Використання методів асептичної культури для розмноження рідкісних та високодекоративних представників тропікогенної флори

Long-term researches of rare and ornamental tropical and subtropical plants micropropagation and the seed reproduction are summed up in this article. Seed and clonal propagation methods of many tropical and subtropical plants in culture in vitro are worked out. Optimum biotechnologies which permit t...

Ausführliche Beschreibung

Gespeichert in:

Bibliographische Detailangaben
Datum:	2004
Hauptverfasser:	Lavrentyeva, A.N., Ivannikov, R.V.
Format:	Artikel
Sprache:	Englisch
Veröffentlicht:	M.M. Gryshko National Botanical Garden of the NAS of Ukraine 2004
Online Zugang:	https://www.plantintroduction.org/index.php/pi/article/view/1053
Tags:	Tag hinzufügen Keine Tags, Fügen Sie den ersten Tag hinzu!
Назва журналу:	Plant Introduction
Завантажити файл:

Institution

Plant Introduction

_version_	1860144541131079680
author	Lavrentyeva, A.N. Ivannikov, R.V.
author_facet	Lavrentyeva, A.N. Ivannikov, R.V.
author_sort	Lavrentyeva, A.N.
baseUrl_str	https://www.plantintroduction.org/index.php/pi/oai
collection	OJS
datestamp_date	2020-01-05T12:33:48Z
description	Long-term researches of rare and ornamental tropical and subtropical plants micropropagation and the seed reproduction are summed up in this article. Seed and clonal propagation methods of many tropical and subtropical plants in culture in vitro are worked out. Optimum biotechnologies which permit to receive mass planting material are determined.
doi_str_mv	10.5281/zenodo.3253044
first_indexed	2025-07-17T12:48:23Z
format	Article
fulltext	УДК 582.594.2: 581.143.6 А.М. ЛАВРЕНТЬЄВА, Р.В. ІВАННІКОВ Національний ботанічний сад ім. М.М. Гришка НАН України Україна, 01014 м. Київ, вул. Тімірязєвська, 1 ВИКОРИСТАННЯ МЕТОДІВ АСЕПТИЧНОЇ КУЛЬТУРИ ДЛЯ РОЗМНОЖЕННЯ РІДКІСНИХ ТА ВИСОКОДЕКОРАТИВНИХ ПРЕДСТАВНИКІВ ТРОПІКОГЕННОЇ ФЛОРИ Підсумовано результати багаторічних досліджень розмноження рідкісних та високодекоративних рослин в умовах культури in vitro. Розроблено методи мікрокмнального та насіннєвого розмноження тропічних та субтропічних рослин з багатьох родин, оптимальні біотехнологічні прийоми, які дають змогу отримати масовий посадковий матеріал цих рослин. У Національному ботанічному саду імені М.М. Гришка (НБС) створена велика ко лекція тропічних та субтропічних рослин, яка нараховує близько 3000 видів, різно видів, сортів. М атеріал для колекції було отримано шляхом обміну за делектусами між ботанічними садами колишнього Р а дянського Союзу, а також привезено з чис ленних експедицій у країни Південної Америки, Азії та Африки. Ініціатором, "ду шею" та організатором цієї роботи була і є колишня завідувачка відділу тропічних та субтропічних рослин, а нині директор НБС ім. М.М. Гришка Тетяна Михайлівна Ч е ревченко. Завдяки її невичерпній енергії, відданості справі та щирій любові до рос лин і була зібрана колекція тропічних та субтропічних рослин, яка сьогодні є однією з найбільших на теренах України. Тому сьогодні у вчених є можливість проводити ґрунтовне дослідження різних питань біології, культивування та розмноження представників тропікогенної флори. Для збереж ення генофонду тропічних та субтропічних рослин особливого зн а чення набуває розробка як прийомів куль тивування окремих видів ex situ, так і методів їх масового розмноження. Най- прогресивнішим та економічно вигідним методом розмноження рослин є метод © А.М. ЛАВРЕНТЬЄВА, Р.В. ІВАННІКОВ, 2004 культури in vitro. Він дає змогу швидко розмножити рослини, забезпечити сте рильність та отримати масовий, морфо логічно вирівняний посадковий матеріал. Цей метод ґрунтується на здатності рос линних тканин утворювати під впливом ек зогенних гормонів калюс, протокорми та пагони [1, 4]. Зваж аю чи на перспективність зазначе ного методу у 1975 р. при відділі тропічних та субтропічних рослин НБС за ініціати вою та допомогою Т.