МІКРОБІОЛОГІЧНА ОЦІНКА ПЛЮЩЕНОГО ВОЛОГОГО ЗЕРНА КУКУРУДЗИ, ФЕРМЕНТОВАНОГО ШТАМАМИ ПРОБІОТИЧНИХ МІКРООРГАНІЗМІВ
Objective. Study the influence of Bacillus subtilis and probiotic strains of lactic acid bacteriaon microbiological processes during fermentation of rolled moist corn grain. Methods. Microbiological, zootechnical. Results. The antifungal activity of probiotic strains of Bacillus subtilis ВРТB1 and L...
Gespeichert in:
| Datum: | 2020 |
|---|---|
| Hauptverfasser: | , , |
| Format: | Artikel |
| Sprache: | Ukrainisch |
| Veröffentlicht: |
Institute of Agrocultural Microbiology and Agro-industrial Manufacture of NAAS of Ukraine
2020
|
| Schlagworte: | |
| Online Zugang: | https://smic.in.ua/index.php/journal/article/view/96 |
| Tags: |
Tag hinzufügen
Keine Tags, Fügen Sie den ersten Tag hinzu!
|
| Назва журналу: | Agriciltural microbiology |
| Завантажити файл: |  |
Institution
Agriciltural microbiology| _version_ | 1871465578070278144 |
|---|---|
| author | Кравченко, Н. О. Передерій, М. Г. Дмитрук, О. М. |
| author_facet | Кравченко, Н. О. Передерій, М. Г. Дмитрук, О. М. |
| author_institution_txt_mv | [
{
"author": "Н. О. Кравченко",
"institution": "Інститут сільськогосподарської мікробіології та агропромислового виробництва НААН"
},
{
"author": "М. Г. Передерій",
"institution": "Інститут сільськогосподарської мікробіології та агропромислового виробництва НААН"
},
{
"author": "О. М. Дмитрук",
"institution": "Інститут сільськогосподарської мікробіології та агропромислового виробництва НААН"
}
] |
| author_sort | Кравченко, Н. О. |
| baseUrl_str | https://smic.in.ua/index.php/journal/oai |
| collection | OJS |
| datestamp_date | 2026-07-22T10:10:41Z |
| description | Objective. Study the influence of Bacillus subtilis and probiotic strains of lactic acid bacteriaon microbiological processes during fermentation of rolled moist corn grain. Methods. Microbiological, zootechnical. Results. The antifungal activity of probiotic strains of Bacillus subtilis ВРТB1 and Lactobacillus plantarum KT-L18/1 against micromycetes isolated from rolled moist corngrain was studied. It has been established that B. subtilis ВРТ-B1 actively inhibits the growth ofmoulds of the genera Mucor, Rhisopus and Penicillium and yeasts of the genera Sacharomyces andTorulopsis. L. plantarum KT-L18/1 shows weak antifungal activity, pronounced antagonism is onlyobserved against micromycetes of the genus Penicillium and yeast of the genus Torulopsis. Underexposure to B. subtilis ВРТ-B1 and L. plantarum KT-L18/1, was a 3-fold increase in the number oflactic acid bacteria on a day 70 compared to the same parameter in the baseline raw material; nobutyric acid bacteria, moulds and pathogenic microorganisms were detected. When air flow isavailable for prepared moist corn, the development of micromycetes is observed within 14 days inall variants, except for inoculation of raw materials with L. plantarum KT-L18/1. At the same time,the number of micromycetes increased 2.4 times in the moist corn without the introduction of preservatives, which increases the probability of accelerated aerobic spoilage of feed and the threat ofcontamination with mycotoxins. Feed acidity both on a day 70 of preservation and on a day 14 fromthe beginning of air access in variants with the introduction of probiotic strains of B. subtilis ВРТB1 and L. plantarum KT-L18/1 and biopreservative Sil-All 4×4 was stably optimal within pH 4.0 to4.3. In a preserved rolled moist corn grain without introduction of preservative, pH of the feedincreased from 4.6 to 5.2, which is favourable for the active development of aerobic microflora.Conclusions. Making of rolled moist corn grain treated with B. subtilis ВРТ-B1 and L. plantarumKT-L18/1 ensures the establishment of optimal levels of feed acidity, prevents the intensive development of putrefactive microorganisms, micromycetes, which contributes to better aerobic stabilityof feed for 14 days after access of air compared with feed without the use of probiotic microorganisms; saturates the moist corn with probiotic microflora beneficial for animals. |
| doi_str_mv | 10.35868/1997-3004.31.72-82 |
| first_indexed | 2025-07-17T12:23:59Z |
| format | Article |
| fulltext |
72
МІКРОБІОЛОГІЯ КОРМІВ
Сільськогосподарська мікробіологія. 2020. Вип. 31. С. 72–82.
ISSN 1997-3004
https://doi.org/10.35868/1997-3004.31.72-82
УДК 579.64:579.852.11:579.864.1:633.15:636.085.52:636.085.7
МІКРОБІОЛОГІЧНА ОЦІНКА ПЛЮЩЕНОГО ВОЛОГОГО
ЗЕРНА КУКУРУДЗИ, ФЕРМЕНТОВАНОГО ШТАМАМИ
ПРОБІОТИЧНИХ МІКРООРГАНІЗМІВ
Н. О. Кравченко, М. Г. Передерій, О. М. Дмитрук
Інститут сільськогосподарської мікробіології та агропромислового виробництва НААН,
вул. Шевченка,97; м. Чернігів, 14035, Україна; e-mail: nat.probiotik@gmail.com
Мета. Дослідити вплив Bacillus subtilis та пробіотичних штамів молочнокислих бакте-
рій на мікробіологічні процеси за ферментації плющеного вологого зерна кукурудзи. Мето-
ди. Мікробіологічні, зоотехнічні. Результати. Досліджено антифунгальну активність про-
біотичних штамів Bacillus subtilis ВРТ-B1 та Lactobacillus plantarum КТ-L18/1 до мікромі-
цетів, ізольованих з вологого плющеного зерна кукурудзи. Встановлено, що B. subtilis ВРТ-B1
активно пригнічує ріст плісеневих грибів родів Mucor, Rhisopus і Penicillium та дріжджів
родів Sacharomyces та Torulopsis. L. plantarum КТ-L18/1 виявляє слабку антифунгальну ак-
тивність, виражений антагонізм спостерігається лише щодо мікроміцетів роду Penicillium
та дріжджів роду Torulopsis. За впливу B. subtilis ВРТ-B1 та L. plantarum КТ-L18/1 на 70-у
добу ферментації відзначено збільшення на три порядки чисельності молочнокислих бакте-
рій проти цього ж показника у вихідній сировині; водночас не виявлено маслянокислих бак-
терій, плісеневих грибів та патогенних мікроорганізмів. За доступу повітря до приготовле-
ного корнажу упродовж 14 діб спостерігається розвиток мікроміцетів у всіх варіантах, за
винятком інокуляції сировини штамом L. plantarum КТ-L18/1. Водночас в корнажі без вне-
сення консервантів відзначено збільшену у 2,4 раза чисельність мікроміцетів, що підвищує
вірогідність прискореного аеробного псування корму та загрозу контамінації міко-
токсинами. Кислотність корму як на 70-у добу консервування, так і на 14-у добу від почат-
ку доступу повітря у варіантах з внесенням пробіотичних штамів B. subtilis ВРТ-B1 і
L. plantarum КТ-L18/1 та біоконсерванту Sil-All 4×4 була стабільно оптимальною у межах
рН 4,0–4,3. У консервованому плющеному вологому зерні кукурудзи без внесення консерванту
рН корму підвищилася з 4,6 до 5,2, що є сприятливим для активного розвитку аеробної мік-
рофлори. Висновки. Заготівля плющеного зерна кукурудзи, обробленого штамами B. subtilis
ВРТ-B1 та L. plantarum КТ-L18/1, забезпечує встановлення оптимального рівня кислотності
корму, запобігає інтенсивному розвитку гнильних мікроорганізмів, мікроміцетів, що сприяє
кращій аеробній стабільності корму упродовж 14 діб після доступу повітря проти корму
без використання пробіотичних мікроорганізмів, насичує корнаж корисною для організму
тварин пробіотичною мікрофлорою.
