Цветовой полиморфизм раковины и активность аминотрансфераз тканей Mytilus galloprovincialis Lam.
Методом фотографирования и цифровой обработки снимков раковин однозначно идентифицированы четыре цветовые группы Mytilus galloprovincialis: черные, переходные, темно-коричневые, светло-коричневые. Между ними отмечены существенные отличия в активности аланин- и аспартатаминотрансфераз, задействованн...
Saved in:
| Published in: | Доповіді НАН України |
|---|---|
| Date: | 2014 |
| Main Authors: | , , |
| Format: | Article |
| Language: | Russian |
| Published: |
Видавничий дім "Академперіодика" НАН України
2014
|
| Subjects: | |
| Online Access: | https://nasplib.isofts.kiev.ua/handle/123456789/87141 |
| Tags: |
Add Tag
No Tags, Be the first to tag this record!
|
| Journal Title: | Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine |
| Cite this: | Цветовой полиморфизм раковины и активность аминотрансфераз тканей Mytilus galloprovincialis Lam. / А.Д. Куликова, Т.И. Андреенко, А.А. Солдатов // Доповiдi Нацiональної академiї наук України. — 2014. — № 3. — С. 147-152. — Бібліогр.: 15 назв. — рос. |
Institution
Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine| id |
nasplib_isofts_kiev_ua-123456789-87141 |
|---|---|
| record_format |
dspace |
| spelling |
Куликова, А.Д. Андреенко, Т.И. Солдатов, А.А. 2015-10-11T16:29:16Z 2015-10-11T16:29:16Z 2014 Цветовой полиморфизм раковины и активность аминотрансфераз тканей Mytilus galloprovincialis Lam. / А.Д. Куликова, Т.И. Андреенко, А.А. Солдатов // Доповiдi Нацiональної академiї наук України. — 2014. — № 3. — С. 147-152. — Бібліогр.: 15 назв. — рос. 1025-6415 https://nasplib.isofts.kiev.ua/handle/123456789/87141 594.124:577.1(262.5) Методом фотографирования и цифровой обработки снимков раковин однозначно идентифицированы четыре цветовые группы Mytilus galloprovincialis: черные, переходные, темно-коричневые, светло-коричневые. Между ними отмечены существенные отличия в активности аланин- и аспартатаминотрансфераз, задействованных в процессах анаэробного метаболизма. Наибольшие расхождения (1,5–2,8 раза) выявлены между краевыми группами: с черной и светло-коричневой окраской раковины. Допускается, что они могут быть связаны с адаптацией моллюсков к условиям скальных и донных экотопов. Методом фотографування i цифрової обробки знiмкiв мушель однозначно iдентифiковано чотири колiрнi групи Mytilus galloprovincialis: чорнi, перехiднi, темно-коричневi, свiтло-коричневi. Мiж ними вiдмiчено iстотнi вiдмiнностi в активностi аланiн- и аспартатамiнотрансфераз, задiяних у процесах анаеробного метаболiзму. Найбiльшi розбiжностi (1,5– 2,8 раза) виявленi мiж крайовими групами: з чорним i свiтло-коричневим забарвленням мушлi. Допускається, що вони можуть бути пов’язанi з адаптацiєю молюскiв до умов скельних i донних екотопiв. Using the method of digital photo processing, four color groups of Mytilus galloprovincialis are determined: black, intermediate, dark and light brown. The activities of alanine and aspartate aminotransferases taking part in processes of anaerobic metabolism between groups are significantly different. The highest divergence (1.5–2.8 times) was observed between the edge groups with black and light brown shell color. This is apparently related to mussel’s adaptation to environmental conditions of rocky shores and seabed ecotops. ru Видавничий дім "Академперіодика" НАН України Доповіді НАН України Біологія Цветовой полиморфизм раковины и активность аминотрансфераз тканей Mytilus galloprovincialis Lam. Колiрний полiморфiзм мушлi i активнiсть амiнотрансфераз тканин Mytilus galloprovincialis Lam. Color polymorphism of a shell and the aminotranferase activity in Mytilus galloprovincialis Lam. tissues Article published earlier |