М. Черевченко була створена одна з перших на той час в Ук раїні лабораторій мікророзмноження рос лин. Перед її працівниками були постав лені конкретні завдання: розробити мето ди клонального та насіннєвого розмноження тропічних та субтропічних рослин в асептич них умовах. Найбільшу увагу було приділено розмно женню представників родин Araceae Juss. та Orchidaceae Juss. як таких, що найбільше потребують збереження та розмноження ех situ. Багато видів з цих родин є рідкісними, деякі з них використовують у фітодизайні — вони входять в асортимент найпоширеніших та найулюбленіших кімнатних рослин. Росли ни з родини Orchidaceae найчастіше засто совують як гарну горщикову та зрізну куль туру. Крім того, ці рослини використовують для вирішення суто наукових питань, зокрема вивчення біології розвитку, онтоморфогенезу ISSN 1605-6574. Інтродукція рослин, 2004, № 1 41 А.М. Лаврентьева, Р.В. Іванніков та морфогенезу в культурі in vitro. Вони є ідеальним модельним об'єктом для вивчен ня впливу на рослинні організми імітованої мікрогравітації [8, 10, 12]. Все це потребує великої кількості посадкового матеріалу. Перші дослідження, здійснені у новоство- реній лабораторії, були присвячені насін нєвому розмноженню різних видів орхідних в культурі in vitro. Використовувалося насіння, одержане за делектусами і влас ної репродукції. Цьому передувала роз робка методики штучного запилення квіток орхідних в умовах оранжерей [11]. Відомо, що плоди орхідних містять ве лику кількість насіння (до 6 млн). У при родних умовах проростання насіння відбу вається тільки за умови встановлення симбіотичних зв 'язків зі специфічними ви дами грибів. За статистикою, кількість ви повненого насіння, яке потрапляє у спри ятливі умови і проростає, становить лише близько 5%. Метод насіннєвого розмно ження орхідних in vitro дає змогу про ростити на поживному середовищі пере важ ну більшість життєздатного насіння, а іноді (за обмеженої кількості колекційних екземплярів) є єдиним способом їх збере ж ення ex situ. Цим і зумовлене його широ ке застосування в багатьох країнах світу для промислового вирощування та одер ж ання нових сортів орхідних. Специфічність насіннєвого розмножен ня орхідних у культурі in vitro виявляєть ся в їх здатності утворювати вторинні протокорми під впливом дії різноманітних чинників навколишнього середовища. Вони диференціюються з епідермальних та су- бепідермальних клітин первинного прото- корма, внаслідок чого можна отримати ве лику кількість рослин у короткі терміни. За роки існування лабораторії були про ведені комплексні дослідження насіннєвого розмноження в культурі in vitro багатьох видів орхідних. Цьому сприяла розробка методики стерилізації насіння, завдяки чому ріст та розвиток сіянців пригнічувалися мінімально. Характерною особливістю насіння орхід них є його невеликі розміри та наявність недиференційованого на органи зародка, тому ріст і розвиток проростків повністю залеж ить від складу поживного середови ща. У зв 'язку з цим питанню розробки по живного середовища для пророщування насіння орхідних було приділено особливу увагу. В результаті проведених робіт було підібрано склад поживного середовища, головними компонентами якого були міне ральні солі за Кнудсоном. Замість дорогих та деф іцитних складових (ендосперму горіха кокосової пальми та інших екзотич них органічних добавок) були експери ментально підібрані такі речовини, як гу- мат натрію (50 мг/л), пептон (2 г /л ) та ак тивоване вугілля (500 мг/л). Встановлено, що для більшості наземних та епіфітних видів орхідних це середовище є найпри- датнішим. При його використанні збіль ш ується схожість, скорочується час про ростання насіння та прискорюються темпи онтогенетичного розвитку сіянців. На про пис цього середовища було отримано ав торське свідоцтво. Його широке застосу вання дало можливість отримати сіянці не тільки різних видів орхідних, а й предс тавників інших родин: Cactaceae (A stro- phy tum Lem., M elocactus Etourn. L. e t O., Mamillaria Haw., Neochilenia Backbg., Noto- cactus K. Sch., Opuntia Mill.); Crasuleaceae (Sedum L.); Euphorbiaceae (Euphorbia L.), Polypodiaceae (Platycerium Desv.); Nephro- lepidaceae (Nephrolepis Schott.); Aspleniaceae (Asplenium L.); Blechnaceae (Blechnum L.); Cyatheaceae (Cyathea Sm.), та рідкісних куль тур (Adenium obesum Roem. et Schult., Medi- nilla magnifica Lindl., Cycas revoluta Thunb.). Крім того, під час експериментів було встановлено, що насіння таких родів орхід них, як Phalaenopsis Blume, Paphiopedilum Pfitz., Laelia Lindl., Calanthe R. Br. та інших достигає швидше, ніж плід, тому висівання насіння безпосередньо з коробочки на по живне середовище значно скорочує строк його проростання. 