Клональне мікророзмноження рослин з роду Aglaonema Schoot

Data about micropropagation of genus Aglaonema Schoot, family Araceae Juss. is cited. Conditions to obtain sterile culture and to determine optimal explant have been developed. Optimal nutrient medium and conditions of meristem plants cultivation are selected.

Збережено в:
Бібліографічні деталі
Дата:1999
Автори: Lavrentyeva, A.N., Denisyevskaya, N.A.
Формат: Стаття
Мова:Англійська
Опубліковано: M.M. Gryshko National Botanical Garden of the NAS of Ukraine 1999
Онлайн доступ:https://www.plantintroduction.org/index.php/pi/article/view/1475
Теги: Додати тег
Немає тегів, Будьте першим, хто поставить тег для цього запису!
Назва журналу:Plant Introduction
Завантажити файл: Pdf

Репозитарії

Plant Introduction
_version_ 1860145012878082048
author Lavrentyeva, A.N.
Denisyevskaya, N.A.
author_facet Lavrentyeva, A.N.
Denisyevskaya, N.A.
author_sort Lavrentyeva, A.N.
baseUrl_str https://www.plantintroduction.org/index.php/pi/oai
collection OJS
datestamp_date 2020-01-24T14:13:15Z
description Data about micropropagation of genus Aglaonema Schoot, family Araceae Juss. is cited. Conditions to obtain sterile culture and to determine optimal explant have been developed. Optimal nutrient medium and conditions of meristem plants cultivation are selected.
doi_str_mv 10.5281/zenodo.3366236
first_indexed 2025-07-17T12:52:51Z
format Article
fulltext Репродукція інтродукованих рослин КЛОНАЛЬНЕ М ІК Р 0 Р 0 3 М Н 0 Ж Е Н Н Я РОСЛИН З РОДУ AGLAONEMA SCHOOT і М. ЛАВРЕНТЬЄВА, Н. 0. ДЕНИСЬЄВСЬКА -зціональний ботанічний сад ім. М. М. Гришка НАН України ■ раїна, 01014 Київ, вул. Тімірязєвська, 1 -з ведені результати роботи з клонального мікророзмноження рослин з роду Aglaonema Schoot родини - raceae Juss. Розроблено режим отримання стерильних ізольованих культур та визначено оптимальні експ- ~анти для розмноження. Підібрано поживне середовище та умови культивування меристемних рослин. -тродукційна оцінка колекції ароїдних відді- ■у тропічних та субтропічних рослин Націо- -ального ботанічного саду ім. М.М. Гришка -АН України (НБС НАН України) дає підставу ;зажати рослини з родів алоказія, діффен- : зхія, аглаонема, спатифіллюм, філоденд- :он одними з найперспективніших для рі- _ ення наукових та практичних завдань фі- ■здизайну. У зв ’язку з цим важливого зна- -9ННЯ набуває розробка методів, що дають могу одержати велику кількість посадково- "0 матеріалу цих декоративних рослин. Ми досліджували можливість мікрокло- -ального розмноження рослин роду Aglao- е та різних генотипів: Aglaonema commu- atum, A. commutatum “ Pseudobracteatum", - marantifolia, A. “Silver Queen” , A. commuta- ,m var. elegans. Під час розробки методу кророзмноження велику увагу приділяли -риманню стерильних культур. Для роз- ноження відбирали молоді відростаючі па- :ни заввишки 5—10 см. На жаль, такі паго- ■ майже наполовину заглиблені у субстрат, _□ сприяє проникненню в тканини різних ■нтогенів: грибів, бактерій, нематод. Пато- гни знайдені в рослинах усіх видів ароїд- - % що підтверджується наявністю мікоризи А. М. ЛАВРЕНТЬЄВА, Н. 0. ДЕНИСЬЄВСЬКА, 1999 [3]. Можливо, існує певний зв ’язок між ко­ рінням, мікоризою, патогенами і умовами культивування рослин в теплиці, однак ця гіпотеза потребує подальших детальніших