КОМПОНЕНТИ ЛІПІД-ПІГМЕНТНОГО КОМПЛЕКСУ ЛИСТКІВ ПШЕНИЦІ ОЗИМОЇ ЗА ІНОКУЛЯЦІЇ МІКРООРГАНІЗМАМИ З ФОСФАТМОБІЛІЗУВАЛЬНОЮ ЗДАТНІСТЮ
The evaluation of the physiological condition of winter wheat plants inoculated with phosphate mobilizing microorganisms under the phosphorus deficiency conditions was performed. The influence of PaenibacilluspolymyxaKB,Rhizobiumradiobacter1333andRhizobium radiobacter 5006 on lipid-pigment complexes...
Gespeichert in:
| Datum: | 2012 |
|---|---|
| Автори та афіліації: |
|
| Ключові слова: | keywords |
| Hauptverfasser: | , , , , , , , |
| Format: | Artikel |
| Sprache: | Ukrainisch |
| Veröffentlicht: |
Institute of Agrocultural Microbiology and Agro-industrial Manufacture of NAAS of Ukraine
2012
|
| Schlagworte: | |
| Online Zugang: | https://smic.in.ua/index.php/journal/article/view/241 |
| Tags: |
Tag hinzufügen
Keine Tags, Fügen Sie den ersten Tag hinzu!
|
| Назва журналу: | Agriciltural microbiology |
| Завантажити файл: |  |
Institution
Agriciltural microbiology| _version_ | 1871465804422184960 |
|---|---|
| author | Свєтлова , Н.Б. Калініченко , О.В. Серга , О.І. Стороженко , В.О. Улинець , В.З. Токмакова , Л.М. Трепач , А.О. Таран , Н.Ю. |
| author_facet | Свєтлова , Н.Б. Калініченко , О.В. Серга , О.І. Стороженко , В.О. Улинець , В.З. Токмакова , Л.М. Трепач , А.О. Таран , Н.Ю. |
| author_institution_txt_mv | [
{
"author": "Н.Б. Свєтлова ",
"institution": "Навчально-науковий центр «Інститут біології» Київського національного університету імені Тараса Шевченка"
},
{
"author": "О.В. Калініченко ",
"institution": "Навчально-науковий центр «Інститут біології» Київського національного університету імені Тараса Шевченка"
},
{
"author": "О.І. Серга ",
"institution": "Навчально-науковий центр «Інститут біології» Київського національного університету імені Тараса Шевченка"
},
{
"author": "В.О. Стороженко ",
"institution": "Інститут сільськогосподарської мікробіології та агропромислового виробництва НААН"
},
{
"author": "В.З. Улинець ",
"institution": "Навчально-науковий центр «Інститут біології» Київського національного університету імені Тараса Шевченка"
},
{
"author": "Л.М. Токмакова ",
"institution": "Інститут сільськогосподарської мікробіології та агропромислового виробництва НААН"
},
{
"author": "А.О. Трепач ",
"institution": "Інститут сільськогосподарської мікробіології та агропромислового виробництва НААН"
},
{
"author": "Н.Ю. Таран ",
"institution": "Навчально-науковий центр «Інститут біології» Київського національного університету імені Тараса Шевченка"
}
] |
| author_sort | Свєтлова , Н.Б. |
| baseUrl_str | https://smic.in.ua/index.php/journal/oai |
| collection | OJS |
| datestamp_date | 2026-07-22T10:10:45Z |
| description | The evaluation of the physiological condition of winter wheat plants inoculated with phosphate mobilizing microorganisms under the phosphorus deficiency conditions was performed. The influence of PaenibacilluspolymyxaKB,Rhizobiumradiobacter1333andRhizobium radiobacter 5006 on lipid-pigment complexes of plants was observed. The accumulation of the major photosynthetic pigments, increasing of chlorophyll (a+b)/carotenoids ratio and maintaining of high level of phosphatidyl glycerol and stable content of sulphoquinovosyl diacylglycerol was revealed. The inoculation of seeds with phosphate mobilizing microorganisms had significantly improved the productivity of wheat plants in all variants with its highest indices at seeds bacterization with Rhizobium radiobacter 5006. |
| doi_str_mv | 10.35868/1997-3004.14.109-120 |
| first_indexed | 2025-07-17T12:24:40Z |
| format | Article |
| fulltext |
109
УДК 577.118:577.115:577.125.5.8
КОМПОНЕНТи ЛІПІД-ПІГМЕНТНОГО
КОмПЛЕКСУ листків пшениці озимої
ЗА ІНОКУЛЯЦІЇ МІКРООРГАНІЗМАМИ З
ФОСФАТМОБІЛІЗУВАЛЬНОЮ ЗДАТНІСТЮ
1Свєтлова Н.Б., 1Калініченко О.В., 1Серга О.І.,
1Стороженко В.О., 1Улинець В.З., 2Токмакова Л.М.,
2Трепач А.О., 1Таран Н.Ю.
1Навчально-науковий центр «Інститут біології»
Київського національного університету імені Тараса Шевченка,
вул. Володимирська, 60, м. Київ, 01033
2Інститут сільськогосподарської мікробіології НААН
E-mail: tarantul@univ.kiev.ua
Здійснено оцінку фізіологічного стану рослин пшениці
озимої (Triticum aestivum L.), інокульованих бактеріями з
фосфатмобілізувальною здатністю, за умов дефіциту доступного
фосфору в ґрунті. Виявлено моделюючий вплив бактерій
Paenibacillus polymyxa KB, Rhizobium radiobacter 1333 і Rhizobium
radiobacter 5006 на складові ліпід-пігментного комплексу рослин,
який проявляється в акумуляції основних фотосинтетично
активних пігментів, зростанні співвідношення хлорофіли (a+b)/
каротиноїди, підтриманні високого рівня фосфатидилгліцеролу
поряд зі стабільним вмістом сульфохіновозилдіацилгліцеролу.