42 ISSN 1605-6574. Інтродукція рослин, 2004, № 1 Використання методів асептичної культури для розмноження Орхідні відносяться до рослин, які легко утворюють міжродові гібриди. Як свідчать результати наших досліджень, можливо створення нових міжвидових та міжродо вих гібридів орхідних нашої та тропікоген- ної флори з метою отримання велико- квіткових гібридів, адаптованих до культи вування ex situ. Загальновідомо, що через складну гете розиготну природу орхідних при насіннє вому розмноженні відбувається значне розщеплення сортових ознак, в результаті чого утворюються фенотипово різні сіянці. У зв 'язку з цим при розмноженні та се лекційній роботі з орхідними доцільно ви користовувати метод клонального розмно ження рослин, розроблений Ж. Морелем [15]. При культивуванні експлантів орхід них, які містять меристематичні тканини, на поживному середовищі відбувається фор мування протокормів, подібних до первин них протокормів. Такі протокорми можна ділити та субкультивувати досить трива лий час, отримуючи необхідну їх кількість (до 1 -4 млн шт.). Ц я особливість орхідних леж ить в основі їх промислового розмно ження [14]. Слід зазначити, що найкраще і найшвидше в умовах асептичної культури розмножуються симподіальні види орхід них, повільніше — моноподіальні. У нашій лабораторії метод клонального розмноження з великим успіхом викорис товується і для розмноження представни ків інших родин. Різниця полягає лише у виборі експланта для розмноження та по дальш их умов його культивування. Н езва жаючи на широке застосування та велику кількість експериментальних даних, отри маних при використанні цього методу, розробка та удосконалення деяких етапів методу для окремих культур є актуальною проблемою. Нами виділено такі етапи мікроклональ- ного розмноження рослин: вибір експланта, отримання стерильного рослинного матеріа лу, оптимізація поживного середовища, виз начення та оптимізація умов культивування рослин та висадка їх у субстрат. Кожен етап методу має свої цілі та завдання. Дуже важливим при мікророзмноженні є вибір експланта. При цьому, як показали наші дослідження, слід ураховувати: онто генетичний та фізіологічний стан інтактної рослини, орган, який є джерелом експлан та, та його вік. Нами також встановлено, що при доборі експлантів необхідно зва ж ати на пору року, оскільки зміни у фізіолого-біохімічному стані рослин безпо середньо залеж ать від сезонних змін. Н а весні, коли відбувається інтенсивний приріст молодих пагонів, у тканинах збіль ш ується вміст ауксинів, що потенційно мо же впливати на розвиток експлантів. Од нак, як показали наші дослідження, у рос лин з родини Агасеае осінньо-зимовий період є найкращим для виділення екс плантів, що зумовлено їх інтенсивним рос том у цей період [2, 8]. Ріст та розвиток експлантів залеж ить також і від їхнього розміру. Експланти, які мають розміри від 0,1 до 0,5 см, - більш життєздатні, ніж ті, що мають розмір 0,1-0,5 мм. Для оздоровлення рослин від вірусної інфекції розмір експланта не по винен перевищ увати 200 мкн. Не менш важливим чинником, що впли ває на успішність розмноження в асеп тичній культурі, є генотип рослини. Нами було проведено дослідження регенера ційної здатності більш як 22 сортів Суш- bidium hybridum hort. і встановлено істот ну різницю щодо цього показника. Так, сорти з високим морфогенетичним потен ціалом формували до 900 протокормів на місяць, а з низьким - лише 100 [10]. З метою добору оптимальних експлан тів нами було проведено також детальне морфологічне дослідження різновікових пагонів орхідних. Встановлено, що в пазу хах листків вегетативних пагонів є сплячі бруньки, а на кореневищній частині паго на - бруньки відновлення. Вивчення мор фологічної будови цих бруньок показало, що всі вони різноякісні, що зумовлено їх ISSN 1605-6574. Інтродукція рослин, 2004, № 1 43 А.