Ключові слова: плющене зерно кукурудзи, консервування, біологічні консерванти, пробіо-
тичні бактерії, молочнокислі бактерії, мікроміцети.
Вступ. До сільськогосподарських куль-
тур, які мають високі кормові якості, нале-
жить кукурудза. Для годівлі тварин викорис-
товують зелену масу, початки та зерно куку-
рудзи. Одним із недорогих та перевірених
часом способів збереження урожаю, зокрема
кукурудзи, з максимально близьким до вихі-
дної рослинної сировини вмістом поживних
речовин та енергії, є його консервування.
В Україні набуває поширення порівняно
нова, перспективна технологія консервуван-
ня плющеного зерна кукурудзи на ранніх
© Н. О. Кравченко, М. Г. Передерій, О. М. Дмитрук, 2020
73
стадіях стиглості, за якої процес плющення
дозволяє покращити смакові якості зерна та
підвищити поживну цінність вуглеводного
та протеїнового комплексів [1–3].
Проте складність збереження зернової
сировини полягає в тому, що отримати її
вільною від мікроорганізмів неможливо, і
вже за вологості більше 10–15 % відбуваєть-
ся розвиток гнилісних бактерій та мікроміце-
тів, водночас значно погіршується поживна
цінність корму [4].
Новітні ресурсозберігаючі технології за-
готівлі кормів передбачають використання
високоефективних консервантів. Найбільш
економічними та екологічно безпечними є
біологічні консерванти, механізм дії яких
полягає в стимуляції ферментації та швидко-
го зниження активної кислотності корму з
метою пригнічення розвитку небажаної мік-
рофлори. До складу біологічних консерван-
тів входять одна або декілька культур мікро-
організмів, які у збагаченому поживними
речовинами середовищі, розмножуючись,
продукують біологічно активні речовини
(БАР), за рахунок яких створюється ефект
консервування сировини [5–7]. Утім, не ко-
жна культура бактерій синтезує потрібні
БАР у необхідних кількостях, тому для
спрямування мікробіологічних процесів за
ферментації зернової маси в бажаному на-
прямку доцільно проводити постійний по-
шук нових, метаболічно активних штамів
бактерій.
Аналіз останніх досліджень і публіка-
цій. Поширенню технології консервування
плющеного зерна кукурудзи на ранніх стаді-
ях стиглості в Україні, Білорусі та Росії
сприяв світовий досвід, насамперед Фінлян-
дії та Швеції. В процесі заготівлі плющеної
кукурудзи використовується зерно вологістю
в межах 25–40 %. За таких умов зерно по-
требує герметичного збереження. Для плю-
щення використовуються спеціальні валь-
цьові млини, які дозволяють плющити зерно,
рівномірно розподіляти консервант, запако-
вувати готову масу у герметичну вакуум-
упаковку (поліетиленові рукави) [8].
Недостатні ущільнення та герметизація у
момент закладання для ферментації плюще-
ного зерна кукурудзи на ранніх стадіях стиг-
лості сприяють контакту з повітрям та спри-
чиняють погіршення якості корнажу. Доступ
повітря стимулює розмноження насамперед
дріжджів, які руйнують молочну кислоту,
рослинний цукор тощо, спричиняючи виді-
лення тепла та самозігрівання корму, який
стає аеробно нестабільним. За тривалого
впливу повітря до руйнування молочної кис-
лоти долучаються і плісеневі гриби, синте-
зуючи небезпечні мікотоксини. Тільки під
час виймання корму для годівлі тварин, за
оцінками спеціалістів, від аеробного псуван-
ня щорічно втрачається близько 10 % сухої
речовини [9]. Тому одним з ключових моме-
нтів технології консервування зерна кукуру-
дзи є застосування біологічних консервантів,
здатних знизити цей показник.
Класичними мікроорганізмами, які ви-
користовуються як основа біоконсервантів, є
молочнокислі бактерії. Консерванти на осно-
ві гомоферментативних молочнокислих бак-
терій покращують активну кислотність та
ферментацію корму шляхом продукування
великої кількості органічних кислот (у селе-
кціонованих гомоферментативних штамів
молочнокислих бактерій ефективність збро-
джування рослинних цукрів до молочної ки-
слоти може сягати 99 %, тоді як у природних
штамів не перевищує 60–70 %), за рахунок
чого регулюються процеси пригнічення роз-
витку гнильних та маслянокислих бактерій
[10; 11]. Окремими дослідженнями показано,
що використання лише гомоферментативних
бактерій покращує якість ферментації (хоча
корнаж у такому разі піддається аеробному
псуванню під час виймання та згодовуван-
ня), тоді як гетероферментативні бактерії
більшою мірою сприяють аеробній стійкості
корму за доступу повітря [12; 13]. Для цього
широко застосовують бактерії Lactobacillus
buchneri, які перешкоджають процесам аеро-
бного гниття у кормі, за рахунок синтезу
низки органічних кислот, зокрема оцтової,
що пригнічує ріст мікроміцетів, проте силос
із підвищеним вмістом оцтової кислоти має
невисокі смакові якості [10].
Представники бактерій виду B. subtilis,
синтезуючи низку біологічно активних речо-
вин (органічних кислот, ферментів, анти-
біотиків, зокрема з антифунгальною дією),
здатні забезпечувати консервуючий ефект
практично у будь-якій рослинній сировині
[14–16].
Як свідчать окремі публікації, сьогодні
підвищеним попитом користуються багато-
компонентні біоконсерванти, підвищення
ISSN 1997-3004 Сільськогосподарська мікробіологія. 2020. Вип. 31.
74
ефективності яких досягається за рахунок
комбінації видів та штамів бактерій, що до-
зволяє вирішувати низку завдань одночасно
[17; 18].
Мета досліджень: Визначити вплив
пробіотичних штамів B. subtilis та молочно-
кислих бактерій на мікробіологічні процеси
за ферментації плющеного вологого зерна
кукурудзи.
Матеріали та методи досліджень.
Об’єкти досліджень. Штами пробіотичних
мікроорганізмів B. subtilis ВРТ-В1 та L. plan-
tarum КТ-L18/1 виділені із шлунково-кишко-
вого тракту молодняку великої рогатої худо-
би, депоновані у Депозитарії Державного на-
уково-контрольного інституту біотехнології і
штамів мікроорганізмів (м. Київ) та запатен-
товані [19; 20].
Для отримання маточних культур B. sub-
tilis ВРТ-В1 культивували на стандартних
живильних середовищах — м’ясо-пептон-
ному агарі (МПА) та м’ясо-пептонному бу-
льйоні (МПБ) упродовж 24 годин за (37 ±
± 0,5) °С, бактерії L. plantarum КТ-L18/1 —
на рідкому живильному середовищі де Мана
(MRS) [21] упродовж 7 діб у термостаті за
(37 ± 0,5) °С. Маточні культури B. subtilis
ВРТ-В1 культивували на напівсинтетичному
поживному середовищі [22] впродовж 24 го-
дин за (37 ± 0,5) °С, а L. plantarum КТ-L18/1 —
на поживному середовищі, що містило 5 %
пшеничних висівок, 2 % меляси та 0,5 %
крейди [23].
Визначення антифунгальної активності.
Як тест-культури використовували мікромі-
цети родів Penicillium, Fusarium, Rhisopus,
Gliocladium, Mucor та дріжджі родів Candida,
Torulopsis, Sacharomyces, виділені з консер-
вованого плющеного зерна кукурудзи спів-
робітниками лабораторії пробіотиків Інсти-
туту сільськогосподарської мікробіології та
агропромислового виробництва НААН та
ідентифіковані доктором біологічних наук
Є. П. Копиловим.
Антифунгальну активність B. subtilis
ВРТ-В1 досліджували методом відстрочених
посівів (перпендикулярних штрихів) [24]. У
чашки Петрі з МПА штрихом наносили
B. subtilis ВРТ-В1, після інкубації в термос-
таті за 37 ºС упродовж 24–48 годин перпен-
дикулярно до нього на відстані уколом вно-
сили тест-культури мікроміцетів. Культури
інкубували упродовж 10 діб за температури
28 ºС. Контрольними варіантами слугували
посіви культури мікроміцетів без B. subtilis
ВРТ-В1. Ступінь інгібування росту плісене-
вих грибів розраховували за формулою Аб-
бота.