Передпосівна бактеризація насіння фосфатмобілізувальними
бактеріями підвищувала врожайність рослин пшениці у всіх
досліджуваних варіантах, з максимальним значенням при
бактеризації насіння Rhizobium radiobacter 5006.
Ключові слова: дефіцит фосфору, фосфатмобілізувальні
бактерії, фотосинтезувальні пігменти, фосфатидилглицерол,
сульфохіновозилдіацилгліцерол, пшениця озима
Фосфор є одним із макроелементів, необхідних для росту і
розвитку рослин. Оптимальний вміст фосфору в рослинній клітині
є передумовою підтримання основних фізіологічних і біохімічних
процесів. Для подолання стресу, викликаного дефіцитом фосфатів
(Pi), рослини розвинули стратегії надходження Pi з навколишнього
середовища, акумуляції та реутилізації фосфору в донорно-
акцепторній системі рослин [4]. Однією із стратегій поліпшення
надходження Pi з ґрунту є здатність до формування мікробно-
рослинних асоціацій у ризосфері рослин за участі мікроорганізмів,
110
які сприяють метаболічному перетворенню важкорозчинних
ґрунтових фосфатів у розчинні форми [2, 7–9]. Створення таких
мікробно-рослинних асоціацій поліпшує процес мінералізації
низькомолекулярних органічних фосфатів ґрунту до неорганічних
фосфат-іонів – гідро- (НРО4
2-) й дигідрофосфатів (Н2РО4
-) [10], що
значно покращує фосфорний режим ґрунту [5].
З огляду на зазначене вище, доцільним є застосування
комплексного підходу до вивчення мікробно-рослинних асоціацій,
важливою складовою яких є рослинний організм. Дослідження
фізіолого-біохімічних параметрів рослин, зокрема трансформацій
складових їх ліпід-пігментного комплексу, є інтегральним
показником фізіологічного стану рослин та можливості реалізації
їх адаптивного потенціалу.
Матеріали і методи. Проводили оцінку чутливості рослин
пшениці сорту Поліська 90 до нестачі фосфору на рівні процесів
росту та розвитку. Насіння рослин інокулювали штамами бактерій
Paenibacillus polymyxa KB (препарат Поліміксобактерин),
Achromobacter album 1122 (Альбобактерин), Rhizobium radiobacter
1333 та R. radiobacter 5006, фосфатмобілізувальна активність
яких становить 52,0 мг Р2О5/100 мл розчину, 83,5 мг Р2О5/100 мл
розчину, 43,0 мг Р2О5/100 мл розчину та 97,6 мг Р2О5/100 мл
розчину, відповідно. Передпосівну бактеризацію проводили шля-
хом завчасної обробки зерна суспензією (мікробними препаратами)
досліджуваних штамів бактерій з розрахунку 0,5 млн клітин на
насінину згідно СОУ [6].
Ефективність бактеризації насіння пшениці озимої фосфат-
мобілізувальними бактеріями вивчали у польовому досліді на базі
Державного підприємства «Дослідного господарства Інституту
сільськогосподарської мікробіології НААН» (м. Чернігів) на
лучно-чорноземному вилугуваному легкосуглинковому ґрунті,
який містить в орному шарі 3,01 % гумусу, від 0,27 % до 0,31 %
загального азоту, біля 15 мг/100 г ґрунту Р2О5 (за Кірсановим), від
13 мг/100 г ґрунту до 16 мг/100 г К2О (за Масловою), рНсол 5,2.
Дослідження проводили протягом вегетаційного періоду 2009
року. Площа облікових ділянок становила 10 м2, повторність
чотирикратна, норма висіву 300 кг/га, попередник – вико-вівсяна
сумішка. Агротехніка – загальноприйнята для ґрунтово-кліматич-
них умов Чернігівщини.
Зразки рослинного матеріалу відбирали у фази кущіння та
111
цвітіння. Для дослідження використовували тканини листків (фаза
кущіння) та прапорцевого листка (фаза цвітіння), що пов’язано з
його високою фотосинтезувальною активністю у фазу цвітіння.
Фізіологічний стан рослин оцінювали за фізіолого-біохімічними
параметрами стану ліпід-пігментного комплексу. Ліпіди екстра-
гували за методикою Зіла та Хармона [11] в модифікації Яковенко
та Михно [12]. Розділення ліпідів на фракції здійснювали методом
тонкошарової хроматографії на силікагелі. Загальний вміст хлоро-
філів a і b та каротиноїдів визначали спектрофотометрично [13].
Облік урожаю та статистичну обробку одержаних результатів
проводили за Доспєховим [3]. Біологічна повторність дослідів
триразова, аналітична – дев’ятиразова, похибка не перевищувала
5 %.
Результати та обговорення. Важливими параметрами
фізіолого-біохімічного стану рослин в умовах обмеження в
елементах мінерального живлення, зокрема фосфорі, є вміст та
співвідношення пігментів фотосинтетичного апарату рослин –
хлорофілів а, b та каротиноїдів.
Дослідження впливу бактерій P. polymyxa КВ, A. album 1122,
R. radiobacter 1333 та Rh. radiobacter 5006 на стан пігментної
системи рослин показало, що передпосівна бактеризація насіння
пшениці сприяє накопиченню хлорофілів а і b в листках рослин,
оброблених біопрепаратами (табл. 1).
Обробка насіння P. polymyxa КВ сприяла акумуляції
хлорофілів а і b та загального вмісту каротиноїдів, як на початкових
етапах органогенезу (у фазу кущіння), так і протягом всього періоду
вегетації (у фазу цвітіння), у порівнянні з варіантом, де у рядки
вносили суперфосфат у дозі Р30.