| institution |
Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine |
| collection |
DSpace DC |
| title |
Цветовой полиморфизм раковины и активность аминотрансфераз тканей Mytilus galloprovincialis Lam. |
| spellingShingle |
Цветовой полиморфизм раковины и активность аминотрансфераз тканей Mytilus galloprovincialis Lam. Куликова, А.Д. Андреенко, Т.И. Солдатов, А.А. Біологія |
| title_short |
Цветовой полиморфизм раковины и активность аминотрансфераз тканей Mytilus galloprovincialis Lam. |
| title_full |
Цветовой полиморфизм раковины и активность аминотрансфераз тканей Mytilus galloprovincialis Lam. |
| title_fullStr |
Цветовой полиморфизм раковины и активность аминотрансфераз тканей Mytilus galloprovincialis Lam. |
| title_full_unstemmed |
Цветовой полиморфизм раковины и активность аминотрансфераз тканей Mytilus galloprovincialis Lam. |
| title_sort |
цветовой полиморфизм раковины и активность аминотрансфераз тканей mytilus galloprovincialis lam. |
| author |
Куликова, А.Д. Андреенко, Т.И. Солдатов, А.А. |
| author_facet |
Куликова, А.Д. Андреенко, Т.И. Солдатов, А.А. |
| topic |
Біологія |
| topic_facet |
Біологія |
| publishDate |
2014 |
| language |
Russian |
| container_title |
Доповіді НАН України |
| publisher |
Видавничий дім "Академперіодика" НАН України |
| format |
Article |
| title_alt |
Колiрний полiморфiзм мушлi i активнiсть амiнотрансфераз тканин Mytilus galloprovincialis Lam. Color polymorphism of a shell and the aminotranferase activity in Mytilus galloprovincialis Lam. tissues |
| description |
Методом фотографирования и цифровой обработки снимков раковин однозначно идентифицированы четыре цветовые группы Mytilus galloprovincialis: черные, переходные, темно-коричневые, светло-коричневые. Между ними отмечены существенные отличия
в активности аланин- и аспартатаминотрансфераз, задействованных в процессах анаэробного метаболизма. Наибольшие расхождения (1,5–2,8 раза) выявлены между краевыми группами: с черной и светло-коричневой окраской раковины. Допускается, что они
могут быть связаны с адаптацией моллюсков к условиям скальных и донных экотопов.
Методом фотографування i цифрової обробки знiмкiв мушель однозначно iдентифiковано
чотири колiрнi групи Mytilus galloprovincialis: чорнi, перехiднi, темно-коричневi, свiтло-коричневi. Мiж ними вiдмiчено iстотнi вiдмiнностi в активностi аланiн- и аспартатамiнотрансфераз, задiяних у процесах анаеробного метаболiзму. Найбiльшi розбiжностi (1,5–
2,8 раза) виявленi мiж крайовими групами: з чорним i свiтло-коричневим забарвленням
мушлi. Допускається, що вони можуть бути пов’язанi з адаптацiєю молюскiв до умов скельних i донних екотопiв.
Using the method of digital photo processing, four color groups of Mytilus galloprovincialis are
determined: black, intermediate, dark and light brown. The activities of alanine and aspartate
aminotransferases taking part in processes of anaerobic metabolism between groups are significantly
different. The highest divergence (1.5–2.8 times) was observed between the edge groups with black
and light brown shell color. This is apparently related to mussel’s adaptation to environmental
conditions of rocky shores and seabed ecotops.
