Фотоактивні кон’югати для спрямованої протипухлинної фотодинамічної терапії
Evidence concerning application of photodynamic targeted therapy and potential of its application for the suppression of tumor growth and development are analyzed. Also emphasis is given to the usage of photoimmunoconjugates with different possible carries — biologically active substances: cytokines...
Gespeichert in:
| Datum: | 2008 |
|---|---|
| Hauptverfasser: | , , |
| Format: | Artikel |
| Sprache: | Ukrainian |
| Veröffentlicht: |
Iнститут експериментальної патології, онкології і радіобіології ім. Р. Є. Кавецького
2008
|
| Schlagworte: | |
| Online Zugang: | https://nasplib.isofts.kiev.ua/handle/123456789/2357 |
| Tags: |
Tag hinzufügen
Keine Tags, Fügen Sie den ersten Tag hinzu!
|
| Назва журналу: | Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine |
| Zitieren: | Фотоактивні кон’югати для спрямованої протипухлинної фотодинамічної терапії / А.А. Мамчур, І.О. Лісняк, Н.Л. Новиченко // Онкологія. — 2008. — Т. 10, N 2. — С. 206-212. — Бібліогр.: 46 назв. — укр. |
Institution
Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine| id |
nasplib_isofts_kiev_ua-123456789-2357 |
|---|---|
| record_format |
dspace |
| spelling |
nasplib_isofts_kiev_ua-123456789-23572025-02-23T17:59:48Z Фотоактивні кон’югати для спрямованої протипухлинної фотодинамічної терапії Photoactive conjugates for targeted anti-tumor photodynamic therapy Мамчур, А.А. Лісняк, І.О. Новиченко, Н.Л. Обзор Evidence concerning application of photodynamic targeted therapy and potential of its application for the suppression of tumor growth and development are analyzed. Also emphasis is given to the usage of photoimmunoconjugates with different possible carries — biologically active substances: cytokines, liposomes, albumin, hormones. В огляді проаналізовані дані щодо застосування фотодинамічної цілеспрямованої (таргетної) терапії та можливості її використання з метою пригнічення росту та розвитку пухлин. Також акцентована увага на застосуванні фотоімунокон’югатів з різними можливими носіями — біологічно активними речовинами: антитілами, цитокінами, ліпосомами, альбуміном, гормонами. 2008 Article Фотоактивні кон’югати для спрямованої протипухлинної фотодинамічної терапії / А.А. Мамчур, І.О. Лісняк, Н.Л. Новиченко // Онкологія. — 2008. — Т. 10, N 2. — С. 206-212. — Бібліогр.: 46 назв. — укр. 1562-1774,0204-3564 https://nasplib.isofts.kiev.ua/handle/123456789/2357 uk application/pdf Iнститут експериментальної патології, онкології і радіобіології ім. Р. Є. Кавецького |
| institution |
Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine |
| collection |
DSpace DC |
| language |
Ukrainian |
| topic |
Обзор Обзор |
| spellingShingle |
Обзор Обзор Мамчур, А.А. Лісняк, І.О. Новиченко, Н.Л. Фотоактивні кон’югати для спрямованої протипухлинної фотодинамічної терапії |
| description |
Evidence concerning application of photodynamic targeted therapy and potential of its application for the suppression of tumor growth and development are analyzed. Also emphasis is given to the usage of photoimmunoconjugates with different possible carries — biologically active substances: cytokines, liposomes, albumin, hormones. |
| format |
Article |
| author |
Мамчур, А.А. Лісняк, І.О. Новиченко, Н.Л. |
| author_facet |
Мамчур, А.А. Лісняк, І.О. Новиченко, Н.Л. |
| author_sort |
Мамчур, А.А. |
| title |
Фотоактивні кон’югати для спрямованої протипухлинної фотодинамічної терапії |
| title_short |
Фотоактивні кон’югати для спрямованої протипухлинної фотодинамічної терапії |
| title_full |
Фотоактивні кон’югати для спрямованої протипухлинної фотодинамічної терапії |
| title_fullStr |
Фотоактивні кон’югати для спрямованої протипухлинної фотодинамічної терапії |
| title_full_unstemmed |
Фотоактивні кон’югати для спрямованої протипухлинної фотодинамічної терапії |
| title_sort |
фотоактивні кон’югати для спрямованої протипухлинної фотодинамічної терапії |
| publisher |
Iнститут експериментальної патології, онкології і радіобіології ім. Р. Є. Кавецького |
| publishDate |
2008 |
| topic_facet |
Обзор |
| url |
https://nasplib.isofts.kiev.ua/handle/123456789/2357 |
| citation_txt |
Фотоактивні кон’югати для спрямованої протипухлинної фотодинамічної терапії / А.А. Мамчур, І.О. Лісняк, Н.Л. Новиченко // Онкологія. — 2008. — Т. 10, N 2. — С. 206-212. — Бібліогр.: 46 назв. — укр. |
| work_keys_str_mv |
AT mamčuraa fotoaktivníkonûgatidlâsprâmovanoíprotipuhlinnoífotodinamíčnoíterapíí AT lísnâkío fotoaktivníkonûgatidlâsprâmovanoíprotipuhlinnoífotodinamíčnoíterapíí AT novičenkonl fotoaktivníkonûgatidlâsprâmovanoíprotipuhlinnoífotodinamíčnoíterapíí AT mamčuraa photoactiveconjugatesfortargetedantitumorphotodynamictherapy AT lísnâkío photoactiveconjugatesfortargetedantitumorphotodynamictherapy AT novičenkonl photoactiveconjugatesfortargetedantitumorphotodynamictherapy |
| first_indexed |
2025-11-24T07:18:30Z |
| last_indexed |
2025-11-24T07:18:30Z |
| _version_ |
1849655254984949760 |
| fulltext |
Обз Ор
206 О Н К О Л О Г И Я • Т. 1 0 • № 2 • 2 0 0 8
Останніми роками в онкологічну практику увійшов
малотравматичний метод лікування при злоякісних
новоутвореннях — фотодинамічна терапія (ФДТ).
Метод полягає у введенні в організм з пухлиною
фотосенсибілізаторів, які можуть накопичувати-
ся в злоякісних клітинах, робити їх світлочутливими,
зумовлюючи цим самим і вибіркове руйнування
малігнізованих клітин при наступному опроміненні. За-
пропонований спосіб терапії дозволяє очікувати значно
більшої вибірковості пошкодження пухлин порівняно
з радіо- та хіміотерапією; це пояснюється, перш за все,
тим, що фотосенсибілізатор здатний більше накопичу-
ватися та довше затримуватися в пухлині порівняно з
нормальними тканинами. Однак, значною мірою на-
копичення багатьох із таких сполук виявляли і в нор-
мальних тканинах. Відсутність високоефективної
селективності в накопиченні фотосенсибілізаторів
пухлинами спонукала дослідників до пошуку нових
підходів у ФДТ, які б забезпечували якщо не селективне
накопичення пухлинами фотосенсибілізуючих агентів,
то ефективну їх «досилку» до пухлинних тканин.