М. Лаврентьева, Р. В. Іванніков функціональним призначенням; мають різну здатність до морфогенезу, яка зал е ж ала від їх розміщення на пагоні та єм ності. Найбільший морфогенетичний по тенціал мають бруньки відновлення [3]. Апікальні меристеми (Aglaonema Schoot., Cattleya Lindl., Cymbidium hybr., Paphiope- dilum, Phalaenopsis, Dendrobium phalaeno- psis Fitzg., Dieffenbachia Schoot., M onstera Engl, Philodendron Schoot., Vanda Jones., Angraecum Bory, Cordyline Comm. Ex Juss, Nidularium Lem., Aechmea Ruiz, et Pav., Vriesea Lindl., Grevillea R.Br. ex Salisb., Hakea Schrad., Begonia L., Musa L.) виділя ли під мікроскопом або бінокулярною лупою (МБС-10). Для цього відрізали залишки листкових зачатків, виділяли меристему з одним або двома листковими примордіями та невеликою частиною тканини під ними. Для виділення пазушних бруньок ор хідних дуж е часто використовують вегету- ючі та молоді туберидії, що завдає значної шкоди клону та знижує інтенсивність його цвітіння. Нами була розроблена методика безперервного отримання молодих пагонів. Для цього старі туберидії, які відділяли від клону при пересадці рослин, висаджували у сфагновий мох. При проростанні сплячих бруньок, розташованих на туберидіях, ут ворювались молоді пагони, які і використо вували як джерело експлантів. Для отримання бруньок спочатку від діляли листки, потім під мікроскопом скальпелем робили по два вертикальних і поперечних надрізи навколо бруньки та один - у глибину. М аксимальний розмір такого експланта - 1x1 см. Якщо як експланти використовували ізо льовані листки (A nthurium L., S path iphy- lum Schoot., Caladium Vent., C attleya, Laelia, Phalaenopsis, Vanda), то їх розрізали на сегменти (1 см2) таким чином, щоб кожен з них мав бічну жилку. Сегменти розміщ у вали на поверхні поживного середовища. Якщо експлантами були сплячі бруньки суцвіть (Phalaenopsis, D endrobium p h a laenopsis, O ncidium Sw.), то спочатку квітконоси розрізали на сегменти до 3 см завдовжки, кожен з яких мав по одній бруньці. Потім видаляли одну або дві кри ючи луски та центральну частину брунь ки. Такі експланти слід розташ овувати на поживному середовищі з урахуванням їхньої фізіологічної полярності. З практики клонального мікророзмно- ження рослин відомо, що отримання ж и т тєздатного стерильного рослинного м а теріалу в багатьох випадках є проблема тичним. Поверхневі тканини всіх органів як орхідних, так і інших культур, зазви чай зараж ені спорами бактерій та грибів. У зв 'язку з цим нами був запропонований такий режим стерилізації інтактного м а теріалу: експланти обробляли послідовно 70%-м спиртом (1 хв.), 1%-м розчином "Fa- mosept" (15 хв.) або 0,1%-м діациду (20 хв.); 15%-м перекисом водню (15 хв.); 10%-м "Chlorox" (20 хв.). Потім три-чотири рази промивали у стерильній воді. Наведений режим стерилізації не уш коджував ткани ни, не пригнічував розвиток рослин і з а безпечував максимальну стерильність ек сплантів. Слід зазначити, що послідовність та експозиція використання стерилізую чих реагентів встановлюється під час ро боти емпіричним методом залеж но від ти пу експланта та ступеня його інфікова- ності [2, 5, 13]. Таким чином, у результаті проведених досліджень з'ясувалося, що найкращими експлантами для мікророзмноження є па зушні бруньки (Cymbidium, D endrobium phalaenopsis, A randa Blume., Paphiope- dilum, Aglaonema, Thunia Blume., Vanda, Dieffenbachia, M onstera, Cordyline, N idu larium, Aechmea); верхівки листків (Cym bidium , D endrob ium Sw., E p idendrum , Laeliocattleya, Vanda), верхівки пагонів (Cymbidium, Cattleya, Rhynchostylis, G re villea, Hakea, Musa, Cycas); листки сіянців (Cattleya, Phalaenopsis, Laelia); бруньки суцвіть (Dendrobium , Phalaenopsis, V an da); кінчики коренів Cym bidium , P ha lae nopsis); сплячі бруньки пагонів (Cymbi- 44 ISSN 1605-6574. Інтродукція рослин, 2004, N° 1 Використання методів асептичної культури для розмноження dium, Cattleya, Phalaenopsis, Aglaonema, M onstera, D ieffenbachia, Hakea, Musa, Ni- dularium , Aechm ea, Cordyline). Відомо, що регенераційна здатність ізольованих експлантів рослин залеж ить від впливу багатьох чинників. Вплив кож ного з них, а тим більше їх взаємодію, важко оцінити, проводячи досліди за зви чайною схемою. Тому ми застосували метод математичного планування експери менту, який дає змогу за короткий про міжок часу визначити залежність мікро- розмноження від багатьох чинників та їх взаємодії, оптимізувати склад поживних середовищ та умови культивування на різних етапах процесу мікророзмноження [9, 16]. При цьому було спрощено склад та визначено оптимальні концентрації скла дових поживного середовища, які забезпе чували максимальний приріст ізольованих культур. Вперше було показано позитив ний вплив картопляного екстракту та го могенату банана на ріст протокормів та сіянців орхідних. Це дало нам змогу замінити дорогі домішки і здешевити по живні середовища, завдяки чому вони р е комендовані для промислового викорис тання. Для багатьох тропічних і субтропічних рослин (A nthurium , Caladium, Spathiphyl- lum), які на першому етапі мікророзмно ження регенерують калюс, оптимальними є поживні середовища Піріка або М у- расіге-Скуга (з 0,8 м г/л 2,4-Д, Ім г /л БАП та 1 г /л активованого вугілля). Для куль тивування сплячих бруньок пагонів, резе рвних бруньок бульб оптимальні поживні середовища Піріка (І—IV), модифіковані внесенням 5-10 м г/л БАП, 2 м г/л зеатину, 1 м г/л ЮК, 20% березового соку, 1 г /л ак тивованого вугілля (Aglaonema, M onstera, Cordyline, N idularium , Aechm ea, D ieffen bachia, Musa, Philodendron, Ananas Mill., Neoregelia L. B. Smith). Для розвитку ізольованих культур ор хідних на етапі утворення протокормів оп тимальним є поживне середовище Кнудсона (з 2 м г/л БАП або аденіну). Для розмно ж ення протокормів, регенерації рослин та кож застосовують середовище Кнудсона (з 7 м г/л аденіну; 10 м г/л нікотинової кисло ти та 30%-м картопляним екстрактом). Ви користання модифікованого пропису цього поживного середовища дало нам м ож ли вість оптимізувати етапи мікророзмножен ня більше як 20 видів орхідних (Cymbi- dium , Cattleya, Phalaenopsis, Dendrobium , Vanda, Paphiopedilum , Oncidium, A ngrae- cum, Laelia та ін. ). Умови культивування ізольованих куль тур тропічних і субтропічних рослин мають дуже важливе значення. Зазвичай ізольо вані тканини культивують на твердих ага- ризованих середовищах. Проте іноді на пер ших етапах розмноження для забезпечення максимального приросту калюсу, пагонів або протокормів використовують рідкі поживні середовища із застосуванням ролера або шейкера. Культивування в таких умовах сприяє утворенню додаткових численних меристематичних центрів, які у подальшому регенерують рослини [6]. Усі ізольовані культури тропічних та субтропічних рослин вирощували у спе ціальному приміщенні, де вологість була 70%, температура - 26-28° С, фотоперіод - 16 год, освітлення - 3 -4 тис. лк. Термін розвитку рослин-регенерантів в культурі in vitro не однаковий і становить у Anthurium , Cymbidium, Dendrobium pha laenopsis, Vanda, Doritis Lindl., Oncidium, Nidularium - 11-12 місяців; у Caladium, Spathiphyllum , Begonia L., N epenthes Poit., Aechmea, Ananas, Musa - 6 -8 місяців, у Cattleya - 1,5 року. Цикл розвитку сіянців орхідних триває від 3 -4 місяців (Calanthe) до 1,5-2,5 року (Cattleya). У субстрат ви саджую ть рослини з добре розвиненою ко реневою системою і 3—4 листками. Н ай сприятливіший період для цього - весна або початок літа. В останні роки лабораторія успішно займається також мікророзмноженням де коративних деревних культур, наприклад, ISSN 1605-6574. Інтродукція рослин, 2004, Ne 1 45 A M . Лаврентьева, P.