|
| issn |
1025-6415 |
| url |
https://nasplib.isofts.kiev.ua/handle/123456789/87141 |
| citation_txt |
Цветовой полиморфизм раковины и активность аминотрансфераз тканей Mytilus galloprovincialis Lam. / А.Д. Куликова, Т.И. Андреенко, А.А. Солдатов // Доповiдi Нацiональної академiї наук України. — 2014. — № 3. — С. 147-152. — Бібліогр.: 15 назв. — рос. |
| work_keys_str_mv |
AT kulikovaad cvetovoipolimorfizmrakovinyiaktivnostʹaminotransferaztkaneimytilusgalloprovincialislam AT andreenkoti cvetovoipolimorfizmrakovinyiaktivnostʹaminotransferaztkaneimytilusgalloprovincialislam AT soldatovaa cvetovoipolimorfizmrakovinyiaktivnostʹaminotransferaztkaneimytilusgalloprovincialislam AT kulikovaad kolirniipolimorfizmmušliiaktivnistʹaminotransferaztkaninmytilusgalloprovincialislam AT andreenkoti kolirniipolimorfizmmušliiaktivnistʹaminotransferaztkaninmytilusgalloprovincialislam AT soldatovaa kolirniipolimorfizmmušliiaktivnistʹaminotransferaztkaninmytilusgalloprovincialislam AT kulikovaad colorpolymorphismofashellandtheaminotranferaseactivityinmytilusgalloprovincialislamtissues AT andreenkoti colorpolymorphismofashellandtheaminotranferaseactivityinmytilusgalloprovincialislamtissues AT soldatovaa colorpolymorphismofashellandtheaminotranferaseactivityinmytilusgalloprovincialislamtissues |
| first_indexed |
2025-11-25T22:31:42Z |
| last_indexed |
2025-11-25T22:31:42Z |
| _version_ |
1850566136767184896 |
| fulltext |
УДК 594.124:577.1(262.5)
А.Д. Куликова, Т. И. Андреенко, А.А. Солдатов
Цветовой полиморфизм раковины и активность
аминотрансфераз тканей Mytilus galloprovincialis Lam.
(Представлено членом-корреспондентом НАН Украины Г.Е. Шульманом)
Методом фотографирования и цифровой обработки снимков раковин однозначно иден-
тифицированы четыре цветовые группы Mytilus galloprovincialis: черные, переходные,
темно-коричневые, светло-коричневые. Между ними отмечены существенные отличия
в активности аланин- и аспартатаминотрансфераз, задействованных в процессах ана-
эробного метаболизма. Наибольшие расхождения (1,5–2,8 раза) выявлены между крае-
выми группами: с черной и светло-коричневой окраской раковины. Допускается, что они
могут быть связаны с адаптацией моллюсков к условиям скальных и донных экотопов.
Двустворчатый моллюск Mytilus galloprovincialis Lam. является массовым для черноморс-
кого региона, его поселения отмечаются на иловых и скальных субстратах, принципиально
отличающихся по условиям абиотического окружения [1]. Для иловых поселений характер-
но преобладание моллюсков со светло-коричневой окраской раковины, для скальных —
с окраской черно-фиолетового цвета [1, 2].
Разделение мидий на цветовые группы, как правило, производится визуально. Коли-
чество выделяемых фенов варьирует. Отсутствие единого критерия, применяемого для
дифференциации цветовых морф, затрудняет исследования. В последнее время для опи-
сания интенсивности и характера окраски биологических объектов широкое применение
получил метод цифровой обработки фотографий. Он позволяет описать цвет количествен-
но [3]. На этой основе нами была разработана новая методика дифференциации цветовых
морф мидии [4].
Считается, что окраска створок мидий генетически детерминирована. Об этом свиде-
тельствуют распределение фенов в популяции [5] и результаты гибридологического анали-
за [6]. Однако схема наследования данного признака, обсуждаемая в ряде работ, оконча-
тельно не принята [5–7].
Сравнительная оценка абиотических условий скальных и иловых биотопов позволяет
предположить, что основным фактором, определяющим направление действия естествен-
ного отбора, является содержание кислорода в морской среде. Отсюда следует, что поиск
различий на популяционном уровне должен быть сосредоточен на молекулярных системах,
ответственных за толерантность моллюска к условиям гипоксии и аноксии.