Поштовхом до розробок таких підходів стала
в 1980 р. робота D. Mew і співавторів [1]. Було по-
казано, що гематопорфірин у вигляді кон’югату
зі специфічними до поверхневих антигенів пух-
линних клітин антитілами накопичується в пух-
линах у значно вищій мірі порівняно з вихідним
фотосенсибілізатором. Ця робота в подальшо-
му відкрила шлях, власне, до розвитку так званої
цілеспрямованої (таргетної) фотодинамічної терапії,
де в якості провідників до відповідних мішеней мо-
жуть використовуватися не тільки антитіла, але й
цитокіни, фактори росту, їх рецептори тощо.
Останніми роками активно проводять дослід-
ження, спрямовані саме на вивчення різноманітних
аспектів цілеспрямованої ФДТ. Ці дослідження
сконцентровані не тільки на пошуках нових класів
фотосенсибілізуючих агентів, мішенями яких висту-
пали б пухлинні клітини, але й на розробці методів
цілеспрямованої доставки фотосенсибілізаторів влас-
не до пухлин. Одним із перспективних способів такої
цілеспрямованої доставки до пухлин є селективна
«досилка» фотосенсибілізуючих агентів у вигляді їх
кон’югатів з біологічно активними речовинами, як
то: ростові фактори, цитокіни, «homing» — пептиди,
поліклональні та моноклональні антитіла (МкАТ) до
специфічних поверхневих антигенних детермінант
пухлинних маркерів (карциноембріональний анти-
ген тощо), до рецепторів ростових факторів, білків
адгезії і т. п.
Кон’югати фотосенсибілізаторів з антитілами.
Гематопорфірин (Гп) – найпоширеніший фото-
сенси білізатор, який знайшов широке застосування у
фотодинамічній терапії пухлин. Був одним із перших
фотосенсибілізаторів, який кон’югували з біологічно
активними речовинами [1]. Максимум поглинан-
ня знаходиться в межах 620–640 нм. При поглинанні
хвилі даної довжини цей сенсибілізатор спроможний
викликати біологічні ефекти в тканині пухлини на
глибині 5 мм. Гп має здатність накопичуватися лише на
поверхні клітини та у екстроцелюлярному матриксі. Але
щоб покращити ефективність фотодинамічної терапії
виникає необхідність у застосуванні препаратів, що за-
безпечують інтерналізацію Гп через клітинну мембра-
ну. Цього ефекту можна досягти в разі використання
кон’югованих МкАТ до пухлинних антигенів з озна-
ченими фотосенсибілізаторами. Так з цією метою були
синтезовані фотоімунокон’югати з МкАТ I-cMabU36,
I-mMab425 та I-mMabE48. Було виявлено, що в синте-
зованих фотоімунокон’югатах Гп зберігає свої фізико-
хімічні властивості, максимум поглинання та здатність
до утворення синглетного кисню. Цей же синтезований
фотоімунокон’югат виявився стабільним в сироватці
крові, мав оптимальну імунореактивність навіть в тих
випадках, коли співвідношення фотосенсибілізатора
та МкАТ складало лише <3. Напроти, кон’югати
з більш високим молекулярним співвідношенням
МкАТ — фотосенсибілізатор частково втрачали
розчинність в водно-сольових середовищах. У дослідах
in vitro відзначали інтерналізацію клітинами лінії
А431 Гп, кон’югованого з антитілами І-МаbU36 та
І-Маb425, та її відсутність у випадку використан-
ФОТОАКТИВНІ КОН’ЮГАТИ
ДЛЯ СПРЯМОВАНОЇ
ПРОТИПухЛИННОЇ
ФОТОДИНАМІЧНОЇ ТЕРАПІЇ
Резюме. В огляді проаналізовані дані щодо застосування фотодинамічної
цілеспрямованої (таргетної) терапії та можливості її використання з ме-
тою пригнічення росту та розвитку пухлин. Також акцентована увага
на застосуванні фотоімунокон’югатів з різними можливими носіями —
біологічно активними речовинами: антитілами, цитокінами, ліпосомами,
альбуміном, гормонами.
А.А. Мамчур
І.О. Лісняк
Н.Л. Новиченко
Інститут експериментальної
патології, онкології
та радіобіології
ім. Р.Є. Кавецького
НАН України, Київ, Україна
Ключові слова:
фотоімунокон’югати,
фотодинамічна спрямована
(таргетна) терапія, фактор
росту ендотелію судин,
фотосенсибілізатор, апоптоз.
Обз Ор
207О Н К О Л О Г И Я • Т. 1 0 • № 2 • 2 0 0 8
ня кон’югату з МкАТ I-mMabE48. Інтерналізація
відбувалась шляхом ендоцитозу після з’єднання
фотоімунокон’югату з відповідним рецептором.
В результаті руйнації ензимами лізосом утвореного мо-
лекулярного комплексу фотоімунокон’югату з рецеп-
торами вивільнений фотосенсибілізатор розподілявся
в зоні мітохондрій, а вже після опромінювання акти-
вований фотосенсибілізатор був здатний утворюва-
ти вільні радикали кисню, які і пошкоджували мем-
брану мітохондрій [2]. У результаті пошкодження
мітохондріальних мембран у цитоплазму потрапляє ци-
тохром С, який сприяє формуванню апоптосом з по-
дальшою активацією проапоптозного каспазного ка-
скаду. Таким чином, клітина комітується на апоптоз,
що виявляється більш ефективним у загибелі пухлинної
клітини, ніж пошкодження плазмалеми. Крім того, ці
кон’югати виявилися токсичними для клітин А431, у той
час як вільний Гп мав значно меншу фототоксичність.
Відсутність інтерналізації кон’югованого Гп з МкАТ
I-mMabE48 пояснюється відсутністю на поверхні
клітин антигену, відповідного до МкАТ I-MabE48 [3].
Таким чином, застосування кон’югованого з МкАТ Гп
значно збільшує ефективність ФДТ.