В. Іванніков Camelia japonica L. та її сортів. У колекції НБС нараховується близько 20 сортів та гібридів С. japonica. Однак її культивуван ня та вегетативне розмноження є дуже складними. До того ж, деякі сорти камелії зовсім не утворюють насіння. У зв 'язку з цим нами розроблені методи насіннєвого та клонального мікророзмноження чотирьох сортів С. japonica в культурі in vitro. Для насіннєвого розмноження використо вували насіння власної репродукції та зібра не in situ. Вивчення процесів розвитку сіянців Camelia показало, що насіння почи нає проростати вже на 3-й день. Загалом процес формування сіянців триває 60-70 днів залежно від сорту. Для збільшення кількості сіянців проводили їх живцювання. Це сприяє активному розвитку пазушних бруньок і дає змогу отримати від 3 до 5 до даткових пагонів, які потім вкорінювали на поживному середовищі Кнудсона (з 5 м г/л ІМК та 1 г /л активованого вугілля). При проведенні експериментів з насіннє вого розмноження камелії ми виявили дуже цікавий різновид морфогенезу - соматичний ембріогенез. Нами було з'ясовано, що основ ними параметрами, які визначали розвиток ембріоїдів, були тип експланта та стадія йо го розвитку. Найбільша їх кількість була от римана з тканин черешків сім'ядоль, вони мали досить великі розміри (до 5 мм у діаметрі). Було також встановлено, що ди ференціація ембріоїдів відбувалась асинхрон но в епідермальних і субепідермальних ш а рах сім'ядолей. Після перенесення їх на світло, вони набували зеленого кольору і на далі з них формувалися пагони [7]. Рослини, які утворились із соматичних зародків, виявляли сомаклональну варіабель ність, що може бути використане у май бутній селекційній роботі. Д ля клонального м ікророзмноження сортів С. japonica як експланти використо вували молоді відростаючі пагони. Апікальні та пазуш ні бруньки цих пагонів формува ли рослини на поживному середовищі Му- расіге-Скуга з 4 м г/л аденіну. Для збіль шення кількості рослин-регенерантів їх суб- культивували на середовищі Піріка (з 10 мг/л БАП), отримуючи по 5 -10 додаткових ад вентивних пагонів. Рослини вкорінювали на цьому ж середовищі з 5 м г/л ІМК. Т а ким чином, проведені дослідження дали нам можливість розробити оригінальні ме тоди збільшення кількості посадкового ма теріалу С. japonica. З 1990 р. у лабораторії інтенсивно дос лідж ую ться питання морфогенезу тро пічних та субтропічних рослин в культурі in vitro. За цей період було детально вив чено та описано етапи морфогенезу 8 ви дів з родини Orchidaceae, 2 - Агасеае, 2 - Теасеае, 2 видів - Agavaceae. За час існування лабораторії було отри мано велику кількість посадкового матеріа лу багатьох видів рослин з колекції відділу та передано у промислове квітникарство Украї ни, що значно збагатило асортимент квітко вих та декоративно-листяних культур. Упродовж останніх 10-15 років в лабора торії були розроблені та модифіковані мето ди насіннєвого та клонального мікророзмно ження тропічних і субтропічних рослин з таких родин, як: Orchidaceae, Агасеае, Вго- meliaceae, Proteaceae, Cactaceae, Musaceae, Begoniaceae, Agavaceae, Cycadeaceae, Nepen- thaceae, Gesneriaceae, Теасеае. Визначено оп тимальні біотехнології розмноження цих рослин, що, в свою чергу, дало змогу ство рити їх колекцію в умовах in vitro. Вона мо ж е бути основою для селекції нових форм декоративних рослин, що має велике прак тичне значення. Створена Т.М. Черевченко лабораторія мікроклонального і насіннєвого розмноження тропічних та субтропічних рослин є науково- консультативним центром, де проходять практику та виконують дипломні роботи сту денти багатьох вузів України; здійснюється багато спільних науково-технічних проектів з іншими науковими установами та ботанічни ми садами; проходять стажування спів робітники з різних ботанічних установ. У планах лабораторії - дослідження та підтримка вже існуючого банку культур, вве дення в культуру in vitro рідкісних, зника 46 ISSN 1605-6574. Інтродукція рослин, 2004, Ns 1 використання методів асептичної культури для розмноження ю чих, м ал о п о ш и р ен и х видів, ви со ко деко р а- тивних рослин відкритого і захищ еного ґр у н ту та їхн іх гібридів я к цінного селекційного м атер іалу . 