Аспартатаминотрансфераза (АСТ, КФ 2.6.1.1) и аланинаминотрансфераза (АЛТ,
К.Ф.2.6.1.2) — эндогенные ферменты класса трансфераз. АСТ определяет устойчивость
моллюсков к экстремальным формам гипоксии и аноксии, так как сопрягает процессы бел-
кового и углеводного обменов (аспартат-сукцинатное направление метаболизма) [8]. АЛТ
контролирует сукцинаттиокиназную реакцию [9], направленную на образование в процессе
гликолиза менее токсичных метаболитов [10].
Для АСТ принята шестиаллельная схема наследования, объясняющая высокое феноти-
пическое разнообразие [11]. Она допускает существование 21 возможного варианта геноти-
па, из которых 13 обнаружено экспериментально [11]. Отсюда следует, что система АСТ
© А.Д. Куликова, Т.И. Андреенко, А.А. Солдатов, 2014
ISSN 1025-6415 Доповiдi Нацiональної академiї наук України, 2014, №3 147
Рис. 1. Распределение цветовых характеристик створок раковин M. gаlloprovincialis в системе координат
Red-Hue (Adobe Photoshop CS-3): а — полигон распределения; б — результаты статистической обработки,
x± Sx
может являться удобной моделью для изучения популяционной структуры M. galloprovin-
cialis. Относительно АЛТ такая информация отсутствует.
Цель настоящей работы — сравнить активность АСТ и АЛТ в тканях четырех цветовых
групп M. galloprovincialis, выявленных на основе цифровой обработки фотографий створок
моллюска.
Объектом исследований служили половозрелые особи моллюска M. gаlloprovincialis (се-
мейство Mytilidae) обоего пола с различным характером пигментации створок. Длина ра-
ковины составляла 42–75 мм. Характер окраски раковин моллюсков оценивали, используя
метод фотографирования и цифровой обработки снимков раковин в системе координат
Red-Hue (Adobe Photoshop CS-3) [4].
Мягкие ткани моллюсков (жабры, нога) препарировали при 0–4 ◦С. Полученные образ-
цы хранили при −27 . . .−28
◦С в морозильной камере (“Liebherr-Comfort”, Германия). Го-
могенаты готовили непосредственно в день эксперимента. В качестве трансформирующей
среды использовали 1,15% раствор KCl.
Активность АСТ и АЛТ определяли с помощью унифицированного динитрофенилгид-
разинового метода Райтмана–Френкеля [12] при 25 ◦С. В работе использовали стандартный
набор реактивов: “Simco, Ltd” (Украина). Содержание белка в пробах контролировали по
методу Лоури.
Дифференциация цветовых морф. При отработке метода фотографирования и цифро-
вой обработки снимков раковин в качестве показательной характеристики было выбрано
значение красного компонента (Red) [4]. Полигон распределения, построенный в системе
координат Red-Hue (красный цвет — тон), позволяет выделить четыре относительно изо-
лированных скопления точек (рис. 1, а). Их обозначили как: черная (Red — 37,2–61,8 у. е.),
переходная (Red — 71,6–89,6 у. е.), темно-коричневая (Red — 91,2–126,0 у. е.) и светло-корич-
невая (Red — 130,8–146,0 у. е.). Статистическая обработка цифровых массивов показала, что
между этими цветовыми группами (по Red) существуют достоверные различия на уровне
смежных скоплений точек при p <0,001 (см. рис. 1, б ).