досліджень. Уникаючи таких негативних наслідків, па­ гони перед стерилізацією ретельно проми­ вали водою з пральним порошком, проти­ рали 70%-м етиловим спиртом і лише після цього у стерильному боксі виділяли експ- ланти: вирізували частини пагонів з пазуш ­ ними бруньками і обробляли їх у певній послідовності стерилізуючими речовинами. Значну увагу приділяли розробці режиму стерилізації — підбору стерилізуючих речо­ вин, їх концентрацій та часу дії, оскільки треба одержати не тільки стерильні, але й здатні до регенерації експланти. Всього було випробувано шість варіантів режиму (табл. 1). Отримані дані свідчать про те, що роздільне використання стерилізуючих ре­ човин менш ефективне, ніж сумісне; можли­ во, це обґрунтовано тим, що кожна з них пригнічує певний вид патогену. Найбільшу кількість стерильних експлантів було отри­ мано при такому співвідношенні речовин: 2%-й розчин фамосепту, 20%-й розчин хло­ рного вапна, 30%-й пероксид водню. Однак 20 % експлантів залишаються інфікованими. . SN 1605-6574. Інтродукція рослин. 1999, № 2 - 3014 73 А . М . Лаврентьева, Н. О. Денисьевська ТАБЛИЦЯ 1. Вплив режим у стерил ізац ії на стан ізольованих тканин видів роду Aglaonema, % Варіант досліду * A. ‘Silver Queen’ A. commutatum var. elegans A. commutatum ‘Pseudobracteatum’ A. marantifolia Інфіковано Не інфі­ ковано інфіковано Не інфі­ ковано Інфіковано Не інфі­ ковано Інфіковано Не інфі­ ковано Фамосепт (2 %) 40,0 60,0 40,0 60,0 35,0 65,0 40,0 60,0 Фамосепт (1 %) 50,0 50,0 55,0 45,0 50,0 50,0 55,0 45,0 Хлорне вапно (20 %) 60,0 40,0 60,0 40,0 63,0 37,0 70,0 30,0 Хлорне вапно (20 %) + + фамосепт (2 %) 35,0 65,0 35,0 65,0 40,0 60,0 45,0 55,0 Пероксид водню (30 %) 70,0 30,0 70.0 30,0 75,0 25,0 70,0 30,0 Фамосепт (2 %) + + хлорне вапно (20 %) + + пероксид водню (ЗО %) 10,0 90,0 10,0 90 15,0 85,0 20,0 80,0 * В кожному випадку досліджувалось 15 експлантів ТАБЛИЦЯ 2. Регенераційна здатність ізольованих експлантів Aglaonem a в культурі in v itro , % загальної кількості Частина пагона, з якої взято екеллант Кількість експ­ лантів. шт. A. •sa­ ver Оибел* A. commu- atu~ «аг eiegans А- сот- 5se jJ :- этеэа- fcm’ А. пагал- ttfoba Апікальна 10 60,0 80.0 60.0 70,0 Середня 16 86,6 80.0 73.3 86.6 Базальна 18 88,8 83,3 88.8 Щ об зменшити цю к іл ь к іс т ь , м и вд р уге стерилізували експланти у 2С : :-м у л е р о кс и - ді водню або у розчині а н ти б іо ти ка а м п іц іл і- ну. Незважаючи на це, у 5 % е ксп л а н т ів не вдається усунути внутрішню н ф є к - .ю і дуж е часто вона зберігається при в с іх пасаж ах. Таке явище спостерігалось і в д о сл ід а х ін ­ ших вчених [2, 4, 6]. У багатьох випадках успіх мікророзмно- ження залежить від правильного вибору експ- ланта. У наших дослідах експлантами були сегменти листків і пазушні бруньки пагонів. Встановлено, що використання сегментів листків аглаонеми недоцільно, оскільки отри­ мати з них калюс або ембріоїди не вдаєть­ ся, можливо, тому що після стерилізації з тканин листка у поживне середовище виді­ ляється рідина, яка містить велику кількість фенольних сполук. Це гальмує надходження регуляторів росту в тканини і викликає по­ требу у частій зміні поживного середовища. 