1. Бутенко Р.Г. Биология клеток высших рас тений in vitro и биотехнологии на их основе: Учебное пособие. - М.: УБК-Пресс, 1999. - 160 с. 2. Иванников P.S., Лаврентьева А.Н. Опыт размножения Monstera deliciosa Viemb. var. borsi- giana (C. Koch.) Engl, в культуре in vitro / / Ab stracts of the Intern. Conf. "The Biology of Plant Cells in Vitro and Biotechnology" (Saratov, Sep tem ber 9-13, 2003). - Saratov, 2003. - P. 126-127. 3. Іванніков P.B. Біологія розвитку видів роду Laelia Lindl. (Orchidaceae Juss.) в умовах оранже рейної культури та культури in vitro. - Автореф. дис. ... канд. біол. наук. - Київ, 2001. - 22 с. 4. Катаева Н.В., Бутенко Р.Г. Клональное мик роразмножение растений. - М.: Наука, 1983. - 96 с. 5. Лаврентьева А.Н., Вахруш кин B.C., Коваль ская Л.А. Особенности семенного и клонального размножения видов рода Paphiopedilum Pfitzg. (Orchidaceae Juss.) в культуре in vitro / / Биоло гический вестник Харьковского ун-та. - 2003. - 7, № 1-2. - С. 39-42. 6. Лаврентьева А.Н., Мальцов И.Ю. Размноже ние Cordyline terminalis Comm, ex Juss. cv' Kivi' в культуре in vitro / / Abstracts of the Intern. Conf. "The Biology of Plant Cells in Vitro and Biotech nology" (Saratov, Septem ber 9-13, 2003). - Saratov, 2003. - P. 176-177. 7. Лаврентьева A.M., Харченко 1.1. Насіннєве та клональне розмноження сортів Camellia japonica L. в культурі in vitro / / Інтродукція рос лин. - 2003. - № 1-2. - С. 84-92. 8. Лаврентьева А.М., Денісьєвська Н.О. Кло нальне мікророзмноження рослин з роду Aglao- nema Schoot / / Інтродукція рослин. - 1999. - № 2. - С. 73-76. 9. Максимов В.Н., Федоров В.Д. Применение методов математического планирования экспери мента. - М.: Изд-во МГУ, 1969. - 125 с. 10. Черевченко Т.М., Заіменко Н.В., Лаврен тьева А.М. Зв'язок продуктивності цвітіння сор тів Cymbidium hybridum з їх регенераційною та асиміляційною здатністю / / Інтродукція рослин. - 1999. - № 1. - С. 70-73. 11. Черевченко Т.М., Ковальська Л.А., Буюн Л.І. та ін. Особливості репродуктивної біології та по чаткових етапів розвитку деяких видів тропічних та субтропічних орхідей / / Інтродукція рослин. - 2001. - № 3-4. - С. 58-63. 12. Черевченко Т.М., Лаврентьева А.Н., Будак В.Е. Биология, размножение и культивирование Nepenthes madagascariensis Poit / / Укр. ботан. журн. - 1992. - 49, № 2. - С. 87-90. 13. Черевченко Т.М., Лаврентьева А.Н., Буюн Л.И., Ковальская Л.А. Семенное и клональное размно жение видов рода Cattleya Lindl. (Orchidaceae Juss.) в культуре in vitro / / Abstracts of the Intern. Conf. "The Biology of Plant Cells in Vitro and Biotechnology" (Saratov, September 9-13, 2003). - Saratov, 2003. - P. 64-65. 14. Arditti J. Orchid biology: Reviews and perspe ctives. 1. - Ithaca: Cornell Univ. Press, 1977. - 310 p. 15. Morel J. Tissue culture - a new means of clonal propagation of orchids / / Amer. Orchid Soc. Bull. - 1964. - 33, No 7. - P. 473-478. 16. Muraschige Т., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue cul tures / / Phisiol. Plant. - 1962. - 15, No 3. - P. 473-497. 17. Pierik R.D.M. Anthurium andreanum plants produced from callus tissues cultivated in vitro / / Phisiol. Plant. - 1975. - 37. - P. 80-82. А.Н. Лаврентьева, P.B. Иванников Национальный ботанический сад им. Н.Н. Гришко НАН Украины, Украина, г. Киев ИСПОЛЬЗОВАНИЕ МЕТОДОВ АСЕПТИЧЕСКОЙ КУЛЬТУРЫ ДЛЯ РАЗМНО ЖЕНИЯ РЕДКИХ И ВЫСОКОДЕКОРАТИВНЫХ РАСТЕНИЙ ТРОПИКОГЕННОЙ ФЛОРЫ Подведены итоги многолетних исследований разм ножения высокодекоративных растений в услови ях культуры in vitro. Разработаны методы микро- клонального и семенного размножения тропиче ских и субтропических растений из многих се мейств, оптимальные биотехнологии, позволяющие получить массовый посадочный материал этих рас тений. A.N. Lavrentyeva, R.V. Ivannikov М.М. Grishko National Botanical Gardens, National Academy of Sciences of Ukraine, Ukraine, Kyiv USE OF ASEPTIC CULTURE METHODS FOR A REPRODUCTION RARE AND ORNAMENTAL TROPICAL AND SUBTROPICAL PLANTS Long-term researches of rare and ornamental tro pical and subtropical plants micropropagation and the seed reproduction are summed up in this article. Seed and clonal propagation methods of many tro pical and subtropical plants in culture in vitro are worked out. Optimum biotechnologies which permit to receive mass planting material are determined. ISSN 1605-6574. Інтродукція рослин, 2004, № 1 47