Активность АСТ. Активность АСТ варьировала от 0,02 до 0,234 мкмоль пирувата ×
×мин−1
·мг−1 белка. Наблюдалась ее выраженная зависимость от цвета раковины моллюска
(рис. 2, а). Для ноги ее можно описать уравнением линейной регрессии при высоких значе-
ниях R2 (0,967). Максимальные величины отмечены у особей со светло-коричневой окрас-
148 ISSN 1025-6415 Reports of the National Academy of Sciences of Ukraine, 2014, №3
Рис. 2. Зависимость активности трансаминаз в тканях M. gаlloprovincialis от цветовых характеристик ее
раковины: a — активность АСТ в ноге; б — активность АСТ в жабрах; в — активность АЛТ в ноге, г —
активность АЛТ в жабрах; R — Red
кой раковины (0,094 ± 0,021 мкмоль пирувата × мин−1
· мг−1 белка), а минимальные —
с раковиной черной окраски. Различия составили 2,8 раза (p < 0,001).
Близкие результаты получены и в отношении жабр (см. рис. 2, б ). У моллюсков со
светло-коричневой окраской раковины активность АСТ составила 0,065 ± 0,012 мкмоль
пирувата × мин−1
· мг−1 белка. Это почти на 50% выше, чем у особей с черной окраской
створок (p < 0,05), и более чем в 3 раза выше, чем у особей с переходной и темно-коричне-
вой окраской раковин (p < 0,001). При этом зависимость лучше описывалась уравнением
параболической функции.
Как уже отмечалось, АСТ определяет аспартат-сукцинатное направление метаболиз-
ма [8], позволяющее получать дополнительный к гликолитическому ресурс макроэргов
в условиях экстремальных форм гипоксии и аноксии. Высокая активность АСТ у осо-
бей со светло-коричневой окраской раковины, вероятно, связана с особенностями условий
обитания данной цветовой группы M. gаlloprovincialis. Эти моллюски чаще встречаются
в донных сообществах, где отсутствует активная циркуляция в водной толще и наблю-
дается внешний дефицит кислорода. Моллюски с черной окраской раковины, напротив,
преобладают в скальных биотопах, часто приуроченных к прибойной зоне, где возникнове-
ние гипоксии невозможно. В этом, по-видимому, состоит основная причина обнаруженных
различий в активностях АСТ.
ISSN 1025-6415 Доповiдi Нацiональної академiї наук України, 2014, №3 149
Активность АЛТ. Значение активности АЛТ в ноге варьировало от 0,038 до
0,42 мкмоль пирувата × мин−1
· мг−1 белка (см. рис. 2, в), уменьшаясь по направлению
от черных моллюсков к светлоокрашенным. Зависимость активности от пигментации ра-
ковины можно описать уравнением линейной регрессии (R2 — 0,925). Практически между
всеми цветовыми группами наблюдались достоверные отличия (p < 0,01). Активность АЛТ
в группе моллюсков с черной окраской в 2,3 раза превышала таковую в группах с корич-
невой окраской.
В жабрах характер распределения активностей среди цветовых групп напоминал тако-
вой для АСТ и описывался параболической функцией (см. рис. 2, г). В этих тканях обе
краевые группы имели достоверно более высокое значение активности, чем моллюски про-
межуточной окраски. Самая высокая активность АЛТ зафиксирована у светло-коричневых
особей, она превышала показатели группы с черной окраской в 2,1 раза (p < 0,005), с тем-
но-коричневой и переходной — в 3,5–4,0 раза (p < 0,001). Меньшая активность наблюдалась
у мидий с черной окраской створок, она превышала промежуточные группы приблизитель-
но в два раза (p < 0,05).
Изначально предполагалось, что более приспособленная к аноксии коричневая морфа
должна иметь высокую активность АЛТ. Однако в ноге наблюдалась прямо противопо-
ложная ситуация. У взрослых моллюсков в основании данного органа располагается желе-
за, секретирующая биссус — образование, позволяющее мидии прикрепляться к субстрату.
Известно, что для черной морфы характерна большая интенсивность синтеза биссусной ни-
ти [5]. По-видимому, это связано со спецификой местообитания — темноокрашенные мол-
люски образуют поселения на скалистом субстрате [1]. Подверженные волновой нагрузке,
они нуждаются в прочном прикреплении к поверхности и постоянном продуцировании но-
вых нитей взамен поврежденных.