Визначення антифунгальної активності
L. plantarum КТ-L18/1 проводили дифузним
методом агарових блоків [25]. Молочнокислі
бактерії висівали в чашки Петрі глибинним
способом в агаризоване середовище MRS,
потім інкубували за температури 37 °С впро-
довж 5 діб. Стерильним пробочним свердлом
вирізали агаровий блок з накопиченою куль-
турою молочнокислих бактерій та встанов-
лювали його в іншій чашці Петрі на поверхні
агарового середовища, в центр якого уколом
вносили міцелій мікроміцетів. Чашки витри-
мували впродовж 12 годин в умовах холоди-
льника для дифузії інгібіторних сполук з
блока в товщу агару. Подальше інкубування
проводили за температури 28 °С впродовж
10 діб. Ступінь антифунгальної активності
досліджуваних молочнокислих бактерій ви-
значали за величиною (в мм) зони інгібуван-
ня росту мікроміцетів навколо агарового
блоку.
Постановка досліду з консервування
плющеного зерна кукурудзи. У досліді вико-
ристовували кукурудзу, вирощену на базі
МТФ «Красносільська» СТОВ «Надія» (Чер-
нігівська область). Плющення, закладання в
поліетиленові рукави та обробку зерна куку-
рудзи біоконсервантами здійснювали за до-
помогою установки «Мурска». Для консер-
вування у поліетиленові рукави було закла-
дено 4 варіанти плющеного вологого зерна
кукурудзи по 40 т кожен:
варіант 1 — без застосування мікроорга-
нізмів;
варіант 2 — обробка сировини біоконсе-
рвантом Sil-All 4×4;
варіант 3 — інокуляція зерна B. subtilis
ВРТ-В1;
варіант 4 — інокуляція зерна L. planta-
rum КТ-L18/1.
Обробку зерна кукурудзи про-
біотичними штамами проводили з розрахун-
ку 1 л на 10 т сировини, а біоконсервантом
Sil-All 4×4 — згідно з нормами, рекомендо-
ваними виробником (5 г препарату на 1 т си-
ровини).
Період ферментації плющеного вологого
зерна кукурудзи тривав 70 діб. Проби плю-
ISSN 1997-3004 Сільськогосподарська мікробіологія. 2020. Вип. 31.
75
щеного зерна кукурудзи для проведення зоо-
технічних та мікробіологічних досліджень
відбирали до початку закладання сировини,
на 70-у добу консервування та на 14-у добу
після відкриття корму [26].
Зоотехнічні дослідження. Визначення
активної кислотності (рН) проводили шля-
хом потенціометричного вимірювання акти-
вності водневих іонів на рН-метрі (рН-150
МИ), кількість вільних та зв’язаних органіч-
них кислот визначали за методом Леппера-
Фліга [26].
Мікробіологічні дослідження. Середні
проби досліджуваного ферментованого зерна
кукурудзи ретельно перемішували та готува-
ли з них однорідні суспензії за використання
стерильної питної воді. Чисельність мікрос-
копічних грибів та дріжджів визначали на
середовищі Сабуро шляхом культивування
поверхневих посівів суспензій корму впро-
довж 3–4 діб (за необхідності — 7–8 діб) за
температури (28 ± 0,5) °С. Чисельність клос-
тридій встановлювали на залізо-сульфітному
агарі за кількістю чорних колоній, що вирос-
ли у глибині середовища культивування уп-
родовж 24 год. за (37 ± 0,5) °С. Чисельність
бактерії кишкової групи відмічали за куль-
тивування проб корму упродовж доби на се-
редовищі Ендо за температури (37 ± 0,5) °С.
Чисельність молочнокислих бактерій визна-
чали на середовищі де Мана (MRS) та капус-
тяному агарі з крейдою, підраховуючи кіль-
кість колоній через 2–7 діб культивування
за (37 ± 0,5) °С [4].
Характеристика вихідної сировини. За
мікробіологічними дослідженнями сировини
встановлено: чисельність молочнокислих ба-
ктерій — (5,0 ± 0,3) × 106 КУО/г, кількість
мікроміцетів — (7,5 ± 0,3) × 103 КУО/г, мас-
лянокислих бактерій (клостридій) та пато-
генних мікроорганізмів не виявлено.
Отримані результати статистично оброб-
лено з використанням пакета прикладних
програм Microsoft Office та представлено
як середні значення та їх похибки (М ± m)
[27].
Результати та їх обговорення. На по-
верхні плющеного зерна кукурудзи перед
початком консервування нами виявлено плі-
сеневі гриби родів Penicillium, Fusarium, Rhi-
sopus, Gliocladium, Mucor та дріжджі родів
Candida, Torulopsis, Sacharomyces.
Встановлено, що B. subtilis ВРТ-B1 акти-
вно пригнічує ріст наявних у вологому зерні
плісеневих грибів. Найвищий рівень анти-
фунгальної активності штам-антагоніст ви-
явив до тест-культур мікроміцетів родів
Mucor, Rhisopus та Penicillium (табл. 1). У
L. plantarum КТ-L18/1 виявлено слабку ан-
тифунгальну активність щодо таких мікро-
міцетів як Fusarium, Rhisopus, Gliocladium,
Mucor. Водночас L. plantarum КТ-L18/1 про-
явив високу антифунгальну активність щодо
мікроміцетів роду Penicillium.
Встановлено, що досліджуваний штам
B. subtilis ВРТ-B1 пригнічує ріст тест-куль-
тур дріжджів (табл. 2). Найчутливішими до
цього штаму виявились ізоляти дріжджів ро-
дів Sacharomyces та Torulopsis. Значно нижчу
антифунгальну активність до дріжджів родів
Sacharomyces та Candida показав штам
L. plantarum КТ-L18/1. Водночас штам про-
явив виражений антагонізм до ізолятів дріж-
джів роду Torulopsis, зони затримки росту
яких виявилися в 1,2 раза більшими проти
відповідних показників антифунгальної ак-
тивності штаму B. subtilis ВРТ-B1.
Отже, досліджуваний штам B. subtilis ви-
явив виражений антагонізм до плісеневих
грибів та дріжджів, які виділяються з плю-
щеного зерна кукурудзи, що є закономірним,
оскільки, за літературними джерелами [28],
бактерії цього виду здатні продукувати низ-
ку антифунгальних речовин — токсиміцин,
Таблиця 1. Антифунгальна активність пробіотичних штамів бактерій до плісеневих
грибів (n = 3)
Штами-антагоністи
Ступінь інгібування росту тест-грибів, %
Penicillium Fusarium Rhisopus Gliocladium Mucor
Зони затримки росту тест-культур плісеневих грибів, мм
B. subtilis ВРТ-B1 93,1 ± 0,4 84,1 ± 4,8 89,0 ± 4,2 90,5 ± 2,9 93,3 ± 5,0
L. plantarum КТ-18/1 17,1 ± 6,9 2,0 ± 0,3 2,5 ± 0,1 1,8 ± 0,1 2,3 ± 0,2
Примітка. У табл. 1–4 рівень вірогідності різниці з контролем — Р ≤ 0,05.
ISSN 1997-3004 Сільськогосподарська мікробіологія. 2020. Вип. 31.
76
Таблиця 2. Антифунгальна активність пробіотичних штамів бактерій до дріжд-
жів (n = 3)
Штами-антагоністи
Зони затримки росту тест-культур дріжджів, мм
Неспороутворюючі дріжджі Спороутворюючі дріжджі
Candida Torulopsis Sacharomyces
B. subtilis ВРТ-B1 13 ± 1 24 ± 1 28 ± 1
L. plantarum КТ-L18/1 0 30 ± 3 12 ± 2
мікобацилін, ітурін тощо. Нами виявлено
антифунгальну активність L. plantarum КТ-
L18/1, антагонізм якого до мікроміцетів,
скоріше за все, пов’язаний із синтезом бак-
теріоцинів, як-от лактолін, оскільки молоч-
нокислі бактерії виду L. plantarum є гомо-
ферментативними та синтезують переважно
молочну кислоту, яка не має антифунгаль-
ної дії [29].