Моделюючий вплив мікроорганізмів R. radiobacter 1333
і R. radiobacter 5006 на пігментний комплекс рослин пшениці
проявився лише на пізніших етапах органогенезу – у фазу цвітіння.
Виявлено зростання вмісту хлорофілів а і b та загального пулу
каротиноїдів у рослинах у варіанті з бактеризацією R. radiobacter
1333; хлорофілу а і суми каротиноїдів – у рослинах, інокульованих
R. radiobacter 5006. Збереження загального високого пулу
каротиноїдів підтримує антиоксидантний потенціал клітин,
захищаючи їх структури, зокрема ліпіди мембран, від процесів
пероксидного окиснення.
Бактеризація насіння пшениці озимої усіма досліджуваними
112
фосфатмобілізувальними бактеріями сприяла збереженню спів-
відношення хл а/хл b на ранніх етапах органогенезу і, як наслідок,
підтриманню оптимального рівня електронного транспорту між
ФСІ і ФСІІ в умовах фосфорного голодування.
Таблиця 1. Вміст пігментів у листках рослин
пшениці озимої сорту Поліська 90, інокульованих
фосфатмобілізувальними бактеріями
Варіанти
досліду
Вміст пігментів, мг/г сухої маси Cпіввідношення
хл а хл b хл
(a+b)
кароти-
ноїди
(кар)
хл а/
хл b
хл
(a+b)/
кар
фаза кущіння
Без
бактеризації
(контроль )
4,62±0,30 2,14±0,18 6,76±0,47 2,05±0,13 2,18±0,07 3,30±0,13
Р30
(суперфосфат) 3,63±0,29 1,54±0,13 5,17±0,41 1,63±0,11 2,36±0,08 3,16±0,06
P. polymyxa
KB 4,59±0,03 2,00±0,02 6,58±0,04 1,99±0,01 2,30±0,01 3,30±0,01
A. album 1122 3,38±0,14 1,47±0,06 4,85±0,20 1,60±0,05 2,29±0,02 3,03±0,07
R. radiobacter
1333 3,71±0,31 1,63±0,13 5,34±0,43 1,69±0,13 2,28±0,04 3,16±0,04
R. radiobacter
5006 2,84±0,13 1,24±0,07 4,08±0,19 1,30±0,05 2,29±0,06 3,14±0,05
фаза цвітіння
Без
бактеризації
(контроль )
3,53±0,15 1,68±0,06 5,21±0,21 1,15±0,05 2,10±0,02 4,52±0,03
Р30
(суперфосфат) 3,55±0,20 1,68±0,11 5,22±0,31 1,15±0,05 2,12±0,02 4,52±0,08
P. polymyxa
KB 5,01±0,16 2,43±0,10 7,44±0,26 1,55±0,05 2,06±0,02 4,79±0,06
A. album 1122 3,16±0,10 1,53±0,02 4,69±0,15 0,98±0,03 2,07±0,06 4,77±0,05
R. radiobacter
1333 4,74±0,15 2,22±0,07 6,96±0,22 1,45±0,04 2,14±0,01 4,80±0,05
R. radiobacter
5006 4,36±0,18 1,57±0,21 5,92±0,31 1,30±0,07 3,01±0,38 4,58±0,26
Акумуляція хлорофілів та суми каротиноїдів у рослин, іноку-
льованих P. polymyxa КВ (протягом вегетації) та R. radiobacter 1333
113
(у фазу цвітіння) супроводжується зростанням співвідношен-ня хл
(a+b)/кар, що пов’язано з суттєвішою акумуляцією пулу зелених
пігментів у рослин цих досліджуваних варіантів.
Дослідження впливу A. album 1122 на пігментний комплекс
інокульованих рослин не виявило моделюючої дії цих бактерій
на вміст хлорофілів та каротиноїдів у листках пшениці на ранніх
етапах онтогенезу. У фазу цвітіння встановлено порушення
балансу синтезу-розпаду пігментів у рослинах за дії A. album 1122.
Трансформації загального пулу пігментів проявлялись у зростанні
співвідношення хл (a+b)/кар.
Таким чином, узагальнюючи результати польових дослід-
жень щодо трансформації головних асиміляційних структур
рослин пшениці озимої, слід підкреслити позитивний моделюючий
вплив на складові пігментної системи рослин бактерій P. polymyxa
KB, R. radiobacter 1333 і R. radiobacter 5006, що проявляється в
акумуляції основних фотосинтетично активних пігментів. Доцільно
відмітити наявність оберненої залежності між загальним пулом
фотосинтетичних пігментів та величиною фотоасиміляційної
поверхні рослин, оброблених A. album 1122.
Розвинена система мембранних структур, необхідних для
фотосинтезу, а також зміни у складі ліпідів мембран дозволяють
функціонувати клітинам з мінімальними потребами у фосфорі. Це
має вирішальне значення, оскільки фосфор є одним із мінеральних
елементів для рослин, відсутність якого часто обмежує їх ріст [14,
15].
Водночас фосфор є одним із ключових елементів у біосинтезі
ліпідів [16]. Третина органічних фосфатів у рослинах, зокрема в
Arabidopsis thaliana, входить до складу фосфоліпідів [4]. Нестача
Pi є одним із факторів, який спричинює зміни у функціонуванні
багатьох метаболічних шляхів, спрямованих на мобілізацію та
скорочення використання фосфору.