Слід відзначити, що на даний момент актив-
но вивчається можливість застосування кон’югатів
МкАТ з фотосенсибілізатором бензопорфірином
(Бпф) [4]. Так в експериментах на моделі перещепле-
ної сингенним мишам сквамозної карциноми людини
(лінія А549), де використовувалися імунокон’югати
на основі МкАТ 5Е8 специфічних до антигену на
клітинах А549, а також неспецифічних до цього ан-
тигену МкАТ Т48 з міченим ізотопом вуглецю С14
Бпф, було показано чітку відмінність у накопиченні
кон’югатів та вільного Бпф пухлинними тканина-
ми. Вищий рівень накопичення сенсибілізатора,
кон’югованого з МкАТ специфічними до антиге-
ну цієї пухлини, відзначали у тканині карциноми
порівняно з вільним Бпф [5].
У цій же роботі в досліді на хом’яках з цією ж
карциномою порівнювали ефективність ФДТ із
застосуванням Бпф та фотофрину, похідного Гп.
Тварини, які отримували вільний Бпф, демон-
стрували рівень накопичення фотосенсибілізатора
в пухлині по відношенню до нормальної ткани-
ни в співвідношенні — 2 : 1, у той час як твари-
ни, які отримували фотоімунокон’югат цього ж
сенсибілізатора з МкАТ до рецептора EGFR, де-
монстрували значно більший рівень накопичення
фотосенсибілізатора по відношенню до нормальної
тканини, а саме — 26 : 1 (р < 0,005). При аналізі
рівня виживаності тварин після ФДТ відзначали
таку картину: при застосуванні фотофрину місячна
виживаність складала 27%, вільного Бпф — 67%
(р = 0,03), а Бпф, кон’югованого з МкАТ до ре-
цептора EGFR — 80%. Отже, Бпф виявився більш
ефективним, ніж фотофрин, а його селективність в
накопиченні в пухлині може бути збільшена шляхом
його кон’югації з МкАТ до рецептора EGFR [5].
Хлорин е-6 відноситься до фотосенсибілізаторів но-
вого покоління. Порівняно з порфіринами хлоринові
фотосенсибілізатори характеризуються рядом пере-
ваг: вони мають високі значення квантового виходу
синглетного кисню (0,4–0,8), максимум їх поглинан-
ня знаходиться в діапазоні 650–800 нм, завдяки трьом
кислотним залишкам в мають непогану розчинність у
воді. Ось чому при застосуванні хлоринів можна досяг-
ти доволі значної глибини проникнення опромінення
в пухлинну тканину — біологічні ефекти можуть
здійснюватися на глибині 10–13 мм [6]. Застосуван-
ня хлорину е-6, як і інших фотосенсибілізаторів хло-
ринового ряду (наприклад, бактеріохлорину) в якості
фотосенсибілізатора при ФДТ пухлинних процесів є
досить ефективним [7, 8]. Так, хлорин е-6 знайшов ши-
роке застосування фотодинамічній таргетній терапії
в метастазах колоректального раку в печінці [9–11].
Відомо, що колоректальний рак метастазує в печінку
з великою частотою.
Виникла проблема, пов’язана з високим накопи-
ченням фотосенсибілізаторів не тільки в пухлинній
тканині печінки. Більшість фотосенсибілізаторів, у
тому числі і хлорини, виявляють доволі високий рівень
акумуляції і в нормальній тканині печінки [12–15]. В
зв’язку з цією обставиною стає актуальним використан-
ня цілеспрямованої ФДТ із застосуванням хлорину е-6,
кон’югованого з МкАТ, специфічними до антигенів пух-
линних клітин. Було показано, що використання хлори-
ну е-6, кон’югованого з МкАТ Mab17.1А, які зв’язуються
з антигенами колоректального раку EpCAM, дозволяє в
деякій мірі вирішити проблему селективного накопи-
чення фотосенсибілізатора саме у пухлинній тканині
печінки і таким чином мінімізувати побічні ефекти та
збільшити ефективність власне ФДТ [16]. До того ж
при синтезі даного фотоімунокон’югату не відбувається
погіршення фізико-хімічних властивостей хлорину е-6,
зокрема його спектральних характеристик. У дослідах
на щурах з перещепленими в печінку клітинами пух-
лини НТ 29 (аденокарциноми людини) була виявле-
на значна ефективність імунокон’югату хлорин е-6 —
антитіло 17.1А. Крім того, методом флюоресценції
було показано, що даний фотоімунокон’югат має знач-
но більшу селективність у накопиченні в пухлинній
тканині порівняно із вихідним фотосенсибілізатором
хлорином е-6. Більше того, застосування вільного
вихідного фотосенсибілізатора призводить до системної
токсичності та загибелі піддослідних тварин за раху-
нок масштабних уражень нормальних тканин. Од-
нак при застосуванні фотоімунокон’югату ця систем-
на токсичність виявляється мінімізованою. Поряд з
цим визначалось суттєве скорочення ваги пухлини,
середній показник виживання збільшився з 62,5 до
102 днів. Таким чином, в експериментах було показа-
но ефективність використання цілеспрямованої ФДТ
завдяки використанню хлорину е-6, кон’югованого з
МкАТ [9, 10]. Крім того, кон’югати хлорину з МкАТ
крім терапевтичних цілей можна використовувати і в
діагностиці злоякісних пухлин та передпухлинних хво-
роб з метою окреслення контурів пухлин для подаль-
Обз Ор
208 О Н К О Л О Г И Я • Т. 1 0 • № 2 • 2 0 0 8
шого хірургічного втручання або проведення оцінки
ефективності застосування лікувальних заходів.
Останнім часом при створенні фотосен сибілі-
зуючих кон’югованих сполук увагу дослідників при-
вертають фталоціанінові сполуки. Для фталоціанінів
притаманний максимум поглинання в межах
670–700 нм. Це дозволяє після опромінювання
ініціювати біологічні ефекти в тканині на глибині
10 мм [17]. Взагалі фталоціаніни є гідрофобними
сполуками. Крім того, введення в молекулу цих
фотосенсибілізаторів сульфогруп призводить до набут-
тя фотосенсибілізаторами властивостей гідрофільної
сполуки з покращенням їх розчинності, а відтак і по-
легшенням доставки до пухлини [18]. Найбільш вив-
ченими являються саме сульфіровані фталоціаніни,
які можуть відрізнятися центральним атомом ме-
талу та кількістю сульфогруп. Відомо, що при
збільшенні кількості сульфогруп збільшується і
розчинність цих фотосенсибілізаторів [19]. Те-
трасульфонат алюміній(ІІІ)-фталоціанін, саме і
являється таким модифікованим гідрофільним
фотосенсибілізатором. Але на відміну від гідрофобних
фотосенсибілізаторів цієї групи, гідрофільний тетра-
сульфонат алюміній(ІІІ)-фталоціанін не здатний про-
никати через мембрану клітин, а відтак не досягає
внутрішньоклітинних структур, що значно зменшує
ефективність ФДТ [19]. У зв’язку з цим виникає
доцільність у кон’югуванні цього фотосенсибілізатора
з МкАТ, які можуть покращити інтерналізацію його
до клітини. В досліді на клітинах сквамозної кар-
циноми А431 із застосуванням тетрасульфонату
алюміній(ІІІ)-фталоціаніну, кон’югованого через
тетрагліциновий мостик з химерними МкАТ сMabU36
та МкАТ mMabЕ48 та mMabЕ425, відзначали збе-
реження кон’югованими антитілами притаманних
їм властивостей та стабільність у сироватці крові.