Отримані результати є підставою для до-
слідження впливу пробіотичних штамів
B. subtilis ВРТ-B1 та L. plantarum КТ-L18/1
на мікробіологічні процеси при консерву-
ванні плющеного зерна кукурудзи, оскільки
за умов низької вологості анаеробне середо-
вище створюється лише через 1–2 дні, що
сприяє розвитку мікроміцетів та запуску
процесу аеробного псування корму. Як відо-
мо, найбільш схильними до аеробного псу-
вання є корми з невисоким забезпеченням
цукру та значним вмістом сухої речовини (до
такої сировини належить плющене зерно ку-
курудзи).
За порівняльної оцінки мікробіологічних
показників у варіантах плющеного зерна ку-
курудзи низької вологості, обробленого пе-
ред консервуванням пробіотичними бактері-
ями B. subtilis ВРТ-В1, L. plantarum КТ-L18/1
та біоконсервантом Sil-All 4×4, встановлено,
що на 70-у добу ферментації в зразках усіх
варіантів чисельність молочнокислих бакте-
рій збільшилася на 3 порядки проти цього ж
показника у вихідній сировині та на 2 поряд-
ки щодо варіанту 1 (без обробки), водночас не
виявлено маслянокислих бактерій, мікроміце-
тів та патогенних мікроорганізмів (табл. 3).
Через 14 діб після відкриття корму та
доступу повітря до плющеного зерна куку-
рудзи кількість молочнокислих бактерій зме-
ншилась у всіх варіантах на 1 порядок. Най-
меншу їх кількість відзначено у контрольно-
му варіанті: 5 × 106 КУО/г проти (1,8–2,5) ×
108 КУО/г у дослідних варіантах. Масляно-
кислих та патогенних бактерій у жодному із
варіантів консервованого плющеного зерна
кукурудзи не виявлено. Доступ повітря до
консервованого зерна кукурудзи упродовж
14 діб сприяв початку розвитку мікроміцетів
у всіх варіантах, окрім дослідного з оброб-
кою зерна L. plantarum КТ-L18/1. Чисель-
ність грибів у варіанті з B. subtilis ВРТ-В1
становила 3,7 × 102 КУО/г, тоді як за викори-
стання біоконсерванту Sil-All 4×4 показники
були на рівні 7,5 × 102 КУО/г. У контролі
відмічено у 2,4 раза збільшену їх кількість,
що свідчить про тенденцію до прискорення
аеробного псування корму та загрозу конта-
мінації мікотоксинами (табл. 4).
Важливим для оцінки факторів впливу
на ефективність процесів бродіння та збере-
Таблиця 3. Вплив пробіотичних штамів бактерій на спрямованість мікробіологічних
процесів у консервованому плющеному вологому зерні кукурудзи на 70-у добу консервування
Показники
Варіанти
Молочнокислі
бактерії, КУО/г
Мікро-
міцети,
КУО/г
E. coli,
КУО/г
Salmo-
nella spp.,
КУО/г
Клост-
ридії,
КУО/г
Без використання мікроорганізмів,
контроль (4,0 ± 0,1) × 107 0 0 0 0
Біоконсервант Sil-All 4×4 (2,4 ± 0,2) × 109 0 0 0 0
B. subtilis ВРТ-В1 (2,3 ± 0,3) × 109 0 0 0 0
L. plantarum КТ-L18/1 (2,4 ± 0,2) × 109 0 0 0 0
ISSN 1997-3004 Сільськогосподарська мікробіологія. 2020. Вип. 31.
77
Таблиця 4. Вплив пробіотичних штамів бактерій на спрямованість мікробіологічних
процесів у консервованому плющеному зерні кукурудзи на 14-у добу після відкриття корму
Показник
Варіанти
Молочнокислі
бактерії, КУО/г
Мікроміцети,
КУО/г
E. coli,
КУО/г
Salmo-
nella spp.,
КУО/г
Клост-
ридії,
КУО/г
Без використання
мікроорганізмів, контроль (5,0 ± 0,3) × 106 (9,1 ± 0,2) × 102 0 0 0
Sil-All 4×4 (2,5 ± 0,4) × 108 (7,5 ± 0,3) × 102 0 0 0
B. subtilis ВРТ-В1 (1,8 ± 0,2) × 108 (3,7 ± 0,2) × 102 0 0 0
L. plantarum КТ-L18/1 (2,5 ± 0,3) × 108 0 0 0 0
ження консервованого плющеного зерна ку-
курудзи поряд з мікробіологічними показни-
ками є дослідження динаміки зниження рів-
ня кислотності. Зміна балансу розвитку
мікроорганізмів, учасників процесу консер-
вування, в бік накопичення молочнокислих
бактерій сприяє накопиченню молочної кис-
лоти та частково оцтової — головних чинни-
ків зниження рН корму та створення неспри-
ятливих умов для гнильних мікроорганізмів.
У наших експериментах встановлено, що
на 70-у добу консервування плющеного во-
лого зерна кукурудзи за впливу біологічних
консервантів кислотність корму є оптималь-
ною — у межах рН 4,0–4,3, вміст молочної
кислоти є у 4–5 разів більшим, ніж у контро-
льному варіанті (рис. 1, 2).
На 14-у добу після відкриття корму кис-
лотність у варіанті з обробкою сировини Sil-
All 4×4 та дослідних варіантах була стабіль-
ною, на відміну від показників контрольного
варіанту, де рН корму за цей час підвищила-
ся з 4,6 до 5,2, що є свідченням активного
розвитку аеробної мікрофлори (рис. 2).
Висновки. У ферментованому вологому
зерні кукурудзи, заготовленому без застосу-
вання консервантів, під час розкриття для
згодовування тваринам створюються спри-
ятливі умови для аеробного псування корму.
Це пов’язано з тим, що за доступу повітря у
кормі швидко зростає чисельність мікромі-
цетів та інших аеробних мікроорганізмів, що
призводить до деградації поживних речовин.
Мікроміцети використовують органічні кис-
лоти як джерело живлення, знижуючи тим
самим кислотність корму та стимулюючи
ріст аеробних гнильних бактерій. Тому для
підвищення аеробної стабільності треба ви-
користовувати технологічні прийоми, спря-
мовані на пригнічення активного розвитку
К 1 — контроль; К 2 — обробка Sil-All 4×4; Д 1 — обробка B. subtilis ВРТ-В1; Д 2 — обробка
L. plantarum КТ-L18/1.
Рис. 1. Вміст молочної кислоти у консервованому плющеному вологому зерні кукурудзи
на 70-у добу ферментації та на 14-у добу після відкриття корму.
0,0
0,5
0,4
2,5
2,02,1
1,3
1,9
0,7
0,0
0,5
1,0
1,5
2,0
2,5
3,0
1-а доба 70-а доба 14-а доба після відкриття
К 1
К 2
Д 1
Д 2
ISSN 1997-3004 Сільськогосподарська мікробіологія. 2020. Вип. 31.
В
м
іс
т
м
ол
оч
но
ї к
ис
ло
ти
, %
78
К 1 — контроль; К 2 — обробка Sil-All 4×4; Д 1 — обробка B. subtilis ВРТ-В1; Д 2 — обробка
L. plantarum КТ-L18/1.
Рис. 2. Значення рН у консервованому плющеному вологому зерні кукурудзи на 70-у добу
ферментації та на 14-у добу після відкриття корму.
мікроміцетів. Заготівля плющеного зерна ку-
курудзи з пробіотичними штамами B. subtilis
ВРТ-B1 та L. plantarum КТ-L18/1, що мають
антифунгальні властивості, запобігає інтен-
сивному розвитку мікроміцетів, гнильних
мікроорганізмів і сприяє кращій аеробній
стабільності корму упродовж 14 діб після
доступу повітря під час відкриття корму.
ЦИТОВАНА ЛІТЕРАТУРА
1. Кулик М. Ф., Петриченко В. Ф., Ібатул-
лін І. І., Костенко В. М., Скоромна О. І. Вироб-
ництво, зберігання і використання кормів. Він-
ниця : Нова книга, 2005. 472 с.
2. Голохвастова С. И. Консервирование плю-
щеного зерна — энергосберегающая технология.
Животноводство России. 2000. № 4. С. 23–24.
3. Gunn P. J., Buckmaster D. R., Lemena-
ger R. P., Van Emon M. L., Claeys M. C., Lake S. L.