Нами досліджено ліпідний склад мембран фотосинтетич-
них тканин рослин пшениці та ідентифіковано наступні галактолі-
піди – моно- та дигалактозилдіацилгліцерол (МГДГ та ДГДГ),
сульфоліпід – сульфохіновозилдіацилгліцерол (СХДГ) та фосфо-
ліпід – фосфатидилгліцерол (ФГ).
Дослідженням фракції галактоліпідів встановлено зниження
вмісту МГДГ та акумуляцію ДГДГ у варіантах з штамами
R. radiobacter 1333 і 5006 у фазу кущіння (рис. 1 а).
114
Рис. Трансформації компонентів ліпідного
комплексу в рослинах сортів озимої пшениці за дії
фосфатмобілізувальних бактерій.
Сорт Поліська 90. Фази: кущіння (а), цвітіння (б).
Такі трансформаційні перебудови у складі галактоліпідів
фотосинтетичних мембран можна пояснити участю МГДГ у
біосинтезі ДГДГ на кінцевих його етапах [17]. Внаслідок цих змін
відмічено суттєве зменшення у співвідношенні галактоліпідів
МГДГ/ДГДГ в рослинах, інокульованих штамами R. radiobacter
1333 і 5006, з 1,7 у контролі до 1,37 та 1,33, відповідно. Протягом
подальшої вегетації, у фазу цвітіння, подібна закономірність
трансформаційних перебудов галактоліпідів не зберігалася,
а
б
115
за виключенням варіанту з R. radiobacter 5006 (рис. б), де
співвідношення МГДГ/ДГДГ має тенденцію до зменшення з 1,71 у
контролі до 1,51 в дослідному варіанті.
Таким чином, встановлено активацію біосинтезу ДГДГ в
мембранах фотосинтетичних тканин пшениці, як на початкових
етапах органогенезу при інокуляції R. radiobacter 1333, так і протягом
вегетації (у варіанті з R. radiobacter 5006), що, на нашу думку, може
бути певною компенсаторною реакцією рослин пшениці в комбінації
з R. radiobacter за нестачі Рі. Можна припустити, що активація
біосинтезу ДГДГ з МГДГ при інокуляції R. radiobacter пов’язана
з додатковим альтернативним шляхом синтезу галактоліпідів, а
саме з галактоліпідгалактозил-трансферазою, яка локалізована
в мембранах хлоропластів і здатна синтезувати ДГДГ з МГДГ за
відсутності УДФ-галактози [18], яка за оптимальних умов живлення
є донором галактози для синтезу ДГДГ у вищих рослин [19].
Виявлено деструкцію вмісту ФГ у фотосинтетичних мем-
бранах рослин пшениці, які росли за умов нестачі Рі у фазу
кущіння (див. рис. а). Зниження рівня ФГ в листках дослідних
рослин призводить до структурних та функціональних порушень
в організації тилакоїдних мембран, зокрема, конформації
світлозбирального комплексу ФСІІ на рівні мономера, а саме
його зв’язку з хлорофілами а та b та транспорту електронів в ЕТЛ
хлоропластів [1]. Інокуляція зернівок A. album 1122 та R. radiobacter
1333 перешкоджала деструкції цього фосфоліпіду. Підтримання
високого рівня ФГ в цих варіантах може опосередковано свідчити
про підвищення рівня доступності Рі в ризосфері інокульованих
A. album 1122 та R. radiobacter 1333 рослин.
На нашу думку, дослідження вмісту ФГ в фотосинтетичних
мембранах рослин пшениці, насіння якої піддавали обробці
мікроорганізмами з потенційною чи дослідженою фосфат-
мобілізувальною здатністю, є показовим саме на ранніх етапах
органогенезу, до формування генеративних органів рослин. При
їх утворенні та дозріванні формується новий атрагуючий центр
у рослині, до якого надходить основна частина фотоасимілятів,
і в тому числі відбувається перерозподіл сполук, які містять
елементарний фосфор.
Результати аналізу СХДГ виявили зростання його вмісту у
варіантах з P. polymyxa KB і A. album 1122 у фазу кущіння (див.
рис. а). Високий рівень СХДГ також зберігався у фазу цвітіння
116
при інокуляції насіння P. polymyxa KB (див. рис. б). Інші дослідні
варіанти з залученням мікроорганізмів відзначалися стабільністю
фракції цього сульфоліпіду у фазу кущіння.
З даних літератури відомо, що СХДГ міститься виключно
в мембранах пластид, а ФГ є єдиним наявним фосфоліпідом
у мембранах тилакоїдів, тому зменшення вмісту ФГ може
компенсуватися стабільністю вмісту іншого аніонного ліпіду
– СХДГ для збереження аніонного характеру мембранних ліпідів
та підтримання оптимального рівня перебігу фотосинтетичних
процесів у хлоропластах. Активізація компенсаторного механізму
заміни ФГ на СХДГ в фотосинтетичних мембранах може свідчити
про певний рівень нестачі Рі. Тому слід відмітити варіанти зі
штамами R. radiobacter 1333 і 5006, де не виявлено залучення цього
компенсаторного механізму в фотосинтетичних мембранах, а вміст
сульфоліпіду зберігався на рівні контролю протягом усієї вегетації.
Підтримання стабільного рівня СХДГ, поряд з високим вмістом ФГ,
може свідчити про зменшення стресового напруження в ризосфері
дослідних рослин при передпосівній інокуляції насіння штамами
R. radiobacter 1333 і 5006.
Таблиця 2. Урожайність пшениці озимої сорту Поліська
90 за бактеризації насіння фосфатмобілізувальними
бактеріями (польовий дослід, 2009 р.)