Розчинність цих сполук, як виявилося, порівняно з
вихідним сенсибілізатором дещо погіршилася. Було
показано, що найбільшу фототоксичність до клітин
проявляє тетрасульфонат алюміній(ІІІ)-фталоціанін,
кон’югований з МкАТ mMabЕ425. З’ясували, що
він у 7500 разів токсичніший порівняно з вихідним
фотосенсибілізатором. Кон’югати з химерними
МкАТ сMabU36 та МкАТ mMabЕ48, на відміну від
кон’югатів з mMabЕ425, засвоювалися пухлинними
клітинами гірше через відсутність специфічних для
них антигенів [20].
Кон’югати фотосенсибілізаторів з іншими біологічно
активними речовинами. Відомо, що білки сироват-
ки крові відіграють велику роль у транспортуванні
різноманітних речовин, у тому числі і фармацев-
тичних препаратів. Білки сироватки крові (влас-
не альбумін та ліпопротеїди) також відіграють над-
звичайно велику роль у транспортуванні молекул
фотосенсибілізатора [21].
Альбумін володіє унікальною властивістю зво-
ротно зв’язуватися з великою кількістю ендогенних
або екзогенних лігандів. Здатність зв’язуватися з та-
ким широким спектром лігандів пояснюється тим,
що цей білок має доволі гнучку просторову структу-
ру, яка зазнає перебудов у залежності від структури
ліганда, з яким він зв’язується [22]. Саме ці властивості
альбуміну спонукали дослідників до використання
його в цілеспрямованій ФДТ. Цінність застосування
альбуміну в цілеспрямованій ФДТ пояснюється ще
й тим, що цей білок являється важливим джерелом
амінокислот для пухлинних клітин. Власне завдяки
високій інтенсивності метаболізму альбуміну в пухлині
і відбувається своєрідне накопичення його в екстраце-
люлярному матриксі пухлинної тканини. Наприклад, в
експериментах на мишах з перещепленою пухлиною —
карциномою людини Т380 використовували кон’югат
альбуміну з фталоціаніном. Показано, що регресія пух-
лин відзначалася вже при дозах препарату 0,5 та 0,2 мМ/
кг при проведенні ФДТ через 24 год після введення
кон’югату [21]. До речі слід сказати, що кон’югат от-
римували з альбуміну бичачої сироватки.
В іншому експерименті досліджували альбумін,
кон’югований з хлорином е-6 [23–25]. У дослідах іn
vitro на макрофагоподібних клітинах лінії J774 та раку
яєчника людини методом флюоресценції виявили, що
кон’югат краще накопичується макрофагоподібними
клітинами J774 порівняно з клітинами лінії OVCAR-5.
Пояснюється це тим, що у макрофагоподібних клітин
краще виражені скавенджер-рецептори. Відповідно і
ефективність фотодинамічної дії була кращою на цих
клітинах [21]. Ймовірно, після сполучення кон’югату
з скавенджер-рецепторами, він шляхом ендоци-
тозу потрапляє до клітини, перш за все до лізосом,
де під дією ензимів вивільнюється хлорин е-6. Далі
цей фотосенсибілізатор може перерозподілятися
по клітині, потрапляючи до так званих критичних
субклітинних структур, наприклад мітохондрій. У ви-
падку пошкодження мембрани мітохондрій клітина
швидко комітується на шлях апоптозу, іншими
словами, запускається проапоптозний каспаз-
ний каскад. Таким чином, чим більше виражені на
поверхні клітини скавенджер-рецептори, тим краще
сполучається кон’югат з клітиною, а найголовніше,
він краще інтерналізується в клітину шляхом ендоци-
тозу. Як результат, підвищується ефективність терапії
із застосуванням кон’югату фотосенсибілізатор-
альбумін бичачої сироватки.
Деякі автори стверджують, що для ефективності
цілеспрямованої ФТД недостатньо тільки селектив-
ності в накопиченні фотосенсибілізаторів ткани-
нами пухлин. Виявляється, що для підвищення
ефективності ФДТ необхідно не тільки забезпе-
чити досилку фотосенсибілізатора до цитоплазми
клітини, а й забезпечити його розподіл по критич-
ним зонам клітини [25].
Так, на клітинах гепатоми людини лінії
PLC/PRF/5 продемонстрували збільшення
фоточутливості клітин у результаті застосуван-
ня кон’югованого інсуліну з хлорином е-6. Дія
цього кон’югату спрямовувалася, перш за все, на
рецептор інсуліну ЕС50. У досліді порівнювали
ефективність застосування вільного хлорину е-6
Обз Ор
209О Н К О Л О Г И Я • Т. 1 0 • № 2 • 2 0 0 8
та кон’югованого з інсуліном [26]. Кон’югат вия-
вився більш ефективним, ніж вільний хлорин е-6.
Крім того, актуальним є вивчення доставки
фотосенсибілізаторів до ядра пухлинної клітини. На
даний момент проводяться спроби для здійснення
інтерналізації фотосенсибілізатора в клітину з по-
дальшою його локалізацією в ядрі. Так був отри-
маний кон’югат на основі бичачого альбуміну (для
збільшення аплікації молекул фотосенсибілізатора
на молекулі ліганду, здатного до інтерналізації че-
рез клітинну мембрану), інсуліну (інтерналізуючий
ліганд) з фотосенсибілізатором хлорином е-6.
Встановлено, що інтерналізація цього кон’югату
відбувається шляхом ендоцитозу [27]. Локалізацію
фотосенсибілізатора в клітині та спроможність його
продукувати синглетний кисень встановлювали за
допомогою 2′,7′-дихлорфлюорисцин діацетату,
який здатний перетворюватися на флюоресцентну
похідну 2′,7′-дихлорфлюорисцина при реакції з ак-
тивними різновидами кисню. Після 4 год інкубації
з кон’югатом альбумін-інсулін-хлорин е-6 з по-
дальшим опромінюванням відзначали збільшення
флюоресценції якраз у зоні клітинного ядра, що
вказує на продукцію активного кисню. Також ви-
явили, що фотодинамічний ефект відзначали як
при низьких концентраціях рецептора ЕС50s, що
було достатнім для вивільнення хлорину е-6, так і
при низьких дозах опромінювання [26].