Preservation characteristics of modified wet distill-
ers grains with solubles stored with marginal-quality
feedstuffs in laboratory-scale mini silos. Prof. Anim.
Sci. 2013. № 29. Р. 671–676. https://doi.org/
10.15232/S1080-7446(15)30299-0
4. Соляник Т. В., Гласкович М. А. Микро-
биология. Микробиология кормов животного и
растительного происхождения: курс лекций. Гор-
ки : БГСХА, 2014. 76 с.
5. Queiroz O. C. M., Arriola K. G., P. Dani-
el J. L., Adesogan A. T. Effects of 8 chemical and
bacterial additives on the quality of corn silage.
Journal of Dairy Science. 2013. 96(9). P. 5836–
5843. doi: https://doi.org/10.3168/jds.2013-6691
6. Kleinschmit D. H., Schmidt R. J., Kung L. Jr.
The effects of various antifungal additives on the
fermentation and aerobic stability of corn silage.
Journal of Dairy Science. 2005. 88(6). P. 2130–39.
doi: http://dx.doi.org/10.3168/jds.S0022-0302(05)
72889-7
7. Rodríguez A. A., Acosta Y., Rivera V. &
Randel P. F. Effect of a microbial inoculant on
fermentation characteristics, aerobic stability, intake,
and digestibility of corn silage by rams. Revista
Colombiana de Ciencias Pecuarias. 2016. 29(2).
P. 108–118. doi: https://dx.doi.org/10.17533/udea.
rccp.v29n2a04
8. Косолапова Е. В. Анализ технологических
приёмов заготовки и хранения консервированого
плющеного зерна. Вестник НГИЭИ. 2014. № 4–
35. С. 71–77.
9. Brüning D., Gerlach K., Weiss K. & Süde-
kum K.‐H. Effect of compaction, delayed sealing
and aerobic exposure on maize silage quality and on
formation of volatile organic compounds. Grass and
Forage Science. 2017. 73. P. 53–66. doi: https://
doi.org/10.1111/gfs.12288
10. da Silva N. C., Nascimento C. F., Nasci-
mento F. A., de Resende F. D., Daniel J. L. P., Si-
queira G. R. Fermentation and aerobic stability of
rehydrated corn grain silage treated with different
doses of Lactobacillus buchneri or a combination of
Lactobacillus plantarum and Pediococcus acidi-
lactici. Journal of Dairy Science. 2018. 101(5).
P. 4158–4167. doi: https://doi.org/10.3168/jds.2017-
13797
4,6
4,8
4,0 4,0
4,2 4,2
4,3 4,3
3,6
3,8
4,0
4,2
4,4
4,6
4,8
5,0
70-а доба 14-а доба після відкриття
рН К 1
К 2
Д 1
Д 2
ISSN 1997-3004 Сільськогосподарська мікробіологія. 2020. Вип. 31.
79
11. Li X., Xu W., Yang J. et al. Effects of
applying lactic acid bacteria to the fermentation on a
mixture of corn steep liquor and air-dried rice straw.
Animal Nutrition. 2016. 2(3). P. 229–33. doi:
https://doi.org/10.1016/j.aninu.2016.04.003
12. Rahman N. A., Abd Halim M. R., Maha-
wi N., Hasnudin H., Al-Obaidi J. R., Abdullah N.
Determination of the use of Lactobacillus plantarum
and Propionibacterium freudenreichii application on
fermentation profile and chemical composition of
corn silage. BioMed Research International. 2017.
Р. 1–8. doi: https://doi.org/10.1155/2017/2038062
13. Rodrigues P. H. M., Gomes R. d. C., Me-
yer P. M., Borgatti L. M. O., Franco F. M. J., Go-
doy G. L. A. D. Effects of microbial inoculants and
amino acid production by-product on fermentation
and chemical composition of sugarcane silages.
Revista Brasileira de Zootecnia. 2012. 41(6).
Р. 1394–1400. doi: http://dx.doi.org/10.1590/S1516-
35982012000600011
14. Победнов Ю. А., Мамаев А. А. Эффекти-
вность применения бактерий вида Bacillus sub-
tilis при силосовании и сенажировании трав. Ве-
теринарная патология. 2005. № 1. С. 90–96.
15. Кравченко Н. О., Передерій М. Г. Анта-
гоністична активність штамів бактерій Bacillus
subtilis, перспективних для створення консерван-
тів вологого зерна плющеної кукурудзи. Сільсь-
когосподарська мікробіологія. 2017. Вип. 26.
С. 49–54.
16. Кравченко Н. О., Чумаченко С. П., Пере-
дерій М. Г. Консервуюча здатність Bacillus subti-
lis при заготівлі плющенного вологого зерна
кукурудзи. Сільськогосподарська мікробіологія.
2017. Вип. 25. С. 57–62.
17. Queiroz O. C. M., Adesogan A. T., Arrio-
la K. G., Queiroz M. F. S. Effect of a dual-purpose
inoculant on the quality and nutrient losses from
corn silage produced in farm-scale silos. Journal of
Dairy Science. 2012. Vol. 95, № 6. Р. 3354–3362.
18. Балпанов Д. С., Тен О. А., Есепбай Г. Е.,
Барбасова С. К. Технология получения закваски
для силосования грубостебельчатых кормов с
использованием молочнокислых и пропионово-
кислых бактерий. Биотехнология. Теория и
практика. 2014. № 1. С. 79–84.
19. Штам бактерій Bacillus subtilis для виго-
товлення пробіотичних препаратів для тварин та
мікробних препаратів для кормовиробництва:
пат. 116292 Україна. МПК С12N 1/20, С12R 1/125,
Н. О. Кравченко, О. М. Дмитрук, В. О. Агеєв,
Л. В. Божок; заявник і патентовласник: Інститут
сільськогосподарської мікробіології та агропро-
мислового виробництва НААН. № 2016 06595;
заявл. 16.06.2016; опубл. 26.02.2018, Бюл № 4.
20. Штам бактерій Lactobacillus plantarum
для виготовлення пробіотичних препаратів та мі-
кробних консервантів для кормовирбництва: пат.
115938 Україна. МПК С12N 1/20, А61К 35/744,
Н. О. Кравченко, О. М. Дмитрук, В. О. Агеєв,
Л. В. Божок; заявник і патентовласник: Інститут
сільськогосподарської мікробіології та агропро-
мислового виробництва НААН. № 2016 06596;
заявл. 16.06.2016; опубл. 10.01.2018, Бюл № 1.
21. de Mann J. C., Rogosa M., Sharpe M. E.
A medium for the cultivation of lactobacilli. J. Appl.
bacteriology. 1960. 23 (1). Р. 130–135. https://doi.org/
10.1111/j.1365-2672.1960.tb00188.x
22. Спосіб виготовлення пробіотичного пре-
парату бацилярного субтилісу: пат. на кор. мод.
66420 Україна. МПК А61К 35/66, С. В. Дерев’ян-
ко, Г. М. Дяченко, Л. В. Божок, В. О. Агеєв,
О. І. Прокопенко; заявник і патентовласник:
Інститут сільськогосподарської мікробіології
та агропромислового виробництва НААН.
№ 201101195 заявл. 03.02.2011; опубл. 10.01.2012,
Бюл. № 1.
23. Оследкин Ю. С., Васин А. Д., Шушуно-
ва А. В. Закваска для силосования кормов. Вете-
ринария. 1981. № 9. С. 65–66.
24. Егоров Н. С. Микробы-антагонисты и
биологические методы определения антибиоти-
ческой активности. М. : Высш. Школа, 1965.
211с.
25. Егоров Н. С. Основы учения об антибио-
тиках: учеб. для студ. биол. спец. ун-тов. 4-е изд.,
перераб. и доп. М. : Высш. шк., 1986. 448 с.
26. Петухова Е. А., Бессарабова Р. Ф., Хале-
нева Л. Д., Антонова О. А. Зоотехнический ана-
лиз кормов 2-е изд., доп. и перераб. М. : Агро-
промиздат, 1989. 239 c.
27. Коросов А. В., Коросов А. В., Горбач В. В.
Компьютерная обработка биологических дан-
ных. Петрозаводск : ПетрГУ, 2016. 96 с.