Варіанти досліду
Урожайність
т/га приріст до контролю
т/га %
Без бактеризації (контроль ) 4,0 – –
Р30 (суперфосфат) 4,9 0,9 22,5
P. polymyxa КВ 4,6 0,6 15,0
A. album 1122 4,3 0,3 7,5
R. radiobacter 1333 4,7 0,7 17,5
R. radiobacter 5006 4,8 0,8 20,0
НІР05 0,29
Р, % 0,98
На кінцевих етапах органогенезу пшениці озимої після по-
чаткової її бактеризації ефект агрозаходу проявляється в реалізації
адаптивного потенціалу рослин, вирощуваних на ґрунтах з низьким
вмістом доступних форм Pi. Моделюючий вплив фосфатмобілізу-
117
вальних бактерій у ризосфері інокульованих рослин сприяє проце-
су мінералізації низькомолекулярних органічних фосфатів ґрунту
та поліпшує фосфорне живлення рослин, що в кінцевому підсумку
суттєво підвищує врожайність рослин усіх досліджуваних варіан-
тів (табл. 2). Так, урожайність пшениці озимої сорту Поліська 90 за
бактеризації насіння збільшується на 0,3-0,8 т/га порівняно з кон-
тролем, а у варіанті з R. radiobacter 5006 майже не поступається
рівню врожайності пшениці, вирощеної за оптимального фону Р30,
де приріст до контролю становить 20,0 % проти 22,5 %.
Узагальнюючи результати польових досліджень, присвяче-
них вивченню механізмів трансформації компонентів ліпід-пігмен-
тного комплексу фотосинтетичних тканин рослин пшениці озимої,
інокульованих фосфатмобілізувальними бактеріями, можна зробити
наступні висновки:
Виявлено позитивний моделюючий вплив на складові
пігментної системи рослин бактерій P. polymyxa KB, R. radiobacter
1333 і R. radiobacter 5006, який проявляється в акумуляції
основних фотосинтетичних пігментів та зростанні співвідношення
хл (a+b)/кар.
Підтримання високого рівня ФГ, поряд зі стабільним вмістом
СХДГ в листках, свідчить про ймовірне зменшення стресового
напруження в ризосфері дослідних рослин при передпосівній
інокуляції зернівок штамами R. radiobacter 1333 і 5006.
Передпосівна бактеризація насіння фосфатмобілізуваль-
ними бактеріями підвищує врожайність рослин у всіх досліджува-
них варіантах, а при бактеризації насіння R. radiobacter 5006
врожайність пшениці озимої сягає рівня оптимального фону
Р30 (20,0 % у варіанті з бактеризацією проти 22,5 % у варіанті з
добривом).
1. Таран Н.Ю. Ліпіди рослин /Н.Ю. Таран, О.І. Косик,
О.А. Оканенко, Л.М. Бацманова. – К.: Ленвіт, 2006. – 104 с.
2. Рекомендації з ефективного застосування мікробних препаратів
у технологіях вирощування сільськогосподарських культур /[за ред.
С.І. Мельник, В.А. Жилкін, М.М. Гаврилюк та ін.]. – К.: Міністерство
аграрної політики України, УААН, 2007. – 52 с.
3. Доспехов Б.А. Методика полевого опыта /Б.А. Доспехов. – М.:
Агропромиздат, 1985. – 352 с.
4. Poirier Y. Phosphate transport and homeostasis in Arabidopsis
118
/Poirier Y., Bucher M. //The Arabidopsis book /Ed. C.R. Somerville, E.M.
Meyerowitz, M.D, Rockville. – The American Society of Plant Biologists,
2002. – P. 1–35.
5. Мікробні препарати у землеробстві. Теорія і практика
/[В.В. Волкогон, О.В. Надкернічна, Т.М. Ковалевська та ін. ]. – К.: Аграрна
наука, 2006. – 311 с.
6. Насіння зернових та зернобобових культур. Технологічний
процес нанесення мікробних препаратів. Загальні вимоги: СОУ 01.11–37–
782:2008. – [Чинний від 2009-07-01]. – К.: Держспоживстандарт України,
2009. – 18 с.
7. Патика В.П. Пошук мікроорганізмів для розробки нових
екологобезпечних препаратів на основі фосформобілізівних бактерій
/Патика В.П., Токмакова Л.М., Луценко Н.В. [та ін.] //Вісник Одес. нац.
ун-ту. Сер. Біологія. – 2001. – Т. 6, № 4. – С. 228–231.
8. Токмакова Л.М. Фосформобілізівні препарати – альбобактерин,
поліміксобактерин /Токмакова Л.М. //Лідер України. – 2006. – № 51. –
С. 136–137.
9. Чайковська Л.О. Ефективність біопрепаратів на богарних землях
/Чайковська Л.О., Патика В.П., Мельничук Т.М. [та ін.] //Агроекол. журн.
– 2002. – № 3. – С. 61–63.
10. Abel S. Phosphate sensing in higher plant /Abel S., Ticconi C.A.,
Delatorre C.A. //Physiol. Plant. – 2002. – Vol. 115, № 1.– P. 1–8.
11. Zill L. Lipids of photosynthetic tissue. I. Salicilic acid chromatogra-
phy of the lipids from whole leaves and chloroplasts /Zill L., Harmon E.
//Biochem. Biophys. Acta. – 1962. – Vol. 57. – Р. 573–575.
12. Яковенко Г.М. Метод выделения и разделения по классам
липидов листьев и хлоропластов растений /Яковенко Г.М., Михно А.И.
//Физиол. и биохим. культ. раст. – 1971. – T. 3, № 6. – С. 651–656.
13. Arnon D.I. Cooper enzymes in isolated chloroplasts. Polyphenolase
in Beta vulgaris /Arnon D.I. //Plant Physiol. – 1949. – Vol. 24, № 1. – P. 1–154.
14. Frentzen M. Phosphatidylglycerol and sulfoquinovosyldiacyl-
glycerol: anionic membrane lipids and phosphate regulation /Frentzen M.