74 Ми вивчали також морфогенну здатність пазушних бруньок молодих пагонів. Пагони рослин умовно були розділені на три части­ ни: апікальну, середню і базальну, що до­ зволило вивчити поярусну регенераційну здатність експлантів (табл. 2). З наведених даних видно, що вона залежить від розмі­ щення експлантів на пагоні. Найвищу мают= бруньки базальної частини пагона, найниж­ ч у — апікальної. Це можна пояснити тим, ще морфогенна здатність залежить від ємнос- бруньок. Чим більшу кількість складових ма£ брунька, тим вища ЇЇ регенераційна здат­ ність [1]. Отримані нами дані дещо відріз­ няються від результатів інших дослідників [2 5, 7]. Однак це можна пояснити тим, що м. вивчали інші види рослин з роду Aglaone­ ma, що і спричиняє їх неадекватну реакцію в культурі in vitro. Тільки у A. commutaturr' ‘Pseudobracteatum’ регенераційна здатність була трохи нижча, ніж у інших досліджуваних нами видів. Слід зазначити, що повільний ріст ізольо ваних культур у всіх видів Aglaonema є од­ ним зі стримувальних факторів при мікро- розмноженні. Спроба прискорити розвито* експлантів додаванням до поживного сере­ довища гібереліну (GA3) не дала позитивнії* наслідків в жодній із культур — ріст та роз виток експлантів різних видів на ньому пра>: тично не відрізнявся. Ізольовані тканини і експланти Aglaonema культивували на поживних середовищах Пі ISSN 1605-6574. Інтродукція рослин. 1999, № . Клональне мікророзмноження рослин з роду Aglaonema Schoot :іка і Мурасіге — Скуга, модифікованих до­ даванням 0,5—1,0м г/л 2,4-Д, 2—5 мг/л БАП, —2 мг/л НОК, вітамінів, 2—80 мг/л аденін- :ульфату, 1 г/л активованого вугілля (табл. 3). Ми не виявили стимулювального ефекту на розвиток експлантів різних концентрацій І 4-Д, БАП, і тільки внесення 80 мг/л аде- - нсульфату значно прискорило їх розвиток і ■творення рослин. На ріст та розвиток експлантів Aglaonema з культурі in vitro впливають і деякі інші фак- ~эри. Так, при культивуванні слід враховува­ ли те, що більшість з них є гібридами зі зм і­ неним числом хромосом. Деякі види і сорти :~ерильні, інші виявляють значний апоміксис 2, 5]. Тканини строкатолистих різновиднос- эй і сортів відзначаються низькою асиміля- -Єю та життєвитривалістю [4]. Тому всі ви- -.1 Aglaonema належать до рослин з низь- _15ЛИЦЯ 3. Склад поживних середовищ _ ія культивування ізольованих тканин видів : зду Aglaonema, м г/л Мурасіге — Скуга Піріка Компонент Культиву­ вання експлантів Регене­ рація пагонів Культи­ вування експ­ лантів Регене­ рація пагонів H,N03 1650 825 1900 1900 vN03 1900 1900 950 950 :sc i2 • 2h 2o 440 440 440 440 '3S04- 7H20 370 370 370 370 • -i3po4 170 170 85 85 -:B 0 3 6,2 6,2 6,2 6,2 "■S04 • 4H20 22,3 22,3 22,3 22,3 3-dCI2 ■ 6H20 0,025 0,025 0,025 0,025 : -so4 • 5H2o 0,025 0,025 0,025 0,025 I a SO„ • 7H20 8,6 8,6 8,6 8,6 ; ;Mo04 • 2H20 0,25 0,25 0,25 0,25 0,83 0,83 0,83 0,83 "eS04 • 7HjO 27,8 27,8 27,8 27,8 i ; ЭДТА • 2H20 37,3 37,3 37,3 37,3 амін 0,1 0,1 0,1 0,1 ~ сідоксін 0,5 0,5 0,5 0,5 - «отинова 0,5 0,5 0,5 0,5 /-слота ■гзо-Інозит 100 100 150 200 ‘ ■дин 2,0 2,0 2,0 2,0 -інінсульфат 2,0 80,0 1,0 5,0 -z< 2,0 2,0 0,5 1,0 ■-.