Адгезивный белок биссуса считается полифенольным: для него характерно высокое
содержание фенилсодержащих аминоксилот (∼19% тирозина и дигидроксифенилалани-
на) [13, 14]. Кроме того, 6,8% составляет аланин и 19% — пролин. Обе эти аминокислоты —
заменимые. Наиболее распространенный способ биосинтеза аланина — переаминирование
пирувата. Реакция катализируется АЛТ, при этом запас пирувата постоянно пополняется:
пируват + глутамат ↔ алани + α-кетоглутарат.
Пролин синтезируется из глутамата в ходе нескольких последовательных реакций [15].
Глутамат отсутствует в первичной последовательности биссуса, однако он необходим как
источник для восстановления запаса свободного пролина. Существует до пяти известных
путей синтеза глутаминовой кислоты, по меньшей мере два из них используют α-кетоглу-
тарат. На стадии α-кетоглутаровой кислоты в цикле Кребса она может выводиться из круга
с превращением ее в L-глутаминовую кислоту.
Первый способ синтеза глутамата, реакция обратимого переаминирования, представлена
выше. Коэффициент АЛТ близок к единице, поэтому реакция может протекать в обоих
направлениях. Однако такой способ пополнения пула глутамата мало вероятен — в этом
случае происходит накопление пирувата и не синтезируется аланин.
Второй путь синтеза глутамата из α-кетоглутарата контролируется ферментом глута-
матдегидрогеназой:
α-кетоглутарат + НАДФH +NH
+
4
↔ глутамат + НАДФ+
+H2O.
150 ISSN 1025-6415 Reports of the National Academy of Sciences of Ukraine, 2014, №3
Активное переаминирование пирувата увеличивает в ткани запас аланина и α-кетоглута-
рата, который в ходе ряда последовательных ферментативных реакций становится источ-
ником биосинтеза пролина.
Вероятно, специфика метаболизма в ноге мидий в первую очередь направлена на про-
дукцию биссусной нити. В таком случае высокая активность АЛТ у черной морфы связана
не с нейтрализацией метаболитов гликолиза, а с пополнением пула свободных аминокислот
(пролина и аланина).
Таким образом, применение метода фотографирования и цифровой обработки снимков
раковин позволило однозначно идентифицировать четыре цветовые группы M. galloprovin-
cialis: черные, переходные, темно-коричневые, светло-коричневые. Между ними отмечены
существенные отличия в активности АСТ и АЛТ, задействованных в процессах анаэробного
метаболизма. Наибольшие расхождения выявлены между краевыми группами: с черной
и светло-коричневой окраской раковины. Допускается, что они могут быть связаны с адап-
тацией моллюсков к условиям скальных и донных экотопов.
1. Иванов В.Н., Холодов В.И., Сеничева М.И. и др. Биология культивируемых мидий. – Киев: Наук.
думка, 1989. – 99 с.
2. Казанкова И.И. Частота цветовых морф в поселениях Mytilus galloprovincilis в прибрежных водах
южного и юго-западного Крыма // Экология моря. – 2008. – 75. – С. 38–41.
3. Козминский Е. В., Лезин П.А. Методика цветовых измерений элементов окраски раковины у брю-
хоногих моллюсков // Биология моря. – 2006. – 32, № 5. – С. 371–373.
4. Куликова А.Д. Выявления цветовых морф моллюска Mytilus galloprovincialis Lam. с использованием
компьютерной обработки фотографий // Мор. экол. журн. – 2012. – 11, № 3. – С. 63–67.
5. Булатов К.В. Генетическая природа окраски раковин у черноморской мидии Mytilus galloprovincialis
Lam. // Докл. АН УССР. Сер. Б. – 1984. – № 6. – С. 53–55.