//Cur. Opin. in Plant Biol. – 2004. – Vol. 7, № 3. – P. 270–276.
15. Raghothama K.G. Phosphate Acquisition /Raghothama K.G. //Annu.
Rev. Plant. Physiol. Plant. Mol. Biol. – 1999. – Vol. 50. – P. 665–693.
16. Raghothama K.G. Phosphate transport and signaling /Raghotha-
ma K.G. //Curr. Opin. Plant. Biol. – 2000. – Vol. 3, № 3. – P. 182–187.
17. Yuan H. Signaling components involved in plant responses to
phosphate starvation /Yuan H., Liu D. //J. Integr. Plant Biol. – 2008. – Vol. 50,
№ 7. – P. 849–859.
18. Kelly A.A. Disruption of the two digalactosyldiacylglycerolsyn-
thase genes DGD1 and DGD2 in Arabidopsis reveals the existence of an
119
additional enzyme of galactolipid synthesis /Kelly A.A., Froehlich J.E.,
Dormann P. //Plant Cell. – 2003. – Vol. 15, № 11. – P. 2694–2706.
19. Kelly A.A. DGD2, an Arabidopsis gene encoding a UDP-galactose
dependent digalactosyldiacylglycerol synthase is expressed during growth
under phosphate limiting conditions /Kelly A.A., Dormann P. //J. Biol. Chem.
– 2002. – Vol. 277, № 2. – P. 1166–1173.
КОМПОНЕНТы ЛиПиД-ПиГМЕНТНОГО
КОмПЛЕКСа листьев ПШЕНИЦЫ ОЗИМОЙ
при ИНОКУЛяции МИКРООРГАНИЗМАМИ С
ФОСФАТМОБИЛИЗИРУЮЩЕЙ СПОСОБНОСТЬЮ
1Светлова Н.Б., 1Калиниченко Е.В., 1Серга О.И.,
1Стороженко В.А., 1Улинец В.З., 2Токмакова Л.Н.,
2Трепач А.А., 1Таран Н.Ю.
1Учебно-научный центр «Институт биологии» Киевского
национального университета имени Тараса Шевченко, г. Киев
2Институт сельскохозяйственной микробиологии НААН,
г. Чернигов
Проведена оценка физиологического состояния растений
пшеницы озимой, инокулированных бактериями с фосфатмоби-
лизирующей способностью, в условиях дефицита доступного
фосфора в почве. Обнаружено положительное моделирующее
влияние бактерий Paenibacillus polymyxa KB, Rhizobium radiobac-
ter 1333 и Rhizobium radiobacter 5006 на компоненты пигментной
системы растений, которое проявляется в аккумуляции основных
фотосинтетических пигментов, увеличении соотношения
хлорофилл (a+b)/каротиноиды, поддержании высокого уровня
фосфатидилглицерола и стабильного содержания сульфохиново-
зилдиацилглицерола. Предпосевная бактеризация семян фосфат-
мобилизирующими бактериями повышала урожайность растений
пшеницы во всех исследуемых вариантах, с максимальным
значением при бактеризации семян Rhizobium radiobacter 5006.
Ключевые слова: дефицит фосфора, фосфатмобилизирую-
щие бактерии, фотосинтетичечкие пигменты, фосфатидилгли-
церол, сульфохиновозилдиацилглицерол, пшеница озимая.
120
THE LIPID-PIGMENT COMPLEX COMPONENTS
OF WINTER WHEAT LEAVES at INOCULATion
WITH MICROORGANISMS POSESSING
PHOSPHATMOBILIZATION ABILITY
1Svietlova N.B., 1Kalinichenko O.V., 1Serga O.I.,
1Storozhenko V.A., 1Ulinets V.Z., 2Tokmakova L.P.,
2Trepach A.A., 1Taran N.Yu.
1Training and Scientific Centre «Institute of Biology» Kyiv National
Taras Shevchenko University
2Institute of Agricultural Microbiology NAAS, Chernihiv
The evaluation of the physiological condition of winter wheat
plants inoculated with phosphate mobilizing microorganisms under
the phosphorus deficiency conditions was performed. The influence of
Paenibacillus polymyxa KB, Rhizobium radiobacter 1333 and Rhizobium
radiobacter 5006 on lipid-pigment complexes of plants was observed.
The accumulation of the major photosynthetic pigments, increasing
of chlorophyll (a+b)/carotenoids ratio and maintaining of high level
of phosphatidyl glycerol and stable content of sulphoquinovosyl
diacylglycerol was revealed. The inoculation of seeds with phosphate
mobilizing microorganisms had significantly improved the productivity of
wheat plants in all variants with its highest indices at seeds bacterization
with Rhizobium radiobacter 5006.
Key words: phosphorus deficiency, phosphatmobilizing bacteria,
photosynthetic pigments, phosphatidyl glycerol, sulphoquinovosyl
diacylglycerol, winter wheat.