28. Смирнов В. В., Резник С. Р., Василевс-
кая И. А. Спорообразующие аеробные бакте-
рии — продуценты биологически активних ве-
ществ. К. : Наукова думка, 1982. 278 с.
29. Квасников Е. И., Нестеренко О. А. Мо-
лочнокислые бактерии и пути их использования.
1975. 392 с.
Отримано 17.06.2020
ISSN 1997-3004 Сільськогосподарська мікробіологія. 2020. Вип. 31.
80
https://doi.org/10.35868/1997-3004.31.72-82
UDC 579.64:579.852.11:579.864.1:633.15:636.085.52:636.085.7
MICROBIOLOGICAL EVALUATION OF ROLLED MOIST CORN GRAIN
FERMENTED BY PROBIOTIC MICROORGANISM STRAINS
N. О. Kravchenko, М. H. Perederii, О. M. Dmytruk
Institute of Agricultural Microbiology and Agroindustrial Manufacture, NAAS, Chernihiv
e-mail: nat.probiotik@gmail.com
Objective. Study the influence of Bacillus subtilis and probiotic strains of lactic acid bacteria
on microbiological processes during fermentation of rolled moist corn grain. Methods. Microbio-
logical, zootechnical. Results. The antifungal activity of probiotic strains of Bacillus subtilis ВРТ-
B1 and Lactobacillus plantarum KT-L18/1 against micromycetes isolated from rolled moist corn
grain was studied. It has been established that B. subtilis ВРТ-B1 actively inhibits the growth of
moulds of the genera Mucor, Rhisopus and Penicillium and yeasts of the genera Sacharomyces and
Torulopsis. L. plantarum KT-L18/1 shows weak antifungal activity, pronounced antagonism is only
observed against micromycetes of the genus Penicillium and yeast of the genus Torulopsis. Under
exposure to B. subtilis ВРТ-B1 and L. plantarum KT-L18/1, was a 3-fold increase in the number of
lactic acid bacteria on a day 70 compared to the same parameter in the baseline raw material; no
butyric acid bacteria, moulds and pathogenic microorganisms were detected. When air flow is
available for prepared moist corn, the development of micromycetes is observed within 14 days in
all variants, except for inoculation of raw materials with L. plantarum KT-L18/1. At the same time,
the number of micromycetes increased 2.4 times in the moist corn without the introduction of pre-
servatives, which increases the probability of accelerated aerobic spoilage of feed and the threat of
contamination with mycotoxins. Feed acidity both on a day 70 of preservation and on a day 14 from
the beginning of air access in variants with the introduction of probiotic strains of B. subtilis ВРТ-
B1 and L. plantarum KT-L18/1 and biopreservative Sil-All 4×4 was stably optimal within pH 4.0 to
4.3. In a preserved rolled moist corn grain without introduction of preservative, pH of the feed
increased from 4.6 to 5.2, which is favourable for the active development of aerobic microflora.
Conclusions. Making of rolled moist corn grain treated with B. subtilis ВРТ-B1 and L. plantarum
KT-L18/1 ensures the establishment of optimal levels of feed acidity, prevents the intensive devel-
opment of putrefactive microorganisms, micromycetes, which contributes to better aerobic stability
of feed for 14 days after access of air compared with feed without the use of probiotic microorgan-
isms; saturates the moist corn with probiotic microflora beneficial for animals.
Key words: rolled corn grain, preservation, biological preservatives, probiotic bacteria, lactic
acid bacteria, micromycetes.
REFERENCES
1. Kulyk, M. F., Petrychenko, V. F., Ibatul-
lin, I. I., Kostenko, V. M., Skoromna, O. I. (2005).
Vyrobnyctvo, zberigannja i vykorystannja kormiv
[Production, storage and use of feed]. Vinnycja: No-
va knyha [in Ukrainian].
2. Golohvastova, S. I. (2000). Konservirovanє
pljushhenogo zerna — jenergosberegajushhaja
tehnologija [Rolled Grain Canning — Energy Sav-
ing Technology]. Zhivotnovodstvo Rossii — Animal
Husbandry in Russia [in Russian].
3. Gunn, P. J., Buckmaster, D. R., Lemena-
ger, R. P., Van Emon, M. L., Claeys, M. C. & La-
ke, S. L. (2013). Preservation characteristics of mod-
ified wet distillers grains with solubles stored with
marginal-quality feedstuffs in laboratory-scale mini
silos. Prof. Anim. Sci., 29, 671–676. https://doi.org/
10.15232/S1080-7446(15)30299-0
4. Soljanyk, T. V., Glaskovych, M. A. (2014).
Mykrobyologyja. Mykrobyologyja kormov zhyvotno-
go y rastytel'nogo proyshozhdenyja [Microbiology.
Microbiology of animal and plant feed]. Gorky:
BGSHA [in Russian].
5. Queiroz, O. C. M., Arriola, K. G., P. Dani-
el, J. L., & Adesogan, A. T. (2013). Effects of 8
chemical and bacterial additives on the quality of
corn silage. Journal of Dairy Science, 96(9), 5836–
5843. https://doi.org/10.3168/jds.2013-6691
6. Kleinschmit, D. H., Schmidt, R. J., &
L. Kung, Jr. (2005). The effects of various antifun-
gal additives on the fermentation and aerobic stabil-
ISSN 1997-3004 Сільськогосподарська мікробіологія. 2020. Вип. 31.
81
ity of corn silage. Journal of Dairy Science, 88(6),
2130–2139. http://dx.doi.org/10.3168/jds.S0022-
0302(05)72889-7
7. Rodríguez, A. A., Acosta, Y., Rivera, V., &
Randel, P. F. (2016). Effect of a microbial inoculant
on fermentation characteristics, aerobic stability, in-
take, and digestibility of corn silage by rams. Revista
Colombiana de Ciencias Pecuarias, 29(2), 108–118.
https://dx.doi.org/10.17533/udea.rccp.v29n2a04
8. Kosolapova, E. V. (2014). Analiz tehnolog-
icheskih priemov zagotovki i hranenija konserviro-
vanogo pljushhenogo zerna [Analysis of technologi-
cal methods of harvesting and storage of canned
rolled grain]. Vestnik NGIJeI — Herald NGIEI,
4–35, 71–77 [in Russian].
9. Brüning, D., Gerlach, K., Weiss, K., & Süde-
kum, K.‐H. (2017). Effect of compaction, delayed
sealing and aerobic exposure on maize silage quality
and on formation of volatile organic compounds.
Grass and Forage Science, 73, 53–66. https://doi.org/
10.1111/gfs.12288
10. da Silva, N. C., Nascimento, C. F., Nasci-
mento, F. A., de Resende, F. D., Daniel, J. L. P., &
Siqueira, G. R. (2018). Fermentation and aerobic
stability of rehydrated corn grain silage treated with
different doses of Lactobacillus buchneri or a com-
bination of Lactobacillus plantarum and Pediococcus
acidilactici. Journal of Dairy Science, 101(5), 4158–
4167. https://doi.org/10.3168/jds.2017-13797
11. Li, X., Xu W., & Yang, J. (2016). Effects of
applying lactic acid bacteria to the fermentation on a
mixture of corn steep liquor and air-dried rice straw.
Animal Nutrition, 2(3), 229–33. https://doi.org/
10.1016/j.aninu.2016.04.003
12. Rahman, N. A., Abd Halim, M. R., Mahawi,
N., Hasnudin, H., Al-Obaidi, J. R., & Abdullah, N.
(2017). Determination of the use of Lactobacillus
plantarum and Propionibacterium freudenreichii ap-
plication on fermentation profile and chemical com-
position of corn silage. BioMed Research Interna-
tional, 1–8. https://doi.org/10.1155/2017/2038062
13. Rodrigues, P. H. M., Gomes, R. d. C., Me-
yer, P. M., Borgatti, L. M. O., Franco, F. M. J., &
Godoy, G. L. A. D. (2012). Effects of microbial in-
oculants and amino acid production by-product on
fermentation and chemical composition of sugarcane
silages. Revista Brasileira de Zootecnia, 41(6),
1394–1400. http://dx.doi.org/10.1590/S1516-359820
12000600011
14. Pobednov, Ju. A., & Mamaev, A. A. (2005).
Jeffektivnost' primenenija bakterіj vida Bacіllus sub-
tіlіs pri silosovanii i senazhirovanii travu. [The ef-
fectiveness of the use of bacteria of the species Ba-
cillus subtilis in ensiling and grass haying]. Vete-
rinarnaja patologija — Veterinary Pathology, 1,
90–96 [in Russian].