Відомо, що переважна більшість пухлинних клітин
продукує на своїй поверхні рецептор епідермального
фактора росту (EGFR) у значно вищій концентрації
порівняно з нормальними клітинами. EGFR
контролює багато клітинних функцій: клітинний
поділ, диференціацію, виживання клітин, їх рухливість.
Усі ці функції реалізуються через відповідні шля-
хи сигнального каскаду. Зазначають, що фактич-
но >30% клітин раку яєчника мають підвищений
рівень експресії EGFR [28–32]. У багатьох випад-
ках підвищений рівень концентрації EGFR корелює
з несприятливим прогнозом. Тобто підвищений
рівень експресії EGFR являється своєрідним мар-
кером пухлини, який можна використовувати у
цілеспрямованій терапії. Епідермальний фактор ро-
сту (EGF) являється лігандом до цього рецептора, а
відтак він може транспортувати фотосенсибілізатор в
зону підвищеної концентрації рецептора, тобто безпо-
середньо до тканини пухлини. Таким чином, виникає
доцільність у створенні кон’югатів на основі цитокіну
EGF та фотосенсибілізатора. EGF — невеликий
поліпептид масою 6 кДа. EGF, зв’язавшись з рецеп-
тором EGFR на поверхні клітини, активує кіназний
каскад сигнальної трансдукції, відповідальний
за проліферативну активність епідермальних та
епітеліальних клітин. Після сполучення з EGF рецеп-
тор виявляє тирозинкіназну активність. Крім того,
EGF виконує важливу функцію у неоангіогенезі [33].
В експериментах порівнювали цитостатичну
ефективність вільних фотосенсибілізаторів дисульфо-
нату алюміній-фталоціаніну та дисульфонату кобальт-
фталоціаніну та їх кон’югатів з EGF. На клітинах кар-
циноми молочної залози лінії MCF-7 було показано,
що кон’югат дисульфонату алюміній-фталоціаніну
проявляв значно більшу цитостатичну активність, ніж
вільний алюміній-фталоціанін. Кон’югат на основі ди-
сульфонату фталоціаніну кобальту виявився в 100 разів
ефективніший по цитотоксичній дії, ніж сам вільний
фотосенсибілізатор. Слід відзначити, що і в дослідах
in vivo на моделі з меланомою В16, де використовува-
ли кон’юговані фотосенсибілізатори, виявили більш
ефективну дію кон’югатів у пригніченні росту пухлини
порівняно з вільними фотосенсибілізаторами [34].
Проводили експерименти з використанням більш
складного за структурою кон’югату, що був синтезо-
ваний на основі хлорину, а саме комплексу хлорин-
е-6-олово, який в свою чергу з’єднувався з EGF че-
рез декстрин, полівініловий спирт або альбумін [35,
36]. Виявили, що хлорин е-6-олово, кон’югований
з EGF через декстран, зв’язувався в 100 разів більш
споріднено з рецептором, ніж його природний
ліганд — некон’югований EGF. Кон’югат на основі
проміжного зв’язку через альбумін теж мав високу
спорідненість до рецептора, однак гірше конкуру-
вав з вільним EGF. У той же час кон’югат на основі
проміжного зв’язку через полівініловий спирт не
зв’язувався з рецептором взагалі. Також вивчали
фотоцитотоксичність цих кон’югатів на клітинних
лініях MDA-MB-468 та А431. Ці лінії клітин характе-
ризуються високим рівнем експресії EGFR. Значний
рівень фотоцитотоксичності при дозі опромінювання
27 кДж/м2 виявився при застосуванні сенсибілізатора,
кон’югованого з EGF через альбуміновий місток [36].
Незважаючи на відсутність спорідненості до рецепто-
ра, найвищий рівень фотоцитотоксичності продемон-
стрував кон’югат із містком з полівінілового спирту.
Однак він виявився значно токсичнішим порівняно
з кон’югатом із застосуванням декстрану. Проте
фототоксичність кон’югату з декстраном дорівнювала
фототоксичності простого кон’югату хлорин е-6-
EGF. Можливо, в даному випадку більше значен-
ня мають транспортні властивості полівінілового
спирту, ніж здатність ліганду зв’язуватися з рецеп-
тором. Пояснюючи менший рівень фототоксичності
кон’югату з альбуміном порівняно з кон’югатом із
полівініловим спиртом, припускають, що в дано-
му випадку відіграє вирішальну роль саме ступінь
спорідненості цього кон’югату. Фототоксичність була
б значно кращою, якщо б цей кон’югат краще конку-
рував з вільним EGF за рецептори [35, 36].
Цілеспрямована антиангіогенна фотодинамічна
терапія. Ангіогенез — процес, який є вкрай
необхідним для пухлинного росту [37–39], може слу-
гувати надзвичайно важливою мішенню для ФДТ
пухлин. При використанні такого варіанту ФДТ, де
її дія буде спрямована на блокаду тих чи інших ла-
нок неангіоенезу, застосовують, як правило, МкАТ
до рецепторів фактора росту ендотеліоцитів або без-
посередньо до самого ліганду цих рецепторів — фак-
тора VEGF. При цьому з МкАТ хімічно зв’язується
Обз Ор
210 О Н К О Л О Г И Я • Т. 1 0 • № 2 • 2 0 0 8
фотосенсибілізатор, який власне і викликає фото-
хімічну реакцію [40].
Слід сказати, що робіт, проведених у галузі
цілеспрямованої ФДТ, скерованої безпосередньо на
блокаду процесів ангіогенезу пухлин, небагато, хоча
стратегія боротьби зі злоякісними пухлинами, яка
базується на антиангіогенній терапії, має доволі ши-
року історію. Це порівняно новий альтернативний
напрямок антиангіогенної терапії пухлин. На відміну
від онкології, цей метод лікування в офтальмологічній
практиці застосовується протягом порівняно три-
валого проміжку часу. Слід зауважити, що шляхи
цілеспрямованої антиангіогенної ФДТ споріднені
як при лікуванні офтальмологічних захворювань,
асоційованих з патологічним неоангіогенезом, так
і при блокуванні неоваскуляризації злоякісних пух-
лин. Взагалі вирізняють два напрямки блокування
процесів ангіогенезу при цілеспрямованій ФДТ. В
одному випадку дія імунокон’югатів скеровується
на ліганди, які здатні стимулювати ангіогенез
(фактори ангіогенезу), в другому — на рецепто-
ри ендотеліоцитів, які відповідальні за активацію
кіназного каскаду, що обумовлює їх проліферацію.
При скеровуванні дії імунокон’югату на ліганд
досягається накопичення кон’югованих антитіл в ек-
страцелюлярному матриксі і фотодинамічна дія буде
спрямована перш за все на плазмалему ендотеліоцитів.