|
| id | oai:ojs2.smic.in.ua:article-241 |
| institution | Agriciltural microbiology |
| keywords_txt_mv | keywords |
| language | Ukrainian |
| last_indexed | 2026-07-23T01:07:51Z |
| publishDate | 2012 |
| publisher | Institute of Agrocultural Microbiology and Agro-industrial Manufacture of NAAS of Ukraine |
| record_format | ojs |
| resource_txt_mv | smicinua/f3/36229e927760320b8381884757f137f3.pdf |
| spelling | oai:ojs2.smic.in.ua:article-2412026-07-22T10:10:45Z THE LIPID-PIGMENT COMPLEX COMPONENTS OF WINTER WHEAT LEAVES AT INOCULATION WITH MICROORGANISMS POSESSING PHOSPHATMOBILIZATION ABILITY КОМПОНЕНТИ ЛІПІД-ПІГМЕНТНОГО КОМПЛЕКСУ ЛИСТКІВ ПШЕНИЦІ ОЗИМОЇ ЗА ІНОКУЛЯЦІЇ МІКРООРГАНІЗМАМИ З ФОСФАТМОБІЛІЗУВАЛЬНОЮ ЗДАТНІСТЮ Свєтлова , Н.Б. Калініченко , О.В. Серга , О.І. Стороженко , В.О. Улинець , В.З. Токмакова , Л.М. Трепач , А.О. Таран , Н.Ю. phosphorus deficiency, phosphatmobilizing bacteria, photosynthetic pigments, phosphatidyl glycerol, sulphoquinovosyl diacylglycerol, winter wheat дефіцит фосфору, фосфатмобілізувальні бактерії, фотосинтезувальні пігменти, фосфатидилглицерол, сульфохіновозилдіацилгліцерол, пшениця озима The evaluation of the physiological condition of winter wheat plants inoculated with phosphate mobilizing microorganisms under the phosphorus deficiency conditions was performed. The influence of PaenibacilluspolymyxaKB,Rhizobiumradiobacter1333andRhizobium radiobacter 5006 on lipid-pigment complexes of plants was observed. The accumulation of the major photosynthetic pigments, increasing of chlorophyll (a+b)/carotenoids ratio and maintaining of high level of phosphatidyl glycerol and stable content of sulphoquinovosyl diacylglycerol was revealed. The inoculation of seeds with phosphate mobilizing microorganisms had significantly improved the productivity of wheat plants in all variants with its highest indices at seeds bacterization with Rhizobium radiobacter 5006. Здійснено оцінку фізіологічного стану рослин пшениці озимої (Triticum aestivum L.), інокульованих бактеріями з фосфатмобілізувальною здатністю, за умов дефіциту доступного фосфору в ґрунті. Виявлено моделюючий вплив бактерій Paenibacillus polymyxa KB, Rhizobium radiobacter 1333 і Rhizobium radiobacter 5006 на складові ліпід-пігментного комплексу рослин, який проявляється в акумуляції основних фотосинтетично активних пігментів, зростанні співвідношення хлорофіли (a+b)/ каротиноїди, підтриманні високого рівня фосфатидилгліцеролу поряд зі стабільним вмістом сульфохіновозилдіацилгліцеролу. Передпосівна бактеризація насіння фосфатмобілізувальними бактеріями підвищувала врожайність рослин пшениці у всіх досліджуваних варіантах, з максимальним значенням при бактеризації насіння Rhizobium radiobacter 5006. Institute of Agrocultural Microbiology and Agro-industrial Manufacture of NAAS of Ukraine 2012-04-26 Article Article Рецензована Стаття application/pdf https://smic.in.ua/index.php/journal/article/view/241 10.35868/1997-3004.14.109-120 Agricultural microbiology; Vol. 14 (2012): Agriciltural microbiology; 109-120 Сільськогосподарська мікробіологія; Том 14 (2012): Сільськогосподарська мікробіологія; 109-120 1997-3004 10.35868/1997-3004.14 uk https://smic.in.ua/index.php/journal/article/view/241/334 Авторське право (c) 2012 N.B. Svietlova , O.V. Kalinichenko , O.I. Serga , V.A. Storozhenko , V.Z. Ulinets , L.M. Tokmakova , A.A. Trepach , N.Yu. Taran https://creativecommons.org/licenses/by/4.0 |
| spellingShingle | дефіцит фосфору фосфатмобілізувальні бактерії фотосинтезувальні пігменти фосфатидилглицерол сульфохіновозилдіацилгліцерол пшениця озима Свєтлова , Н.Б. Калініченко , О.В. Серга , О.І. Стороженко , В.О. Улинець , В.З. Токмакова , Л.М. Трепач , А.О. Таран , Н.Ю. КОМПОНЕНТИ ЛІПІД-ПІГМЕНТНОГО КОМПЛЕКСУ ЛИСТКІВ ПШЕНИЦІ ОЗИМОЇ ЗА ІНОКУЛЯЦІЇ МІКРООРГАНІЗМАМИ З ФОСФАТМОБІЛІЗУВАЛЬНОЮ ЗДАТНІСТЮ |
| title | КОМПОНЕНТИ ЛІПІД-ПІГМЕНТНОГО КОМПЛЕКСУ ЛИСТКІВ ПШЕНИЦІ ОЗИМОЇ ЗА ІНОКУЛЯЦІЇ МІКРООРГАНІЗМАМИ З ФОСФАТМОБІЛІЗУВАЛЬНОЮ ЗДАТНІСТЮ |
| title_alt | THE LIPID-PIGMENT COMPLEX COMPONENTS OF WINTER WHEAT LEAVES AT INOCULATION WITH MICROORGANISMS POSESSING PHOSPHATMOBILIZATION ABILITY |
| title_full | КОМПОНЕНТИ ЛІПІД-ПІГМЕНТНОГО КОМПЛЕКСУ ЛИСТКІВ ПШЕНИЦІ ОЗИМОЇ ЗА ІНОКУЛЯЦІЇ МІКРООРГАНІЗМАМИ З ФОСФАТМОБІЛІЗУВАЛЬНОЮ ЗДАТНІСТЮ |