id	oai:ojs2.plantintroduction.org:article-1053
institution	Plant Introduction
keywords_txt_mv	keywords
language	English
last_indexed	2025-07-17T12:48:23Z
publishDate	2004
publisher	M.M. Gryshko National Botanical Garden of the NAS of Ukraine
record_format	ojs
resource_txt_mv	wwwplantintroductionorg/7e/c449e1a0b8f076884ed77b91646e1c7e.pdf
spelling	oai:ojs2.plantintroduction.org:article-10532020-01-05T12:33:48Z Use of aseptic culture methods for a reproduction rare and ornamental tropical and subtropical plants Використання методів асептичної культури для розмноження рідкісних та високодекоративних представників тропікогенної флори Lavrentyeva, A.N. Ivannikov, R.V. Long-term researches of rare and ornamental tropical and subtropical plants micropropagation and the seed reproduction are summed up in this article. Seed and clonal propagation methods of many tropical and subtropical plants in culture in vitro are worked out. Optimum biotechnologies which permit to receive mass planting material are determined. Підсумовано результати багаторічних досліджень розмноження рідкісних та високодекоративних рослин в умовах культури in vitro. Розроблено методи мікрокмнального та насіннєвого розмноження тропічних та субтропічних рослин з багатьох родин, оптимальні біотехнологічні прийоми, які дають змогу отримати масовий посадковий матеріал цих рослин. M.M. Gryshko National Botanical Garden of the NAS of Ukraine 2004-03-01 Article Article application/pdf https://www.plantintroduction.org/index.php/pi/article/view/1053 10.5281/zenodo.3253044 Plant Introduction; Vol 21 (2004); 41-47 Інтродукція Рослин; Том 21 (2004); 41-47 2663-290X 1605-6574 10.5281/zenodo.3377855 en https://www.plantintroduction.org/index.php/pi/article/view/1053/1010 http://creativecommons.org/licenses/by/4.0
spellingShingle	Lavrentyeva, A.N. Ivannikov, R.V. Використання методів асептичної культури для розмноження рідкісних та високодекоративних представників тропікогенної флори
title	Використання методів асептичної культури для розмноження рідкісних та високодекоративних представників тропікогенної флори
title_alt	Use of aseptic culture methods for a reproduction rare and ornamental tropical and subtropical plants
title_full	Використання методів асептичної культури для розмноження рідкісних та високодекоративних представників тропікогенної флори
title_fullStr	Використання методів асептичної культури для розмноження рідкісних та високодекоративних представників тропікогенної флори
title_full_unstemmed	Використання методів асептичної культури для розмноження рідкісних та високодекоративних представників тропікогенної флори
title_short	Використання методів асептичної культури для розмноження рідкісних та високодекоративних представників тропікогенної флори
title_sort	використання методів асептичної культури для розмноження рідкісних та високодекоративних представників тропікогенної флори
url	https://www.plantintroduction.org/index.php/pi/article/view/1053
work_keys_str_mv	AT lavrentyevaan useofasepticculturemethodsforareproductionrareandornamentaltropicalandsubtropicalplants AT ivannikovrv useofasepticculturemethodsforareproductionrareandornamentaltropicalandsubtropicalplants AT lavrentyevaan vikoristannâmetodívaseptičnoíkulʹturidlârozmnožennârídkísnihtavisokodekorativnihpredstavnikívtropíkogennoíflori AT ivannikovrv vikoristannâmetodívaseptičnoíkulʹturidlârozmnožennârídkísnihtavisokodekorativnihpredstavnikívtropíkogennoíflori

Використання методів асептичної культури для розмноження рідкісних та високодекоративних представників тропікогенної флори

Institution

Ähnliche Einträge