6. Столбова Н. Г., Пиркова А. В., Ладыгина Л.В. Наследование цвета раковины у мидии Mytilus gallo-
provincialis Lam. // Цитология и генетика. – 1996. – 30, № 6. – С. 62–65.
7. Шурова Н. M., Золотарев В.Н. Анализ фенотипической структуры поселений мидий Mytilus gal-
loprovincialis Черного моря по окраске наружного призматического слоя их раковин // Мор. экол.
журн. – 2008. – 7, № 4. – С. 88–97.
8. Hochachka P.W., Fields J., Mustafa T. Animal life without oxygen: basic biochemical mechanisms // Am.
Zool. – 1973. – 13. – P. 543–555.
9. Mommsen Th. P., French C. J., Hochachka P.W. Sites and patterns of protein and amino acid utilization
during spawning migration of salmon // Can. J. Zool. – 1980. – 58. – P. 1785–1799.
10. Kluytmans J. H., Zandee D. I. Сomparative study of the formation and excretion of anaerobic fermentation
products in bivalves and gastropods // Comp. Biochem. Physiol. B: Biochem. Mol. Biol. – 1983. – 75,
No 4. – P. 72–732.
11. Johnson A.G., Utter F.M. Electrophoretic variants of aspartate aminotransferase of the bay mussel, Myti-
lus edulis (Linnaeus, 1758) // Comp. Biochem. Physiol. B: Biochem. – 1973. – 44. – P. 317–323.
12. Камышников В.С. Справочник по клинико-биохимическим исследованиям и лабораторной диагнос-
тике. – Москва: МЕДпресс-информ, 2004. – 501 с.
13. Waite J. H., Tanzer M. L. Polyphenolic substances of Mytilus edulis // Science. – 1981. – 212. – P. 1038–
1040.
14. Inoue K., Othe S. Adhesive protein cDNA of Mytilus galloprovincialis encodes decapeptide repeats but no
hexapeptide motif // Biol. Bull. – 1994. – 186. – P. 349–355.
15. Lehninger A. L., Nelson D.L., Cox M.M. Principles of Biochemistry. – 3rd ed. – New York: Worth Publi-
shers, 1993. – 729 p.
Поступило в редакцию 01.08.2013Институт биологии южных морей
им. А.О. Ковалевского НАН Украины, Севастополь
ISSN 1025-6415 Доповiдi Нацiональної академiї наук України, 2014, №3 151
А.Д. Кулiкова, Т. I. Андреєнко, О.О. Солдатов
Колiрний полiморфiзм мушлi i активнiсть амiнотрансфераз тканин
Mytilus galloprovincialis Lam.
Методом фотографування i цифрової обробки знiмкiв мушель однозначно iдентифiковано
чотири колiрнi групи Mytilus galloprovincialis: чорнi, перехiднi, темно-коричневi, свiтло-ко-
ричневi. Мiж ними вiдмiчено iстотнi вiдмiнностi в активностi аланiн- и аспартатамi-
нотрансфераз, задiяних у процесах анаеробного метаболiзму. Найбiльшi розбiжностi (1,5–
2,8 раза) виявленi мiж крайовими групами: з чорним i свiтло-коричневим забарвленням
мушлi. Допускається, що вони можуть бути пов’язанi з адаптацiєю молюскiв до умов
скельних i донних екотопiв.
A.D. Kulikova, T. I. Andreenko, A. A. Soldatov
Color polymorphism of a shell and the aminotranferase activity in
Mytilus galloprovincialis Lam. tissues
Using the method of digital photo processing, four color groups of Mytilus galloprovincialis are
determined: black, intermediate, dark and light brown. The activities of alanine and aspartate
aminotransferases taking part in processes of anaerobic metabolism between groups are significantly
different. The highest divergence (1.5–2.8 times) was observed between the edge groups with black
and light brown shell color. This is apparently related to mussel’s adaptation to environmental
conditions of rocky shores and seabed ecotops.
152 ISSN 1025-6415 Reports of the National Academy of Sciences of Ukraine, 2014, №3
|