У цьому випадку ефективність антиангіогенної ФДТ
буде дещо знижена. При дії фотоімунокон’югату на
рецептори ендотеліоцитів з’являється можливість
інтерналізації фотосенсибілізатора всередину
клітини. В цьому випадку ендотеліальна клітина
з більшою вірогідністю буде підлягати апоптозу, а
відтак ефективність терапії буде вищою. Треба за-
значити, що в якості носіїв фотосенсибілізатора для
цілеспрямованої антиангіогенної ФДТ найчастіше
використовують антитіла та ліпосоми.
На даний момент отримано ряд МкАТ, специфіч-
них до фактора VEGF або до його рецепторів. Деякі з
них у вигляді кон’югатів з фотосенсибілізаторами до-
бре зарекомендували себе в тій же офтальмології [42].
Є відомості щодо застосування ліпосом, кон’ю-
гованих з фотосенсибілізатором, в ціле спрямованій
антиангіогенній ФДТ [42, 43]. Було виявле-
но, що після введення подібних препаратів через
15 хв вони спроможні пошкоджувати ендотелій.
Досліджено, що ліпосоми, навантажені Бпф, доно-
сяться до тканини пухлини пасивно. Слід сказати,
що ліпосоми застосовуються для транспортування
гідрофобних фотосенсибілізаторів, наприклад Бпф.
При використанні цих структур, вірогідно, має зна-
чення фактор тропності фотосенсибілізатора до пух-
лини, чим можна пояснити селективне його накопи-
чення в пухлині при транспортуванні ліпосомами.
Однак є джерела, які стверджують, що подібні
ліпосоми мають мінімальний клінічний ефект при
застосуванні у ФДТ, хоча вони значно підвищують
рівень накопичення фотосенсибілізатора в тканині
пухлини вже через 3 год. Пояснюють це тим, що
після лазерного опромінювання синглетний кисень,
продукований фотосенсибілізатором, не пошкоджу-
вав клітини, оскільки життя активного кисню не-
тривале. Радикалу кисню просто не вистачає часу
для проходження відстані між внутрішньою части-
ною ліпосоми та клітиною. При цьому кон’югати
ліпосом та фотосенсибілізаторів концентруються
в екстрацелюлярному матриксі. При розгляданні
цього досліду можна якраз пересвідчитися в тому,
що при накопиченні препарату в екстрацелюляр-
ному матриксі (внаслідок зв’язування з лігандом,
або застосування ліпосом) ефективність терапії
погіршується, що власне і зазначалося вище. Взагалі
локалізація фотосенсибілізатора є важливим клю-
чем, який і визначає ефективність ФДТ.
Крім того, виникає необхідність більш точної
досилки фотосенсибілізатора безпосередньо до
пухлинної клітини чи до ендотеліоциту. Так, для
орієнтації цих кон’югатів на ендотеліоцити вико-
ристовують пентамерний пептид Ala-Pro-Arg-Pro-
Gly (APRPG). Ліпосоми, кон’юговані із вказаним
пептидом, можна вибірково застосовувати саме в
антиангіогенній терапії. Шляхом гістохімічного
аналізу виявили, що накопичення таких кон’югатів
у пухлині не відбувалося, натомість він виражено
накопичувався в ендотелію [42]. Слід відзначити,
що подібні ліпосомальні кон’югати для ФДТ мо-
жуть бути модифіковані з метою збільшення їх
селективності. Модифікують їх також з метою
збільшення рівня накопичення або в тканині пух-
лини, або в ендотелію. Більше того, виявили, що
модифіковані ліпосомальні фотокон’югати ма-
ють більшу селективність порівняно з вільним
фотосенсибілізатором [42, 43].
Досліди на мишах з перещепленою карциномою
лінії Colоn 26 NL-17 та саркомою Meth-A показа-
ли, що ліпосоми, кон’юговані за схемою ліпосома-
бензопорфірин-APRPG-поліетіленгліколь, ма-
ють значно кращу селективність у накопиченні
порівняно з ліпосомальним кон’югатом APRPG-
поліетіленгліколь-ліпосома-бензопорфірин
та кон’югатом поліетіленгліколь-ліпосома-
бензопорфірин, який власне не здатен орієнтуватися
до клітин. Саме тому в цьому досліді відзначали галь-
мування росту пухлини, вважаючи, що ФДТ спря-
мовувалася в цьому випадку саме на ушкодження
ендотеліальних клітин і виявилася більш ефектив-
ною, ніж цілеспрямована ФДТ на пухлинні клітини.
Опромінювання проводили через 3 год, оскільки
вважали, що за цей час кон’югати краще зв’яжуться
з ендотеліоцитами, хоча деякі автори вказують на те,
що кон’югат розподіляється по ендотелію вже через
15 хв [42]. Крім того, з’ясували, що через 3 год після
ФДТ утворювалася закупорка судин, порушення в
системі гемостазу [42, 43].
Суттєві результати одержані при блокуванні
патологічного ангіогенезу в сітківці ока кон’югованим
через полівініловий спирт та пептид ATWLPPR
вертепорфіном — похідним Бпф. Цей кон’югат проде-
Обз Ор
211О Н К О Л О Г И Я • Т. 1 0 • № 2 • 2 0 0 8
монстрував високу ступінь спорідненості до VEGFR2 —
рецептора фактора росту судинного ендотелію (VEGF).
Співвідношення в кон’югаті вертепорфірину та пеп-
тиду складало 28 : 1, при цьому зберігалися всі фізико-
хімічні властивості сенсибілізатора. На гістологічних
зрізах сітківки після ФДТ уже через годину вияви-
ли некротичні процеси в ендотелію [44]. Результа-
ти, отримані в офтальмології, засвідчують непога-
ний ефект в пошкодженні васкуляної системи, що
дає привід для застосування подібного кон’югату при
лікуванні злоякісних пухлин.
Так в досліді на моделі ангіогенезу ока кроля, де
використовували кон’югований з індоціаніном фраг-
мент МкАТ scFvL19, специфічних до фібронектину —
одного з чільних маркерів судинної сітки, також
відзначали блокаду процесів неоангіогенезу. Але,
на жаль, цей кон’югат виявив суттєві недоліки,
пов’язані з низьким рівнем продукції синглетного
кисню фотосенсибілізатором індоціаніном [45].
