРИОБИОЛОГИИ Т. 18, 2008, №4 цов после лиофилизации определяли методом [4]. Регидратацию лиофилизированных образцов про- водили путем добавления дистиллированной воды в течение 10–15 мин c последующим высевом на твердую питательную среду. Жизнеспособность микробной культуры оценивали по количеству сформировавшихся макроколоний на агаризован- ной регламентной питательной среде в течение 14 суток при температуре 28°С [9]. Антибиотическую активность определяли био- логическим методом диффузии в агар с использо- ванием тест-культуры Bac. subtilis, штамм 720 [3, 7]. Статистическую обработку результатов выпол- няли по методу Стьюдента-Фишера, достоверность различий получена на уровне значимости 0,95 [11, 12]. Результаты и обсуждение Разработка методов лиофилизации микроорга- низмов включает несколько этапов: заморажи- вание, сублимация и регидратация. Сохранность морфофункциональных свойств микроорганизмов зависит от ряда факторов: подбор защитных сред, показателей начальной температуры высушивания, остаточной влажности лиофилизированных образ- цов, а также от условий хранения [13, 15]. При раз- работке нашего метода сублимационного высуши- вания образцы споровой культуры отличались тем, что представляли собой агаровые пластинки со спорами микробной культуры на поверхности ага- ризованной среды, поэтому на сохранность мик- робных клеток и длительность процесса лиофили- зации влияет также толщина агаровых пластинок. В результате проведенных исследований было установлено, что защитной средой может быть регламентная агаризованная питательная среда, используемая для выращивания споровой культу- ры S. aureofaciens. Образцы замораживали со скоростями: 1; 2 и 3°С/мин. При этом длительность лиофилизации составляла 60 мин независимо от скорости замора- живания. Данные проведенных исследований представлены в табл. 1. При замораживании образцов споровой культу- ры S. aureofaciens со скоростями охлаждения 1 и 3°С/мин наблюдалось незначительное снижение количества жизнеспособных клеток. Наиболее высокий процент колониеобразующих единиц отмечался при использовании скорости охлажде- ния 2°С/мин. Поэтому и была выбрана эта прог- рамма охлаждения образцов споровой культуры. При выборе показателей начальной темпера- туры сушки образцы микробной культуры охлаж- дали на полке установки замораживания-высуши- вания до температуры –10; –15 и –20°С (табл. 2). Установлено, что более низкий показатель на- чальной температуры сублимации приводит к удлинению сублимационного процесса, что, в свою очередь, уменьшает влияние повреждающих фак- торов лиофилизации. Еще одним параметром, влияющим на сохран- ность микробных клеток и длительность процесса лиофилизации, была толщина агаровых пластинок. Представленные в табл. 3 данные свидетельст- вуют о том, что при толщине агаровых пластинок 1,0 мм обеспечивалась наиболее высокая жизне- способность лиофилизированной споровой культу- ры S. aureofaciens и время сублимационного про- цесса было минимальным, при этом оптимальная остаточная влажность образцов составляла 2,0%. С учетом всех факторов сублимационного про- цесса была проведена заключительная серия экспериментов по разработке способа лиофилиза- ции споровой культуры S. aureofaciens. В этих экс- периментах изучали эффективность лиофилизации в различных защитных средах и на агаровых плас- тинках (табл. 4). Данные, представленные в табл. 4, свидетель- ствуют о том, что после лиофилизации споровой культуры S. aureofaciens на агаровых пластинках Таблица 1. Жизнеспособность лиофилизированной споровой культуры S. aureofaciens после предварительного замораживания образцов с различными скоростями охлаждения Таблица 2. Жизнеспособность споровой культуры S. aureofaciens после лиофилизации с различной начальной температурой сублимации ьтсорокС ним/С°,яинеджалхо ,ырутьлукйонборкимьтсонбосопсензиЖ (лм/лк × 01 7) xS±x % ьлортноK 42,0±38,5 0,001 1 12,0±71,4 5,17 2 01,0±85,4 6,87 3 41,0±33,4 3,47 яаньлачаН арутарепмет ,иицамилбус С° йонборкимьтсонбосопсензиЖ ,ырутьлук (лм/лк × 01 7) ьтсоньлетилД ,иицазилифоил ним xS±x % ьлортноK 01,0±69,4 0,001 - 01- 13,0±72,3 9,56 03 51- 41,0±45,3 4,17 54 02- 12,0±88,3 2,87 06 торых параметров процесса лио- филизации на жизнеспособность споровой культуры Streptomyces fradiae ВНИИГ-25А’ // Пробл. крио- биологии.