15. Kravchenko, N. O., & Perederij, M. G.
(2017) Antagonistychna aktyvnist' shtamiv bakterij
Bacillus subtilis, perspektyvnyh dlja stvorennja kon-
servantiv vologogo zerna pljushhenoi' kukurudzy
[Antagonistic activity of Bacillus subtilis strains,
perspective components for creation of rolled high-
moisture corn preservatives]. Sіlskogospodarska
mіkrobіologіja — Agricultural microbiology, 26,
49–54 [in Ukrainian]. http://www.sg-microb.ho.ua/
arh/pdf26/SM26_08.pdf
16. Kravchenko, N. O, Chumachenko, S. P., &
Perederij, M. G. (2017). Konservujucha zdatnist'
Bacillus subtilis pry zagotivli pljushhennogo volo-
gogo zerna kukurudzy [Preserving ability of Bacillus
subtilis during gathering of flattened moist corn
grain]. Sіlskogospodarska mіkrobіologіja — Agri-
cultural microbiology, 25, 57–62 [in Ukrainian].
http://www.sg-microb.ho.ua/arh/pdf25/SM25_09.pdf
17. Queiroz, O. C. M., Adesogan, A. T., Arri-
ola, K. G., & Queiroz, M. F. S. (2012). Effect of a
dual-purpose inoculant on the quality and nutrient
losses from corn silage produced in farm-scale silos.
Journal of Dairy Science, 95(6), 3354–3362.
https://doi.org/10.3168/jds.2011-5207
18. Balpanov, D. S., Ten, O. A., Esepbaj, G. E.,
& Barbasova, S. K. (2014). Tehnologija poluchenija
zakvaski dlja silosovanija grubostebel'chatyh kor-
mov s ispol'zovaniem molochnokislih i propiono-
vokislyh bakterіj [The technology for producing
starter culture for silage of coarse-grained feed using
lactic acid and propionic acid bacteria.]. Bio-
tehnologija. Teorija i praktika — Biotechnology.
Theory and practice, 1, 79–84 [in Russian].
19. Pat. 116292 UА. MПK: С12N 1/20, С12R
1/125. Strain of bacteria Bacillus subtilis for the
manufacture of probiotic preparations for animals
and microbial preparations for fodder production,
Kravchenko, N. O., Dmytruk, O. M., Aheyev, V. O.,
Bozhok, L. V., Рubl. 26.02.2018 [in Ukrainian].
20. Pat. 115938 UА. MПK: С12N 1/20, А61К
35/744. Strain of bacteria Lactobacillus plantarum
for the manufacture of biotic drugs and microbial
preservatives for feed digestion, Kravchenko, N. O.,
Dmytruk, O. M., Aheyev, V. O., Bozhok, L. V.,
Рubl. 10.01.2018 [in Ukrainian].
21. de Mann, J. C., Rogosa, M., & Shar-
pe, M. E. (1960). A medium for the cultivation of
lactobacilli. J. Appl. Bacteriology, 23(1). 130–135.
https://doi.org/10.1111/j.1365-2672.1960.tb00188.x
22. Pat. 66420 UА, MПK А61К 35/66. Method
of manufacturing probiotic preparation of Bacillus
subtilis, Derevianko, S. V., Dyachenko, A. M.,
Bozhok, L. V., Aheyev, V. O., Prokopenko, O. I.,
Рubl. 10.01.2012 [in Ukrainian].
23. Osledkin, Ju. S., Vasin, A. D., & Shushuno-
va, A. V. (1981). Zakvaska dlja silosovanija kormov
[Sourdough silage feed]. Veterinarija — Veterinary,
9, 65–66 [in Russian].
24. Egorov, N. S. (1965). Mikroby-antagonisty i
biologicheskie metody opredelenija antibioticheskoj
ISSN 1997-3004 Сільськогосподарська мікробіологія. 2020. Вип. 31.
82
aktivnosti [Microbes-antagonists and biological
methods for determining antibiotic activity]. Mos-
kva: Vyssh. Shkola [in Russian].
25. Egorov, N. S. (1986). Osnovy uchenija ob
antibiotikah: ucheb. dlja stud. biol. spec. un-tov.
4-e izd., pererab. i dop. [Antibiotic Fundamentals].
Moskva: Vyssh. shk. [in Russian].
26. Petuhova, E. A., Bessarabova, R. F, Hale-
neva, L. D., Antonova, O. A. (1989). Zootehny-
cheskyj analyz kormov [Zootechnical analysis of
feeds]. Moskva: Agropromizdat [in Russian].
27. Korosov, A. V., Gorbach, V. V. (2016)
Komp'juternaja obrabotka byologycheskyh dannjah
[Computer processing of biological data] (pp. 96).
Petrozavodsk: PetrGU [in Russian].
28. Smirnov, V. V., Reznik, S. R., Vasilevska-
ja, I. A. (1982). Sporoobrazujushhie aerobne bakte-
rii — producenty biologicheski aktivnih veshhestv
[Spore-forming aerobic bacteria are producers of bi-
ologically active substances]. Kyiv: Naukova dumka
[in Russian].
29. Kvasnikov, E. I., Nesterenko, O. A. (1975).
Molochnokislye bakterii i puti ih ispol'zovanija
[Lactic acid bacteria and ways of their use] [in Rus-
sian].
Received 17.06.2020
ISSN 1997-3004 Сільськогосподарська мікробіологія. 2020. Вип. 31.
|
| id | oai:ojs2.smic.in.ua:article-96 |
| institution | Agriciltural microbiology |
| keywords_txt_mv | keywords |
| language | Ukrainian |
| last_indexed | 2026-07-23T01:04:15Z |
| publishDate | 2020 |
| publisher | Institute of Agrocultural Microbiology and Agro-industrial Manufacture of NAAS of Ukraine |
| record_format | ojs |
| resource_txt_mv | smicinua/4d/10411a9ad9d31683cb109020771af44d.pdf |
| spelling | oai:ojs2.smic.in.ua:article-962026-07-22T10:10:41Z MICROBIOLOGICAL EVALUATION OF ROLLED MOIST CORN GRAIN FERMENTED BY PROBIOTIC MICROORGANISM STRAINS МІКРОБІОЛОГІЧНА ОЦІНКА ПЛЮЩЕНОГО ВОЛОГОГО ЗЕРНА КУКУРУДЗИ, ФЕРМЕНТОВАНОГО ШТАМАМИ ПРОБІОТИЧНИХ МІКРООРГАНІЗМІВ Кравченко, Н. О. Передерій, М. Г. Дмитрук, О. М. rolled corn grain, preservation, biological preservatives, probiotic bacteria, lactic acid bacteria, micromycetes плющене зерно кукурудзи, консервування, біологічні консерванти, пробіотичні бактерії, молочнокислі бактерії, мікроміцети Objective. Study the influence of Bacillus subtilis and probiotic strains of lactic acid bacteriaon microbiological processes during fermentation of rolled moist corn grain. Methods. Microbiological, zootechnical. Results. The antifungal activity of probiotic strains of Bacillus subtilis ВРТB1 and Lactobacillus plantarum KT-L18/1 against micromycetes isolated from rolled moist corngrain was studied. It has been established that B. subtilis ВРТ-B1 actively inhibits the growth ofmoulds of the genera Mucor, Rhisopus and Penicillium and yeasts of the genera Sacharomyces andTorulopsis. L. plantarum KT-L18/1 shows weak antifungal activity, pronounced antagonism is onlyobserved against micromycetes of the genus Penicillium and yeast of the genus Torulopsis. Underexposure to B. subtilis ВРТ-B1 and L. plantarum KT-L18/1, was a 3-fold increase in the number oflactic acid bacteria on a day 70 compared to the same parameter in the baseline raw material; nobutyric acid bacteria, moulds and pathogenic microorganisms were detected. When air flow isavailable for prepared moist corn, the development of micromycetes is observed within 14 days inall variants, except for inoculation of raw materials with L. plantarum KT-L18/1. At the same time,the number of