| title_fullStr | КОМПОНЕНТИ ЛІПІД-ПІГМЕНТНОГО КОМПЛЕКСУ ЛИСТКІВ ПШЕНИЦІ ОЗИМОЇ ЗА ІНОКУЛЯЦІЇ МІКРООРГАНІЗМАМИ З ФОСФАТМОБІЛІЗУВАЛЬНОЮ ЗДАТНІСТЮ |
| title_full_unstemmed | КОМПОНЕНТИ ЛІПІД-ПІГМЕНТНОГО КОМПЛЕКСУ ЛИСТКІВ ПШЕНИЦІ ОЗИМОЇ ЗА ІНОКУЛЯЦІЇ МІКРООРГАНІЗМАМИ З ФОСФАТМОБІЛІЗУВАЛЬНОЮ ЗДАТНІСТЮ |
| title_short | КОМПОНЕНТИ ЛІПІД-ПІГМЕНТНОГО КОМПЛЕКСУ ЛИСТКІВ ПШЕНИЦІ ОЗИМОЇ ЗА ІНОКУЛЯЦІЇ МІКРООРГАНІЗМАМИ З ФОСФАТМОБІЛІЗУВАЛЬНОЮ ЗДАТНІСТЮ |
| title_sort | компоненти ліпід-пігментного комплексу листків пшениці озимої за інокуляції мікроорганізмами з фосфатмобілізувальною здатністю |
| topic | дефіцит фосфору фосфатмобілізувальні бактерії фотосинтезувальні пігменти фосфатидилглицерол сульфохіновозилдіацилгліцерол пшениця озима |
| topic_facet | phosphorus deficiency phosphatmobilizing bacteria photosynthetic pigments phosphatidyl glycerol sulphoquinovosyl diacylglycerol winter wheat дефіцит фосфору фосфатмобілізувальні бактерії фотосинтезувальні пігменти фосфатидилглицерол сульфохіновозилдіацилгліцерол пшениця озима |
| url | https://smic.in.ua/index.php/journal/article/view/241 |
| work_keys_str_mv | AT svêtlovanb thelipidpigmentcomplexcomponentsofwinterwheatleavesatinoculationwithmicroorganismsposessingphosphatmobilizationability AT kalíníčenkoov thelipidpigmentcomplexcomponentsofwinterwheatleavesatinoculationwithmicroorganismsposessingphosphatmobilizationability AT sergaoí thelipidpigmentcomplexcomponentsofwinterwheatleavesatinoculationwithmicroorganismsposessingphosphatmobilizationability AT storoženkovo thelipidpigmentcomplexcomponentsofwinterwheatleavesatinoculationwithmicroorganismsposessingphosphatmobilizationability AT ulinecʹvz thelipidpigmentcomplexcomponentsofwinterwheatleavesatinoculationwithmicroorganismsposessingphosphatmobilizationability AT tokmakovalm thelipidpigmentcomplexcomponentsofwinterwheatleavesatinoculationwithmicroorganismsposessingphosphatmobilizationability AT trepačao thelipidpigmentcomplexcomponentsofwinterwheatleavesatinoculationwithmicroorganismsposessingphosphatmobilizationability AT tarannû thelipidpigmentcomplexcomponentsofwinterwheatleavesatinoculationwithmicroorganismsposessingphosphatmobilizationability AT svêtlovanb komponentilípídpígmentnogokompleksulistkívpšenicíozimoízaínokulâcíímíkroorganízmamizfosfatmobílízuvalʹnoûzdatnístû AT kalíníčenkoov komponentilípídpígmentnogokompleksulistkívpšenicíozimoízaínokulâcíímíkroorganízmamizfosfatmobílízuvalʹnoûzdatnístû AT sergaoí komponentilípídpígmentnogokompleksulistkívpšenicíozimoízaínokulâcíímíkroorganízmamizfosfatmobílízuvalʹnoûzdatnístû AT storoženkovo komponentilípídpígmentnogokompleksulistkívpšenicíozimoízaínokulâcíímíkroorganízmamizfosfatmobílízuvalʹnoûzdatnístû AT ulinecʹvz komponentilípídpígmentnogokompleksulistkívpšenicíozimoízaínokulâcíímíkroorganízmamizfosfatmobílízuvalʹnoûzdatnístû AT tokmakovalm komponentilípídpígmentnogokompleksulistkívpšenicíozimoízaínokulâcíímíkroorganízmamizfosfatmobílízuvalʹnoûzdatnístû AT trepačao komponentilípídpígmentnogokompleksulistkívpšenicíozimoízaínokulâcíímíkroorganízmamizfosfatmobílízuvalʹnoûzdatnístû AT tarannû komponentilípídpígmentnogokompleksulistkívpšenicíozimoízaínokulâcíímíkroorganízmamizfosfatmobílízuvalʹnoûzdatnístû AT svêtlovanb lipidpigmentcomplexcomponentsofwinterwheatleavesatinoculationwithmicroorganismsposessingphosphatmobilizationability AT kalíníčenkoov lipidpigmentcomplexcomponentsofwinterwheatleavesatinoculationwithmicroorganismsposessingphosphatmobilizationability AT sergaoí lipidpigmentcomplexcomponentsofwinterwheatleavesatinoculationwithmicroorganismsposessingphosphatmobilizationability AT storoženkovo lipidpigmentcomplexcomponentsofwinterwheatleavesatinoculationwithmicroorganismsposessingphosphatmobilizationability AT ulinecʹvz lipidpigmentcomplexcomponentsofwinterwheatleavesatinoculationwithmicroorganismsposessingphosphatmobilizationability AT tokmakovalm lipidpigmentcomplexcomponentsofwinterwheatleavesatinoculationwithmicroorganismsposessingphosphatmobilizationability AT trepačao lipidpigmentcomplexcomponentsofwinterwheatleavesatinoculationwithmicroorganismsposessingphosphatmobilizationability AT tarannû lipidpigmentcomplexcomponentsofwinterwheatleavesatinoculationwithmicroorganismsposessingphosphatmobilizationability |