Якщо говорити про дослідження імуно кон’юга-
тів, орієнтованих на ліганд — VEGF, то треба
відзначити, що їх зовсім немає. Останнім ча-
сом з’явився лише один препарат на основі
кон’югованого того ж вертепорфіну з візудіном —
антитілами до фактора VEGF [46]. Відомо, що при
застосуванні цих нативних антитіл відзначали знач-
ну затримку росту пухлин, а в деяких випадках ріст
взагалі припинявся. Так, при дослідженні препара-
ту кон’югованого з візудіном (антитілами до факто-
ра VEGF) вертепорфіну з’ясували, що спектр емісії
кон’югованого фотосенсибілізатора не відрізнявся
від спектра емісії вільного вертепорфіна. Також
досліди проводили на культурі ендотеліоцитів. Куль-
туру ендотеліоцитів опромінювали лазером, після
чого визначали виживаність клітин через 1 та 24 год.
З’ясували, що через годину після опромінювання
виживаність ендотеліоцитів знижувалася до 6%,
(р < 0,0001), через 24 год — до 4% (р < 0,0001). При
відсутності опромінювання виживаність складала
40%. При визначенні цитотоксичності з’ясували,
що кон’югований вертепорфін більш токсичний,
ніж вільний, хоча між ними не було статистично
достовірної різниці. Таким чином, кон’югований
з візудіном вертепорфін потенційно може бути
доволі ефективним препаратом у фотодинамічній
цілеспрямованій антиангіогенній терапії.
Можна припустити, що ефективність кон’юго-
ваних з антитілами препаратів, скерованих на бло-
кування активності VEGF (на зразок візудіна) може
бути пояснена не тільки фотодинамічною дією, але й
нейтралізацією дії пулу VEGF в екстрацелюлярному
матриксі, внаслідок чого фактор не може потрапля-
ти до рецепторів VEGFR, а відтак не може стимулю-
ватися проліферативний сигнал ендотеліоцитів. Це
певною мірою може компенсувати неспроможність
інтерналізації фотосенсибілізатора до клітини, де
фотодинамічна дія була би значно ефективнішою.
Крім того, при орієнтуванні фотоімунокон’югату
на рецептори VEGFR можна досягти подібного
синергічного ефекту, оскільки внаслідок зв’язування
фотоімунокон’югату з рецептором може блокуватися
функція цього рецептора, в результаті чого відбувається
гальмування клітинного поділу ендотеліоцитів.
Отже, цілеспрямована антиангіогенна ФДТ —
порівняно молодий напрямок в онкології. Завдя-
ки їй досягається високоефективна селективність у
накопиченні фотосенсибілізатора саме у васкулярній
мережі пухлин, за рахунок чого мінімізуються побічні
ефекти та підвищується ефективність терапії.
ЛІТЕРАТуРА
1. Mew D, Wat CK, Towers GH, Levy JC. Photoimmunotherapy
treatment of animal tumors with tumor — specific monoclonal
antibody — hematoporphyrin conjugates. J Jmmunol 1983; 130:
1473–7.
2. Engbrecht BW, Menon C, Kachur AV, Fraker DL.
Photofrin — mediated photodynamic therapy induces vascular
occlusion and apoptosis in a human sarcoma xenograft model.
Cancer Res 1999; 59 (17): 4334–42.
3. Vrounraets MB, Visser GV, Loup C, et al. Targeting of a
hydrophilic photosensitizer by use of internalizing monoclonal
antibodies: A new possibility for use in photodynamic therapy. Int
J Cancer 2000; 88 (1): 108–14.
4. Jiang FN, Richter AM, Jain AK, et al. Biodistribution of
a benzoporphyrin derivative monoclonal antibody conjugate in
A549 — tumor bearing nude mice. Biotechnol Ther 1993; 4 (1–2):
43–61.
5. Hemming AW, Davis NL, Dubois B, et al. Photodynamic
therapy of squamous cell carcinoma. An evalution of a new
photosensitizing agent benzoporphyrin derivative and new
photoimmunoconjugate. Surgical Oncol 1993; 2 (Issue 3):
187–96.
6. Миронов АФ. Фотодинамическая терапия рака — но-
вый эффективный метод диагностики и лечения злокаче-
ственных заболеваний. Соросовский образовательный журн
1996; 8: 32–40.
7. Van Hillegersberg R, Pickering JW, Aalders M, Beek JF.
Optical properties of rat liver and tumor at 633 nm and 1064 nm:
photofrin enhances scattering. Lasers Surg Med 1993; 13 (1):
31–9.
8. Rovers JP, Schuitmaker JJ, Vahrmeijer AL, et al. Interstitial
photodynamic therapy with the second-generation photosensitizer
bacteriochlorin a in a rat model for liver metastases. Br J Cancer
1998; 77 (12): 2098–103.
9. Hamblin MR, Del Gevernatore M, Rizvi I, Hasan T.
Biodistribution of charged 17.1A photoimmunoconjugates in a
murine model of hepatic metastasis of colorectal cancer. Br J
Cancer 2000; 83 (11): 1544–51.
10. Del Governatore M, Hamblin MR, Christopher R Shea,
et al. Experimental photoimmunotherapy of hepatic metastases
of colorectal cancer with a 17.1A chlorin e6 immunoconjugate.
Cancer Res 2000; 60: 4200–5.
11. Van Hillegersberg R, Marijnissen JP, Kort WJ, et al.
Interstitial photodynamic therapy in a rat liver metastasis model.
Br J Cancer 1992; 66 (6): 1005–14.
12. Woodburn KW, Stylli S, Hill JS, et al. Evaluation of tumour
and tissue distribution of porphyrins for use in photodynamic
therapy. Br J Cancer 1992; 65 (3): 321–8.
13. Boyle RW, Dolphin D. Structure and biodistribution
relationships of photodynamic sensitizers. Photochem Photobiol
1996; 64 (3): 469–85.
14. Dougherty TJ, Gomer CJ, Henderson BW, et al.
Photodynamic therapy. J Natl Cancer Inst 1998; 90 (12):
889–905.
15. Van Hillegersberg R, Van den Berg JW, Kort WJ, et al.
Selective accumulation of endogenously produced porphyrins
Обз Ор
212 О Н К О Л О Г И Я • Т. 1 0 • № 2 • 2 0 0 8
in a liver metastasis model in rats. Gastroenterol 1992; 103 (12):
647–51.
16. Governatore MD, Hamblin MR, Shea CR, et al.
Experimental Photoimmunotherapy of Hepatic Metastases of
Colorectal Cancer with a 17.1A Chlorin e-6 Immunoconjugate.
Cancer Research 2002; 60 (8): 4200–5.
17. Rosenthal I. Phthalocyanines as photodynamic sensitizers.
Photochem Photobiol 1991; 53 (6): 859–70.
18. Миронов АФ. Фотосенсибилизаторы на основе пор-
фиринов и родственных соединений для фотодинамической
терапии. Итоги науки и техники 1990; (3): 5–63.