– 2002.– №2.– С. 26–29. Bunse T. Steigleder G.K. The preser- vation of fungal cultures by lyophili- zation // Mycoses.– 1991.– Vol. 34, N3–4.– P. 173–176. Kolkowski J.A., Smith D. Cryopre- servation and freeze-drying of fungi // Methods Mol. Biol.– 1995.– Vol. 38, N2.– P. 49–61. Perry S.F. Freeze-drying and cryopre- servation of bacteria // Mol. Biotech- nol.– 1998.– Vol. 9, N1.– P. 59–64. Поступила 04.06.2008 кие методы в микробиологических исследованиях.– Л.: Гос. изд-во мед. лит-ры, 1962.– 180 с. Бланков Б.И., Клебанов Д.Л. Применение лиофилизации в микробиологии.– М.: Медгиз, 1961.– 263 с. Егоров Н.С. Основы учения об антибиотиках.– М.: Высш. школа. 1986.– С. 157–161. Криобиология и биотехнология / Под общ. ред. А.А. Цу- цаевой.– Киев: Наук. думка, 1987. – 216 с. Луста К.А., Фихте Б.А. Методы определения жизнеспо- собности микроорганизмов / Под ред. В.К.Ерошина.– Пущино, 1990.– 186 с. Опарин Ю.Г. Повреждение и защита биоматериалов при замораживании и лиофилизации // Биотехнология.– 1996.– №7.– С. 3–13. Практикум по микробиологии / Под ред. Н.С.Егорова.– М.: Изд-во МГУ, 1976.– 307 с. Рубан Е.Л. Хранение культур микроорганизмов // Прикладная биохимия и микробиология.– 1989.– Т. XXV, Вып. 3.– С. 291–301. Цуцаева А.А., Ананьина А.Е. Жизнеспособность споровой культуры Streptomyces fradiae ВНИИГ-25А’ после воздействия некоторых факторов процесса лиофи- лизации // Пробл. криобиологии.– 2004.– №1.– С. 26–30. Цуцаева А.А., Ананьина А.Е. Изучение влияния неко- 406 PROBLEMS OF CRYOBIOLOGY Vol. 18, 2008, №4 ПРОБЛЕМЫ КРИОБИОЛОГИИ Т. 18, 2008, №4 количество жизнеспособных клеток составило 78,6%, при этом антибиотическая активность микробной культуры была на уровне 71,4% по сравнению с контролем. В то время сохранность жизнеспособных клеток, лиофилизированных в традиционных защитных средах, была достоверно ниже и не превышала 44,9% с антибиотической активностью, составляющей 47,1% от контроля. При изучении влияния хранения лиофилизи- рованных образцов споровой культуры S. aureofa- ciens в условиях гипотермии при 4°С было установлено, что жизнеспособность и антибио- тическая активность микроорганизмов сохраня- лись в течение 4-х лет (срок наблюдения) на уровне 40,3–52,7% по сравнению с данными, полученными после сублимационного высушивания. Выводы Установлено, что разработанный способ лио- филизации споровой культуры S. aureofaciens на Литература Ананьина А.Е. Свойства промышленного штамма Streptomyces fradiae в зависимос- ти от условий хранения // Пробл. криобио- логии.– 2001.– №3.– С. 69. Аркадьева З.А. Факторы, влияющие на жизнеспособность и свойства микроорга- низмов при различных методах хранения // Биологические науки.– 1983.– №4.– С. 93– 105. Ашмарин И.П., Воробьев А.А. Статистичес- Таблица 4. Свойства споровой культуры Streptomyces aureofaciens после лиофилизации в различных защитных средах агаризованных пластинках позволяет обеспечить сохранность микробных клеток с высокой антибиотической активностью как сразу после лиофи- лизации, так и в течение длительного хранения лиофилизированных образ- цов в условиях гипотермии. еынтищаЗ ыдерс йоннаворизилифоилавтсйовС ырутьлук яанчотатсО %,ьтсонжалв ьтсоньлетилД ,иицазилифоил ч овтсечилоK хынбосопсензиж %,котелк яаксечитоибитнА %,ьтсонвитка xS±x xS±x яанидашоЛ акторовыс 01,0±85,4 6,87 0,2 6 ызорахас%01 %1+ ыниталеж 21,0±26,3 4,26 6,2 6 еоннерижзебО околом 01,0±47,2 2,74 8,2 6 аныропС йоннавозирага едерс 71,0±25,2 4,34 1,3 1 1. 2. 3. 4. 5. 6. 7. 8. 9. 10. 11. 12. Таблица 3. Жизнеспособность споровой культуры S. aureofaciens после лиофилизации анищлоТ оговорага мм,яолс йонборкимьтсонбосопсензиЖ ,ырутьлук (лм/лк × 01 7) яанчотатсО %,ьтсонжалв ьтсоньлетилД ,иицазилифоил ним xS±x % 5,0 41,0±72,4 6,37 5,1 06 0,1 01,0±85,4 6,87 0,2 06 5,1 21,0±26,3 4,26 6,2 09 0,2 01,0±47,2 2,74 8,2 021 5,2 71,0±25,2 4,34 1,3 081 13. 14. 15.