івоване 1000 1000 1000 1000 ~лля :'ароза 20 000 20 000 20 000 20 000 5,6 5,8 6,0 6,0 ким коефіцієнтом розмноження. Враховуючи це, ми вирішили спробувати прискорити ріст культур зміненням умов культивування, оскільки модифікація поживних середовищ додаванням рістактивуючих речовин не зав­ жди ефективна. Тому ми зменшили фотопе­ ріод з 16 до 10—12 год і підвищили темпе­ ратуру з 24 до 28 °С. Цей режим вирощу­ вання більше відповідає природнім умовам зростання видів Aglaonema. Все це сприяло прискоренню розвитку експлантів на пожив­ ному середовищі. Зміни умов культивування дали можливість отримати ізольовані куль­ тури ще 2 видів: A. commutatum ‘Treubii’ , A. commutatum var. commutatum, експланти яких до цього не розвивалися. Таким чином, проведені дослідження до ­ зволили визначити режим стерилізації пер­ винного рослинного матеріалу і ввести види Aglaonema в культуру in vitro. Встановлено оптимальні експланти для м ікророзмножен­ ня — пазушні бруньки молодих пагонів — і визначена їх поярусна регенераційна здат­ ність. Підібрано модифікації поживного се­ редовища та умови культивування культур. Отже, було розроблено метод, який сприяє отриманню меристемних рослин різних ви­ дів Aglaonema. 1. Лаврентьева А. Н. Факторы, влияющие на клональ­ ное микроразмножение растений семейства Агасеае Guss. / / Междунар. конф. “Биотехнология и генная инженерия”. 3—6 октября 1994: Тез. докл. — Киев: Б. и., 1994.— С. 98. 2. Debergh Р. С., Маепе L. J. A scheme for commercial propagation of ornamental plants by tissue culture / / Sci. Hort. — 1981. — 14. — P. 335—345. 3. Hartman R. D. Dasheen mosaic, virus and other phyto­ pathogens eliminated from caladium, taro and cocoyam, by culture of shoot tips / / Phytopathology. — 1974. — 64. — P. 237—240. 4. Kunisaki J. T. Tissue culture of tropical ornamental plants, Агасеае / / Hort. Sci. — 1977. — 12. — P. 141— 142. 5. Miller L. R., Muraschige T. Tissue culture propagation of tropical folliage plants I I In Vitro. — 1976. — 12. — P. 797—813. 6. Novak F. J., Nepustil J. Vegetativni mnozeni Anthurium andreanum Lindl. v kulture I I Zahradnictvi. — 1980. — N 1. — S. 67—74. 7. Pierik R.L.M. Anthurium andreanum plantlets produced from callus tissues cultivated in vitro Ц Physiol, plant. — 1975. - 37. — P. 80-82. Надійшла 17.10.99 - • 1605-6574. Інтродукція рослин. 1999, № 2 75 А. М . Лаврентьева, Н. О. Денисьевська КЛОНАЛЬНОЕ МИКРОРАЗМНОЖЕНИЕ РАСТЕНИЙ РОДА AGLAONEMA SCHOOT А. Н. Лаврентьева, Н. А. Денисьевская Национальный ботанический сад им. Н. Н. Гришко НАН Украины, Киев Представлены результаты работы по клональному мик­ роразмножению растений рода Aglaonema Schoot се­ мейства Araceae Juss. Разработан режим получения стерильных изолированных культур и определены опти­ мальные экспланты для размножения. Подобраны оп­ тимальная питательная среда и условия культивирова­ ния меристемных растений. CLONAL MICROPROPAGATION OF PLANTS OF AGLAONEMA SCHOOT A. N. Lavrentyeva, N. A. Denisyevskaya М. M. Grishko Central Botanical Gardens, National Academy of Sciences of Ukraine, Kyiv Data about micropropagation of genus Aglaonema Schoot, family Araceae Juss. is cited. Conditions to obtain sterile cultur and to determine optimal explant have been devel­ oped. Optimal nutrient medium and conditions of meristem plants cultivation are selected. НОВІ СОРТИ МАЛОРОЗПОБСЮ ДЖ ЕНИХ ПЛОДОВИХ РО СЛИН - К И ЗИ Л У, АЙ ВИ , Х ЕН О М ЕЛ ЕС У Здавна відомі унікальні властивості цих плодових і лікарських рослин завдяки високому вмісту пекти­ нових речовин, вітамінів, легкозасвоюваних глюкози та фруктози, мінеральних