micromycetes increased 2.4 times in the moist corn without the introduction of preservatives, which increases the probability of accelerated aerobic spoilage of feed and the threat ofcontamination with mycotoxins. Feed acidity both on a day 70 of preservation and on a day 14 fromthe beginning of air access in variants with the introduction of probiotic strains of B. subtilis ВРТB1 and L. plantarum KT-L18/1 and biopreservative Sil-All 4×4 was stably optimal within pH 4.0 to4.3. In a preserved rolled moist corn grain without introduction of preservative, pH of the feedincreased from 4.6 to 5.2, which is favourable for the active development of aerobic microflora.Conclusions. Making of rolled moist corn grain treated with B. subtilis ВРТ-B1 and L. plantarumKT-L18/1 ensures the establishment of optimal levels of feed acidity, prevents the intensive development of putrefactive microorganisms, micromycetes, which contributes to better aerobic stabilityof feed for 14 days after access of air compared with feed without the use of probiotic microorganisms; saturates the moist corn with probiotic microflora beneficial for animals. Мета. Дослідити вплив Bacillus subtilis та пробіотичних штамів молочнокислих бактерій на мікробіологічні процеси за ферментації плющеного вологого зерна кукурудзи. Методи. Мікробіологічні, зоотехнічні. Результати. Досліджено антифунгальну активність пробіотичних штамів Bacillus subtilis ВРТ-B1 та Lactobacillus plantarum КТ-L18/1 до мікроміцетів, ізольованих з вологого плющеного зерна кукурудзи. Встановлено, що B. subtilis ВРТ-B1активно пригнічує ріст плісеневих грибів родів Mucor, Rhisopus і Penicillium та дріжджівродів Sacharomyces та Torulopsis. L. plantarum КТ-L18/1 виявляє слабку антифунгальну активність, виражений антагонізм спостерігається лише щодо мікроміцетів роду Penicilliumта дріжджів роду Torulopsis. За впливу B. subtilis ВРТ-B1 та L. plantarum КТ-L18/1 на 70-удобу ферментації відзначено збільшення на три порядки чисельності молочнокислих бактерій проти цього ж показника у вихідній сировині; водночас не виявлено маслянокислих бактерій, плісеневих грибів та патогенних мікроорганізмів. За доступу повітря до приготовленого корнажу упродовж 14 діб спостерігається розвиток мікроміцетів у всіх варіантах, завинятком інокуляції сировини штамом L. plantarum КТ-L18/1. Водночас в корнажі без внесення консервантів відзначено збільшену у 2,4 раза чисельність мікроміцетів, що підвищуєвірогідність прискореного аеробного псування корму та загрозу контамінації мікотоксинами. Кислотність корму як на 70-у добу консервування, так і на 14-у добу від початку доступу повітря у варіантах з внесенням пробіотичних штамів B. subtilis ВРТ-B1 іL. plantarum КТ-L18/1 та біоконсерванту Sil-All 4×4 була стабільно оптимальною у межахрН 4,0–4,3. У консервованому плющеному вологому зерні кукурудзи без внесення консервантурН корму підвищилася з 4,6 до 5,2, що є сприятливим для активного розвитку аеробної мікрофлори. Висновки. Заготівля плющеного зерна кукурудзи, обробленого штамами B. subtilisВРТ-B1 та L. plantarum КТ-L18/1, забезпечує встановлення оптимального рівня кислотностікорму, запобігає інтенсивному розвитку гнильних мікроорганізмів, мікроміцетів, що сприяєкращій аеробній стабільності корму упродовж 14 діб після доступу повітря проти кормубез використання пробіотичних мікроорганізмів, насичує корнаж корисною для організмутварин пробіотичною мікрофлорою. Institute of Agrocultural Microbiology and Agro-industrial Manufacture of NAAS of Ukraine 2020-07-07 Article Article Рецензована Стаття application/pdf https://smic.in.ua/index.php/journal/article/view/96 10.35868/1997-3004.31.72-82 Agricultural microbiology; Vol. 31 (2020): Agriciltural microbiology; 72-82 Сільськогосподарська мікробіологія; Том 31 (2020): Сільськогосподарська мікробіологія; 72-82 1997-3004 10.35868/1997-3004.31 uk https://smic.in.ua/index.php/journal/article/view/96/87 Авторське право (c) 2020 N. О. Kravchenko, М. H. Perederii, О. M. Dmytruk https://creativecommons.org/licenses/by/4.0 |
| spellingShingle | плющене зерно кукурудзи консервування біологічні консерванти пробіотичні бактерії молочнокислі бактерії мікроміцети Кравченко, Н. О. Передерій, М. Г. Дмитрук, О. М. МІКРОБІОЛОГІЧНА ОЦІНКА ПЛЮЩЕНОГО ВОЛОГОГО ЗЕРНА КУКУРУДЗИ, ФЕРМЕНТОВАНОГО ШТАМАМИ ПРОБІОТИЧНИХ МІКРООРГАНІЗМІВ |
| title | МІКРОБІОЛОГІЧНА ОЦІНКА ПЛЮЩЕНОГО ВОЛОГОГО ЗЕРНА КУКУРУДЗИ, ФЕРМЕНТОВАНОГО ШТАМАМИ ПРОБІОТИЧНИХ МІКРООРГАНІЗМІВ |
| title_alt | MICROBIOLOGICAL EVALUATION OF ROLLED MOIST CORN GRAIN FERMENTED BY PROBIOTIC MICROORGANISM STRAINS |
| title_full | МІКРОБІОЛОГІЧНА ОЦІНКА ПЛЮЩЕНОГО ВОЛОГОГО ЗЕРНА КУКУРУДЗИ, ФЕРМЕНТОВАНОГО ШТАМАМИ ПРОБІОТИЧНИХ МІКРООРГАНІЗМІВ |
| title_fullStr | МІКРОБІОЛОГІЧНА ОЦІНКА ПЛЮЩЕНОГО ВОЛОГОГО ЗЕРНА КУКУРУДЗИ, ФЕРМЕНТОВАНОГО ШТАМАМИ ПРОБІОТИЧНИХ МІКРООРГАНІЗМІВ |
| title_full_unstemmed | МІКРОБІОЛОГІЧНА ОЦІНКА ПЛЮЩЕНОГО ВОЛОГОГО ЗЕРНА КУКУРУДЗИ, ФЕРМЕНТОВАНОГО ШТАМАМИ ПРОБІОТИЧНИХ МІКРООРГАНІЗМІВ |
| title_short | МІКРОБІОЛОГІЧНА ОЦІНКА ПЛЮЩЕНОГО ВОЛОГОГО ЗЕРНА КУКУРУДЗИ, ФЕРМЕНТОВАНОГО ШТАМАМИ ПРОБІОТИЧНИХ МІКРООРГАНІЗМІВ |
| title_sort | мікробіологічна оцінка плющеного вологого зерна кукурудзи, ферментованого штамами пробіотичних мікроорганізмів |
| topic | плющене зерно кукурудзи консервування біологічні консерванти пробіотичні бактерії молочнокислі бактерії мікроміцети |
| topic_facet | rolled corn grain preservation biological preservatives probiotic bacteria lactic acid bacteria micromycetes плющене зерно кукурудзи консервування біологічні консерванти пробіотичні бактерії молочнокислі бактерії мікроміцети |
| url | https://smic.in.ua/index.php/journal/article/view/96 |
| work_keys_str_mv | AT kravčenkono microbiologicalevaluationofrolledmoistcorngrainfermentedbyprobioticmicroorganismstrains AT perederíjmg microbiologicalevaluationofrolledmoistcorngrainfermentedbyprobioticmicroorganismstrains AT dmitrukom microbiologicalevaluationofrolledmoistcorngrainfermentedbyprobioticmicroorganismstrains AT kravčenkono míkrobíologíčnaocínkaplûŝenogovologogozernakukurudzifermentovanogoštamamiprobíotičnihmíkroorganízmív AT perederíjmg míkrobíologíčnaocínkaplûŝenogovologogozernakukurudzifermentovanogoštamamiprobíotičnihmíkroorganízmív AT dmitrukom míkrobíologíčnaocínkaplûŝenogovologogozernakukurudzifermentovanogoštamamiprobíotičnihmíkroorganízmív |