id nasplib_isofts_kiev_ua-123456789-69053
institution Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine
issn 0233-7673
language Russian
last_indexed 2025-12-07T15:30:39Z
publishDate 2008
publisher Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України
record_format dspace
spelling Ананьина, А.Е.
Цуцаева, А.А.
Балыбердина, Л.М.
Гриша, И.Г.
Щеглов, А.В.
2014-10-04T14:40:32Z
2014-10-04T14:40:32Z
2008
Лиофилизация споровой культуры Streptomyces aureofaciens / А.Е. Ананьина, А.А. Цуцаева, Л.М. Балыбердина, И.Г. Гриша, А.В. Щеглов // Проблемы криобиологии. — 2008. — Т. 18, № 4. — С. 404-406. — Бібліогр.: 15 назв. — рос.
0233-7673
https://nasplib.isofts.kiev.ua/handle/123456789/69053
57.086.132;246.4
Разработаны этапы технологического процесса лиофилизации споровой культуры Streptomyces aureofaciens на агаровых пластинках, обеспечивающего высокую сохранность лиофилизированных микробных клеток как после сублимационного высушивания так и после их последующего хранения в условиях гипотермии в течение 4-х лет.
Розроблено етапи технологічного процесу ліофілізації спорової культури Streptomyces aureofaciens на агарових пластинках, який забезпечує високу збереженість ліофілізованих мікробних клітин як після сублімаційного висушування, так і після їх зберігання в умовах гіпотермії протягом 4-х років.
The stages of technological process of lyophilization of spore cultures, Streptomyces aurefaciens on agar plates providing a high integrity of lyophilized microbe cells both after freeze-drying and after their following storage under hypothermia conditions for 4 years have been developed.
ru
Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України
Проблемы криобиологии и криомедицины
Секция «Низкотемпературное консервирование биологических объектов»
Лиофилизация споровой культуры Streptomyces aureofaciens
Freeze-Drying of Streptomyces aureofaciens Endospore Culture
Article
published earlier
spellingShingle Лиофилизация споровой культуры Streptomyces aureofaciens
Ананьина, А.Е.
Цуцаева, А.А.
Балыбердина, Л.М.
Гриша, И.Г.
Щеглов, А.В.
Секция «Низкотемпературное консервирование биологических объектов»
title Лиофилизация споровой культуры Streptomyces aureofaciens
title_alt Freeze-Drying of Streptomyces aureofaciens Endospore Culture
title_full Лиофилизация споровой культуры Streptomyces aureofaciens
title_fullStr Лиофилизация споровой культуры Streptomyces aureofaciens
title_full_unstemmed Лиофилизация споровой культуры Streptomyces aureofaciens
title_short Лиофилизация споровой культуры Streptomyces aureofaciens
title_sort лиофилизация споровой культуры streptomyces aureofaciens
topic Секция «Низкотемпературное консервирование биологических объектов»
topic_facet Секция «Низкотемпературное консервирование биологических объектов»
url https://nasplib.isofts.kiev.ua/handle/123456789/69053
work_keys_str_mv AT ananʹinaae liofilizaciâsporovoikulʹturystreptomycesaureofaciens
AT cucaevaaa liofilizaciâsporovoikulʹturystreptomycesaureofaciens
AT balyberdinalm liofilizaciâsporovoikulʹturystreptomycesaureofaciens
AT grišaig liofilizaciâsporovoikulʹturystreptomycesaureofaciens
AT ŝeglovav liofilizaciâsporovoikulʹturystreptomycesaureofaciens
AT ananʹinaae freezedryingofstreptomycesaureofaciensendosporeculture
AT cucaevaaa freezedryingofstreptomycesaureofaciensendosporeculture
AT balyberdinalm freezedryingofstreptomycesaureofaciensendosporeculture
AT grišaig freezedryingofstreptomycesaureofaciensendosporeculture
AT ŝeglovav freezedryingofstreptomycesaureofaciensendosporeculture