19. Peng Q, Moan J. Correlation of distribution of sulfonated
aluminium with their photodynamic effect in tumor and skin of
mice bearing CaD2 mammary carcinoma. Br J Cancer 1995; 72
(3): 565–74.
20. Vrounraets MB, Visser GV, Stigter M, et al. Targeting
of aluminium (III) phthalocyanine tetrasulfonate by use of
internalizing monoclonal antibodies: improved efficacy in
photodynamic therapy. Cancer Res 2001; 61 (5): 1970–5.
21. Wesley M, Sharman WM, Johan E, et al. Aller. Targeted
photodynamic therapy via receptor mediated delivery systems.
Advanced Drug Delivery Reviews 2004; 56 (Issue 1): 53–76.
22. Gantchev TG, Ouellet R, van Lier JE. Binding interactions
and conformational changes induced by sulfonated aluminum
phthalocyanines in human serum albumin. Arch Biochem Biophys
1999; 366 (1): 21–30.
23. Hamblin MR, Miller JL, Ortel B. Scavenger-receptor
targeted photodynamic therapy. Photochem Photobiol 2000; 72
(4): 533–40.
24. Hamblin MR, Huzaira M, O’Donnell DA. Scavenger
receptor-targeted photodynamic therapy of murine tumors in vivo.
13th International Congress on Photobiology, San Francisco. CA
2000; (Abstract): 173.
25. Rosenkranz AA, Jans DA, Sobolev AS. Targeted intracellular
delivery of photosensitizers to enhance photodynamic efficiency.
Immunol Cell Biol 2000; 78 (4): 452–64.
26. Norbyry CJ, Zhivotovsky B. DNA damage-induced
apoptosis. Oncogene 2004; 23 (16): 2797–808.
27. Akhlynina TV, Rosenkranz AA, Jans DA, et al. The
use of internalizable derivative of chlorin e6 for increasing its
photosensitizing activity. Photochem Photobiol 1993; 58 (1):
45–8.
28. Hemming AW, Davis NL, Dubois B, et al. Photodynamic
therapy of squamous cell carcinoma. An evalution of a new
photosensitizing agent benzoporphyrin derivative and new
photoimmunoconjugate. Surgical Oncol 1993; 2 (Issue 3):
187–96.
29. Gullick WJ. Prevalence of aberrant expression of the
epidermal growth factor receptor in human cancer. Br Med Bull
1991; 47 (1): 87–98.
30. Goldstein NI, Prewett M, Zuklys K, et al. Biological efficacy
of a chimeric antibody to the epidermal growth factor receptor in
a human tumor xenograft model. Clin Cancer Res 1995; 1 (11):
1311–8.
31. Divgi CR, Welt S, Kris M, et al. Phase I and imaging trial
of indium 111 — labeled anti-epidermal growth factor receptor
monoclonal antibody 225 in patients with squamous cell lung
carcinoma. J Natl Cancer Inst 1991; 83 (2): 97–104.
32. Schwartz GK. Invasion and metastases in gastric cancer: in
vitro and in vivo models with clinical correlations. Semin Oncol
1996; 23 (3): 316–24.
33. Harris RC, Chung E, Coffey RJ. EGF receptor ligands.
Exp Cell Res 2003; 284: 2–13.
34. Lutsenko SV, Feldman NB, Finakova GV, et al. Targeting
phthalocyanines to tumor cells using epidermal growth factor
conjugates. Tumour Biol 1999; 20 (4): 218–24.
35. Gijsens A, Witte de P. Photocytotoxic action of EGF-
PVA-Sn(IV)chlorin e6 and EGF-dextran-Sn(IV)chlorin e6
internalizable conjugates on A431 cells. Int J Oncol 1998; 13 (6):
1171–7.
36. Gijsens A, Missiaen L, Merleved W, Witte de P. Epidermal
growth factor-mediated targeting of chlorin e6 selectively
potentiates its photodynamic therapy. Cancer Res 2000; 60 (8):
2197–202.
37. Dudek AZ, Pawlak WZ, Kirstein MN. Molecular targets
in the inhibition of angiogenesis. Expert Opin Ther Targets 2003;
7 (4): 527–41.
38. Ровенский ЮА. Клеточные и молекулярные механиз-
мы опухолевой инвазии. Биохимия 1998; 63 (9): 1204–21.
39. Молекулярно-генетичні детермінанти раку молочної
залози: теоретичні засади практичного застосування в
діагностиці і лікуванні. Здоровье женщины 2005; 41 (24):
189–98.
40. Shimizu K, Oku N. Cancer anti-angiogenic therapy. Biol
Pharm Bull 2004; 27 (5): 599–605.
41. Ursula M, Erfurth S, Pruente C. Management of
neovascular age-related macular degeneration. Progress Rational
Eye Res 2007; 24 (Issue 4): 437–51.
42. Kanae Ichikawa, Tomoya Hikita, Noriyki Maeda, et al.
PEGylation of liposome descreases the susceptibility of liposomal
drug in cancer photodynamic therapy. Biol Pharm Bull 2004; 27:
443–4.
43. Takeuchi Y, Kurohade K, Ichicawa K, et al. Induction
of intensive tumor suppressor by antiangiogenic photodynamic
therapy using polycation-modified liposomal photosensitizer.
Cancer 2003; 97: 2027–34.
44. Renno RZ, Terada Y, Haddadin MJ, et al. Selective
photodynamic therapy by targeted verteporfin delivery to
experimental choroidal neovascularization mediated by a homing
peptide to vascular еndothelial grovth factor receptor-2. Arch
Ophtalmol 2004; 122 (7): 1002–11.
45. Birchler M, Viti F, Zardi L, et al. Selective targeting
and photocoagulation of ocular angiogenesis mediated by a
phage-derived human antibody fragment. Nat Biotech 1999; 17:
984–8.
46. Mayo GL, Melendez RF, Kumar N, et al. Antibody-targeted
photodynamic therapy. Am J Ophatalmol 2003; 36 (6): 1151–2.
PHOTOACTIVE CONJUGATES
FOR TARGETED ANTI-TUMOR
PHOTODYNAMIC THERAPY
A.A. Mamchur, I.O. Lisnyak, N.L. Novichenko
Summary. Evidence concerning application of
photodynamic targeted therapy and potential of its
application for the suppression of tumor growth and
development are analyzed. Also emphasis is given to the
usage of photoimmunoconjugates with different possible
carries — biologically active substances: cytokines,
liposomes, albumin, hormones.
Key Words: photoimmunoconjugates,
photodynamic targeted therapy, vascular
endothelial growth factor, photosensitizer,
apoptosis.
Адреса для листування:
Мамчур А.А.
03022, Київ, вул. Васильківська, 45
Інститут експериментальної патології,
онкології і радіобіології ім. Р.Є. Кавецького
НАН України
|