речовин. Розповсюдження стримувалося відсутністю сортів кизилу, хеномелесу й айви на півночі України. У Національному ботанічному саду НАН України створено нові високопродуктивні сорти кизилу: Лук’янівський Елегантний Світлячок Радість Володимирський Видубецький Євгенія Янтарний з грушоподібними, циліндричними, овальними плодами темно-червоного, рожевого та жовтого кольору. Нові зимостійкі на півночі України сорти айви звичайної: Академічна Студентка Подарунок онуку Марія № 18 Кащенка (середня маса плоду — 250—400 г, щорічно ряс­ но плодоносять). Нові сорти хеномелесу: Помаранчовий Вітамінний Цитриновий Караваєвський (плоди містять до 400 мг % вітаміну С). Селекціонер - д-р біол. наук Світлана Валентинівна КЛИМЕНКО 76 ISSN 1605-6574. Інтродукція рослин. 1999, № 2
id oai:ojs2.plantintroduction.org:article-1475
institution Plant Introduction
keywords_txt_mv keywords
language English
last_indexed 2025-07-17T12:52:51Z
publishDate 1999
publisher M.M. Gryshko National Botanical Garden of the NAS of Ukraine
record_format ojs
resource_txt_mv wwwplantintroductionorg/ba/8bbd398e4531269e020ca241012638ba.pdf
spelling oai:ojs2.plantintroduction.org:article-14752020-01-24T14:13:15Z Clonal micropropagation of plants of Aglaonema Schoot Клональне мікророзмноження рослин з роду Aglaonema Schoot Lavrentyeva, A.N. Denisyevskaya, N.A. Data about micropropagation of genus Aglaonema Schoot, family Araceae Juss. is cited. Conditions to obtain sterile culture and to determine optimal explant have been developed. Optimal nutrient medium and conditions of meristem plants cultivation are selected. Проведені результати роботи з клонального мікророзмноження рослин з роду Aglaonema Schoot родини Araceae Juss. Розроблено режим отримання стерильних ізольованих культур та визначено оптимальні експланти для розмноження. Підібрано поживне середовище та умови культивування меристемних рослин. M.M. Gryshko National Botanical Garden of the NAS of Ukraine 1999-06-01 Article Article application/pdf https://www.plantintroduction.org/index.php/pi/article/view/1475 10.5281/zenodo.3366236 Plant Introduction; Vol 2 (1999); 73-76 Інтродукція Рослин; Том 2 (1999); 73-76 2663-290X 1605-6574 10.5281/zenodo.3377896 en https://www.plantintroduction.org/index.php/pi/article/view/1475/1423 http://creativecommons.org/licenses/by/4.0
spellingShingle Lavrentyeva, A.N.
Denisyevskaya, N.A.
Клональне мікророзмноження рослин з роду Aglaonema Schoot
title Клональне мікророзмноження рослин з роду Aglaonema Schoot
title_alt Clonal micropropagation of plants of Aglaonema Schoot
title_full Клональне мікророзмноження рослин з роду Aglaonema Schoot
title_fullStr Клональне мікророзмноження рослин з роду Aglaonema Schoot
title_full_unstemmed Клональне мікророзмноження рослин з роду Aglaonema Schoot
title_short Клональне мікророзмноження рослин з роду Aglaonema Schoot
title_sort клональне мікророзмноження рослин з роду aglaonema schoot
url https://www.plantintroduction.org/index.php/pi/article/view/1475
work_keys_str_mv AT lavrentyevaan clonalmicropropagationofplantsofaglaonemaschoot
AT denisyevskayana clonalmicropropagationofplantsofaglaonemaschoot
AT lavrentyevaan klonalʹnemíkrorozmnožennâroslinzroduaglaonemaschoot
AT denisyevskayana klonalʹnemíkrorozmnožennâroslinzroduaglaonemaschoot